Biologie criminalistique
Appliquer les sciences biologiques à l’analyse des indices.
Analyse de traces biologiques, empreinte génétique, sérologie, identification génétique et interprétation scientifique des éléments biologiques dans un contexte judiciaire.

Responsable de spécialité
Dr Lamia Lablack
Département
Département du Second Cycle
Objectifs de la formation
Appliquer les sciences biologiques à l’étude des éléments biologiques dans un contexte criminalistique. Associer connaissances moléculaires, analyse des traces et interprétation rigoureuse des données, dans le respect des exigences éthiques et de traçabilité.
Disciplines et enseignements
Génétique et biologie moléculaire appliquées aux traces biologiques, toxicologie, microbiologie, entomologie, botanique et chimie analytique dans leurs applications criminalistiques.
Compétences développées
Mobiliser la biologie moléculaire, la génétique, la biochimie et la microbiologie ; analyser des profils génétiques et des traces biologiques ; évaluer la portée et les limites des résultats. Comprendre la chaîne de conservation des éléments analysés, les principes de qualité et la communication des conclusions scientifiques.
Domaines d’application
Analyse des traces biologiques, identification génétique, sérologie, qualité et traçabilité des analyses.
Organisation et pratique
Formation pratique, études de cas, visites pédagogiques et découverte de plateformes d’analyse. L’interprétation scientifique et l’éthique accompagnent l’apprentissage technique.
Stages
Stages en laboratoire de recherche ou en entreprise.
Projet de fin d’études
Projet mobilisant les acquis scientifiques et pratiques.
Perspectives professionnelles
Analyse biologique et contrôle qualité, biotechnologies, recherche et développement, et activités d’expertise selon les conditions de recrutement et d’exercice applicables. Le parcours prépare aussi à la poursuite d’études et à la conception de projets innovants ; il ne confère pas automatiquement un statut d’expert judiciaire.
Doctorat et recherche
La formation prépare à la recherche et à une candidature en doctorat selon les conditions d’accès et les offres ouvertes. À l’ESSBO, les formations doctorales en Biotechnologie et Santé et en Biotechnologie Microbienne prolongent l’environnement scientifique des sciences biologiques.
Votre parcours, semestre par semestre
47 matières affichées
Semestre 19 matières
- Fondements de la biologie criminalistique5 créditsCoefficient 3Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 70h00
Évaluation: contrôle continu 40% · examen 60%
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S1Fondements de la biologie criminalistiqueRepères
Connaissances préalables recommandées
En Biologie cellulaire et moléculaire, Génétique, Microbiologie, Biochimie, Méthodes d'analyse et techniques de laboratoire
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
À la fin du cours de biologie criminalistique, les étudiants auront acquis une compréhension approfondie des applications biologiques dans le domaine de la criminalistique. Ils seront capables de mettre en pratique les techniques d'analyse biologique pour examiner les preuves sur les scènes de crime, d'interpréter les résultats obtenus, et de les présenter de manière pertinente dans le cadre d'enquêtes criminelles. En outre, ils seront sensibilisés aux implications éthiques et légales associées à l'utilisation de preuves biologiques dans le système judiciaire.
Programme
Contenu de la matière
1. Introduction à la criminalistique biologique
Historique et évolution de la biologie criminalistique
Les pionniers de la criminalistique biologique
Les grandes avancées technologiques et scientifiques dans le domaine
Importance et applications dans les enquêtes criminelles
Rôle de la biologie dans la résolution des crimes
Exemples d'affaires célèbres résolues grâce à la biologie criminalistique
Éthique et normes professionnelles
Principes éthiques dans la collecte et l'analyse des preuves biologiques
Respect de la vie privée et des droits individuels
Techniques d'analyse biologique
Prélèvement, conservation et traitement des échantillons biologiques
Méthodes de prélèvement sur la scène de crime
Protocoles de conservation des échantillons pour une analyse ultérieure
Analyse d'ADN
Principes de la PCR, de l'électrophorèse et du séquençage de l'ADN
Applications de l'analyse d'ADN dans les enquêtes criminelles
Analyse des fluides corporels
Méthodes d'identification et de caractérisation des fluides biologiques
Techniques pour différencier les différents types de fluides (sang, salive, sperme, urine)
Identification des fibres, cheveux et autres traces biologiques
Utilisation de techniques microscopiques et chimiques pour l'identification des fibres et des cheveux
Importance des traces biologiques dans la reconstruction des événements criminels
Interprétation des preuves biologiques
Évaluation
Évaluation et comparaison des profils d'ADN
Méthodes pour évaluer la similarité entre les profils d'ADN
Utilisation des bases de données génétiques pour l'identification des suspects
Analyse de la scène de crime pour récupérer des preuves biologiques
Techniques de recherche et de collecte des preuves biologiques sur la scène de crime
Protocoles pour éviter la contamination et préserver l'intégrité des échantillons
Applications spécialisées
Étude des insectes nécrophages en entomologie forensique
Rôle des insectes dans la détermination du moment de la mort
Méthodes pour collecter et analyser les insectes sur une scène de crime
Analyse des micro-organismes dans les cas de bioterrorisme
Détection et identification des agents pathogènes dans les échantillons biologiques
Techniques pour évaluer la menace biologique et prévenir les attaques
Détection et analyse de toxines et de substances illicites dans les échantillons biologiques
Méthodes de détection des toxines et des drogues dans les échantillons biologiques
Utilisation de la chromatographie et de la spectrométrie de masse pour l'analyse des substances illicites
Études de cas et travaux pratiques
Analyse de scénarios de crime simulés
Mise en pratique des techniques d'analyse biologique sur des scènes de crime simulées
Interprétation des preuves et résolution des enquêtes fictives
Utilisation de techniques d'analyse biologique sur des échantillons réels
Travaux pratiques en laboratoire pour mettre en œuvre les techniques d'analyse biologique
Interprétation des résultats et rédaction de rapports d'expertise
Rapports d'expertise et témoignages d'experts en cours
Rédaction de rapports d'expertise basés sur les résultats des analyses biologiques
Préparation et présentation des témoignages d'experts en cour de justice.
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Anatomie et physiologie humaine 14 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 50h00
Évaluation: contrôle continu 40% · examen 60%
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S1Anatomie et physiologie humaine 1Repères
Connaissances préalables recommandées
Il est nécessaire d’avoir des connaissances de base en biologie générale, notamment sur la structure et les fonctions des cellules, ainsi qu’une maîtrise élémentaire du vocabulaire scientifique.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
Le module vise à fournir aux étudiants les bases essentielles sur la structure du corps humain, incluant l’anatomie des muscles, des os, des articulations, ainsi que l’organisation des systèmes nerveux et circulatoire. Il permet également de maîtriser le vocabulaire anatomique et les notions fondamentales nécessaires à la compréhension des fonctions physiologiques.
Programme
Contenu de la matière
Chapitre 1 : Introduction à l’anatomie et à la physiologie
Définitions et différences entre anatomie et physiologie
Terminologie anatomique : plans, axes, positions
Organisation hiérarchique du corps humain : atomes, molécules, cellules, tissus, organes, systèmes
Concepts d’homéostasie et de régulation physiologique
Chapitre 2 : La cellule et les tissus
Structure et fonction de la cellule humaine
Organites cellulaires essentiels
Types de tissus : épithélial, conjonctif, musculaire, nerveux
Rôle fonctionnel de chaque tissu dans l’organisme
Chapitre 3 : Le système tégumentaire
Structure de la peau : épiderme, derme, hypoderme
Annexes cutanées : poils, ongles, glandes sudoripares et sébacées
Fonctions principales de la peau
Chapitre 4 : Le système squelettique
Classification des os : longs, courts, plats, irréguliers
Anatomie des os : composition, structure microscopique
Les principales articulations : types et mouvements
Introduction à la myologie : types de muscles (striés, lisses, cardiaques)
Chapitre 5 : Le système musculaire
Anatomie macroscopique des muscles squelettiques
Mécanismes de contraction musculaire
Rôle des muscles dans le mouvement et la posture
Chapitre 6 : Le système nerveux (introduction)
Organisation générale : système nerveux central et périphérique
Neurones et cellules gliales : structure et fonction
Transmission de l’influx nerveux
Chapitre 7 : Les organes des sens
Structure et fonction de l’œil
Anatomie de l’oreille et mécanismes de l’audition
Sens du goût et de l’odorat
Chapitre 8 : Introduction aux systèmes digestif et urinaire
Anatomie générale du tube digestif
Fonctions principales
Anatomie et rôle des reins dans l’homéostasie
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références (Livres et polycopiés, sites internet, etc)
- Biologie Moléculaire 14 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 50h00
Évaluation: contrôle continu 40% · examen 60%
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S1Biologie Moléculaire 1Repères
Connaissances préalables recommandées
En biologie cellulaire, en biochimie et en génétique.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
Les étudiants devraient être capables d'acquérir des connaissances de base sur la structure et les propriétés des acides nucléiques et comprendre l’organisation des génomes et des gènes chez les procaryotes et les eucaryotes. L’objectif de cette matière est aussi d'apprendre les divers événements moléculaires impliqués dans la réplication et la transcription de l’ADN, ainsi que la traduction de l’ARN messager. Les mécanismes par lesquels l'ADN pourrait être endommagé et réparé y seront également détaillés.
Les étudiants seront également sensibilisés à l’intégration de l’intelligence artificielle (IA) en biologie moléculaire, afin de développer des compétences en analyse de données biologiques et encourager une approche interdisciplinaire innovante.
Programme
Contenu de la matière :
Introduction à la biologie moléculaire
Définition
Historique
Dogme central de la biologie moléculaire
Structure des acides nucléiques
1. Les composants chimiques des acides nucléiques
1.1. Les bases azotées
1.2. Les pentoses
1.3. Le groupement phosphate
2. Nucléosides, nucléotides
2.1. Liaison N-glycosidique et les différents nucléosides générés
2.2. Liaison phosphoester
2.3. Liaison pyrophosphate
2.4. Nomenclature
3. Polymérisation des nucléotides
3.1. Liaison phosphodiester et formation des polymères nucléotidiques
3.2. Conventions d’écriture
4. L’acide désoxyribonucléique (ADN)
4.1. Structure de l’ADN
4.2. Caractéristiques de la double hélice
4.3. Propriétés physico-chimiques de l’ADN
4.4. Structure tridimensionnelle (compaction), suprastructure.
5. Les acides ribonucléiques (ARN)
5.1. Structure et caractéristiques acides ribonucléiques
5.2. Les différents types d’acides ribonucléiques : synthèse et fonction
6. Manipulation des acides nucléiques
Exonucléases, endonucléases de restriction.
Organisation des génomes et des gènes
Définitions
Organisation des génomes
2. 1 Contenu des génomes
2. 2 Variabilité des génomes
2. 3 Ressemblance entre génomes
2. 4 Génome des procaryotes
ADN chromosomique
ADN extrachromosomique : les plasmides
2. 5 Génome des eucaryotes
Hétérogénéité des séquences d’ADN
ADN hautement répété
ADN moyennement répété
ADN non répété
ADN mitochondrial
2. 6 Plasticité des génomes et éléments transposables
Organisation des gènes
3. 1 Chez les procaryotes
3. 2 Chez les eucaryotes
3. 3 Différents types de gènes
Gènes à copie unique ; gènes de structure, gènes de régulation, pseudogènes et gènes de ménage.
Familles et superfamilles de gènes (homologues, paralogues, orthologues, xénologues)
Réplication de l’ADN
Généralités
Lois fondamentales de la réplication
2. 1. Réplication semi-conservative
2. 2. Origine de réplication
2. 3. Réplication bidirectionnelle
2. 4. Polymérisation unidirectionnelle
2. 5. Réplication semi-discontinue
2. 6. Amorce d’ARN (primer)
Les enzymes de la réplication
3. 1. Les hélicases
3. 2. Les topoisomérases
3. 3. La primase
3. 4. Les ADN polymérases
3. 5. L’ADN ligase
Les protéines de la réplication
La réplication chez les procaryotes
5. 1. Les différentes protéines mise en jeu
5. 2. Origines et terminaisons chez E-Coli
5. 3. Les étapes de la réplication procaryote
5. 4. Régulation de la réplication chez E-Coli
La réplication chez les eucaryotes
6. 1. Les ADN polymérases eucaryotes
6. 2. Les télomères et les télomérases
Histones et réplication
La réplication du matériel génétique des rétrovirus
Variations et maintenance du matériel génétique
Introduction
Lésions de l’ADN
Lésions endogènes
Erreurs de réplication
Tautomérisation
Dépurinations et dépyrimidations
Désaminations
Erreurs de méthylations
Lésions provoquées par des agents exogènes
Les lésions dues à des mutagènes physiques
Les lésions dues à des mutagènes chimiques
Prévention
Réponses cellulaires aux lésions de l’ADN
Réparation de l’ADN
Réparation immédiate
Réparation durant la réplication
Inversion directe photolyases
Inversion directe par alkyl transférases
Réparation secondaire
Réparation par excision de base (BER)
Réparation par excision de nucléotide (NER)
Réparation des mésappariements
Réparation des cassures par la recombinaison
Système SOS chez E. coli
Déficience de systèmes de réparation (quelques exemples)
Variations génétiques
Types de mutations ponctuelles
Selon la nature de la mutation
Mutation par substitution ; Mutation par délétion ; Mutation par addition
Selon la conséquence de la mutation
Mutation faux sens ; Mutation non-sens ; Mutation silencieuse ; Mutation Frameshift
Transcription de l’ADN
Généralités
L’unité de transcription
Notion de brin matrice et brin codant
Transcription chez les procaryotes
Initiation
Elongation
Terminaison
Terminaison rho-dépendante
Terminaison rho-indépendante
Maturation des transcrits primaires
Transcription chez les eucaryotes
Différence dans la transcription eucaryote
Les ARN-polymérases eucaryotes
Complexe protéique nécessaire à la transcription
Promoteurs eucaryotes
Initiation
Elongation
Terminaison
Maturation post-transcriptionnelle de l’ARNm chez les eucaryotes
Le coiffage
La poly-adénylation
Epissage
Traduction
Le code génétique
Les acteurs de la traduction
2.1. Les ribosomes (synthèse, structure et fonction)
2.2. Les ARNt (structure et rôle) et les aminoacyl-ARNt synthétases
Structure des ARNt et ARNt iso-accepteur
Chargement de l’acide aminé sur l’ARNt
Les différentes étapes de la traduction procaryote
3.1. Initiation
3.2. Elongation
a. Réaction de couplage
b. Formation de la liaison peptidique et libération du premier ARNt
c. Translocation
3.3. Terminaison
Les spécificités de la traduction eucaryote
Modifications post-traductionnelles
Définitions et exemples
La phosphorylation
L’acétylation et la méthylation des histones
Acétylation de p53
Introduction aux applications de l’intelligence artificielle (IA) en biologie moléculaire
Définition de l’IA et concepts clés (algorithmes, machine learning, deep learning)
Introduction aux bases de données biologiques (NCBI, Ensembl, UniProt)
Introduction aux outils : BLAST, Clustal Omega, AlphaFold
Introduction à l’utilisation de l’IA pour l’analyse des séquences ADN/ARN : alignement multiple, prédiction des structures secondaires
Introduction aux outils informatiques et d’IA utilisés pour l’annotation automatique des génomes (ex. : DeepGene, GeneMark)
IA pour la prédiction des promoteurs et d’épissage alternatif
Modélisation des structures protéiques, prédiction des sites actifs, simulation de la traduction.
Travaux dirigés :
Fiche TD 01 : Structure des acides nucléiques
Fiche TD 02 : Organisation des génomes et des gènes
Fiche TD 03 : Réplication de l’ADN
Fiche TD 04 : Variations et maintenance du matériel génétique
Fiche TD 05 : Transcription de l’ADN
Fiche TD 06 : Traduction de l’ARN messager
Fiche TD 07 : Applications de l’IA en biologie moléculaire :
Introduction aux bases de données biologiques, aux outils bioinformatiques et à l’IA (BLAST, Ensembl, AlphaFold)
Classer des séquences par similarité
Utiliser un outil simple d’alignement avec IA
Démonstration de base d’un algorithme d’apprentissage supervisé (ex : arbre de décision pour classer des mutations comme bénignes ou pathogènes)
Prédiction de structure d’ARN et de protéine avec outils IA accessibles en ligne
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Chimie analytique 14 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 50h00
Évaluation: contrôle continu 40% · examen 60%
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S1Chimie analytique 1Repères
Connaissances préalables recommandées
Des connaissances en chimie générale et en chimie organique.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
Acquérir les connaissances théoriques et pratiques nécessaires pour comprendre les principes et les techniques de base utilisés en chimie analytique, ainsi que leur application dans divers domaines scientifiques et industriels.
Programme
Contenu de la matière
Introduction à la Chimie Analytique
Définitions et concepts de base en chimie analytique.
Classification des méthodes analytiques et leurs applications dans différents domaines.
Importance de la précision, de la sensibilité et de la sélectivité dans les analyses chimiques.
Chimie des Solutions
Théorie des solutions : concentrations massiques, molaires et molaire molale.
Influence des facteurs tels que la température, la pression et le pH sur les réactions en solution.
Techniques de préparation des solutions, de dilution et de normalisation.
Équilibres Chimiques
Principes des équilibres chimiques : produit de solubilité, constante d'acidité et de basicité.
Facteurs influençant les équilibres chimiques et leur déplacement.
Application des équilibres chimiques dans les réactions de précipitation et de complexation.
Analyse Volumétrique
Techniques de titrage : titrage acido-basique, titrage oxydoréducteur, titrage complexométrique.
Utilisation des indicateurs colorés et des méthodes de détection des points d'équivalence.
Calculs de concentrations et de volumes équivalents.
Analyse Instrumentale
Introduction aux techniques d'analyse instrumentale : spectroscopie, chromatographie, électrochimie.
Principes de fonctionnement des instruments analytiques modernes et applications dans les analyses chimiques.
Chromatographie
Principes de la chromatographie en phase liquide (HPLC) et en phase gazeuse (GC).
Séparation des composés en fonction de leurs interactions avec la phase stationnaire.
Interprétation des chromatogrammes et quantification des analytes.
Spectroscopie
Principes de la spectroscopie UV-Vis, IR et RMN.
Interaction de la lumière avec la matière et information fournie par les spectres.
Utilisation de la spectroscopie pour l'identification qualitative et la quantification des composés.
Électrochimie
Principes de l'électrochimie et des techniques électrochimiques telles que la voltamétrie et la polarographie.
Mesure des grandeurs électrochimiques et applications dans l'analyse de substances chimiques.
Traitement des Données Analytiques
Méthodes statistiques pour l'analyse des données : moyennes, écarts-types, intervalles de confiance.
Évaluation
Évaluation de la fiabilité des résultats d'analyse, estimation des incertitudes et rédaction de rapports analytiques.
Applications de la Chimie Analytique
Utilisation de la chimie analytique dans divers domaines : contrôle de qualité dans l'industrie, surveillance de l'environnement, analyse des aliments et des médicaments, etc.
Développements récents et perspectives futures dans le domaine de la chimie analytique.
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc
- Atelier de Biologie Moléculaire5 créditsCoefficient 3Volume semestriel: 60h00Cours / semaine: —TD / semaine: —TP / semaine: 04h00Autres heures: 60h00
Évaluation: contrôle continu 60% · examen 40%
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S1Atelier de Biologie MoléculaireRepères
Connaissances préalables recommandées
En biologie moléculaire, génétique et biochimie.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
L'objectif de cet atelier est d'initier les étudiants aux techniques de base en biologie moléculaire et aux bons gestes lors de la manipulation du matériel génétique et les outils moléculaires.
Programme
Contenu de la matière
Atelier 1 : Atelier d’extraction d’ADN génomique
Extraction de l’ADN génomique à partir
Sang
Salive
Sperme
Cheveux
Peau
Dents : Os
Autres types d’échantillons
D’un tissu animal
D’un tissu végétal
De bactéries : gram + et gram -
De champignons
De virus
Atelier 2 : Atelier d’extraction d’ARN
Atelier 3 : Atelier de dosage, de contrôle de qualité et de séparation des acides nucléiques
Dosage des acides nucléiques par spectrophotométrie
Electrophorèse sur gel d’agarose
Atelier 4 : Atelier de PCR (Polymerase Chain Reaction)
PCR STR
PCR en temps réel et quantitative
RT-PCR (Reverse Transcription Polymerase Chain Reaction)
Évaluation
Mode d’évaluation : Compte rendu : 60 % ; Examen : 40 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Atelier de Chimie Analytique4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: —TD / semaine: —TP / semaine: 03h00Autres heures: 50h00
Évaluation: contrôle continu 60% · examen 40%
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S1Atelier de Chimie AnalytiqueRepères
Connaissances préalables recommandées
Connaissances en chimie générale, Compréhension des principes de base de la spectroscopie et de la chromatographie.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
Cet atelier vise à former les étudiants à la maîtrise opérationnelle des outils clés de la chimie analytique moderne : de la mesure de signaux électriques en électrochimie (potentiométrie, voltamétrie, coulométrie) à l’analyse spectroscopique (UV-Vis, IR), en passant par les séparations chromatographiques (HPLC, GC) et la détection structurale par spectrométrie de masse, tout en assurant la fiabilité des données via des protocoles de validation conformes à la norme ISO 17025.
Programme
Contenu de la matière
Atelier 1 : Electrochimie et Méthodes Électroanalytiques
Atelier 2 : Spectroscopie UV-Vis et IR
Atelier 3 : Chromatographie en Phase Liquide (HPLC)
Atelier 4 : Spectrométrie de Masse (MS)
Atelier 5 : Méthodes de Validation et Assurance Qualité
Évaluation
Mode d’évaluation : Compte rendu : 60 % ; Examen : 40 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Infraction et Répression en Sciences Forensiques2 créditsCoefficient 1Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: —Autres heures: 25h00
Évaluation: contrôle continu 40% · examen 60%
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S1Infraction et Répression en Sciences ForensiquesRepères
Connaissances préalables recommandées
Une bonne connaissance du droit civil I et du droit constitutionnel, ainsi que la familiarité avec la méthodologie juridique.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
Ce module vise à fournir aux étudiant·e·s une compréhension approfondie des principes généraux du droit pénal (légalité des infractions, éléments constitutifs, responsabilités) et de la procédure pénale (enquête, instruction, jugement et voies de recours), en les préparant à analyser des cas jurisprudentiels et à maîtriser le vocabulaire juridique fondamental
Programme
Contenu de la matière
Chapitre 1 : Introduction générale au droit pénal
Définition et objet du droit pénal
Fonctions du droit pénal
Sources du droit pénal
Principes fondamentaux
Lien avec la criminalistique
Chapitre 2 : Les infractions pénales
Classification des infractions
Éléments constitutifs de l’infraction
Élément légal : l’acte doit être interdit par la loi.
Élément matériel : acte ou omission matériellement constaté.
Élément moral : intention coupable ou faute.
La tentative et la complicité
Responsabilité pénale
Lien avec la biologie criminalistique
Chapitre 3 : Les sanctions pénales
Typologie des peines
Objectifs des sanctions
Exécution et prescription des peines
Chapitre 4 : Introduction à la procédure pénale
Définition et finalité
Principes fondamentaux
Les acteurs de la procédure
Lien avec la criminalistique
Le rôle clé des experts en biologie criminalistique dans la phase d’enquête et d’instruction.
Chapitre 5 : Les étapes de la procédure pénale
Enquête préliminaire
Instruction préparatoire
Jugement
Voies de recours
Chapitre 6 : La preuve pénale et le rôle de l’expert en biologie criminalistique (aspects théoriques)
Notion et importance de la preuve en droit pénal
Modes de preuve
Rôle de l’expert en biologie criminalistique
Identification et collecte des traces biologiques (sang, sperme, salive, cheveux).
Respect de la chaîne de conservation des preuves pour garantir leur intégrité.
Analyse ADN et typage génétique pour individualisation.
Rédaction de rapports d’expertise et témoignage en justice.
Lien avec la procédure pénale
Chapitre 7 : Droits des victimes et de la défense
Droits fondamentaux des victimes
Droits de la défense
Évaluation
Mode d’évaluation
Contrôle continu : 40% (exposés, analyses de cas criminels, quizz)
Examen final : 60% (questions de réflexion et études de cas)
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Stratégies de Recherche et Communication Scientifique1 créditsCoefficient 1Volume semestriel: 22h30Cours / semaine: 01h30TD / semaine: —TP / semaine: —Autres heures: 15h00
Évaluation: contrôle continu 40% · examen 60%
Explorer la matière
S1Stratégies de Recherche et Communication ScientifiqueRepères
Connaissances préalables recommandées
Français, anglais, outil informatique.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
Ce module a pour objectif d’initier les étudiants aux différentes sources d'information en biologie et en biotechnologie, de leur faire maîtriser les outils et stratégies de la recherche scientifique, ainsi que de les sensibiliser aux pratiques de rédaction scientifique adaptées aux sciences appliquées et à l’ingénierie. Il vise également à développer chez eux une compréhension des différentes situations de communication scientifique, à leur permettre de maîtriser les processus et supports de communication scientifique (articles, communications orales, posters) et à les familiariser avec les principes de l’open science ainsi qu’avec la communication de la science vers le grand public.
Programme
Contenu de la matière
Partie 1 : Recherche Documentaire et Rédaction Scientifique
Introduction à la recherche scientifique
Typologie des documents et littérature scientifique
Évolution des méthodes de recherche
Science ouverte et accès libre
Méthodologie de recherche : Approches avancées
Définition de la question d’étude (Méthodes PICO, 3QPOC)
Sélection des outils de recherche : Catalogues, bases de données pluridisciplinaires et Spécialisées
Utilisation des moteurs de recherche spécialisés et plateformes de texte intégral
Optimisation et exploitation des résultats de recherche
Analyse de la pertinence des sources
Fiabilité, actualité et exactitude des informations
Gestion des références et utilisation des gestionnaires bibliographiques (EndNote, Zotero, Mendeley)
Rédaction scientifique moderne
Analyse d’articles et élaboration de rapports
Rédaction d’un mémoire de fin d’études
Rédaction d’articles et communications scientifiques
Partie 2 : Communication Scientifique et Diffusion des Connaissances
Les enjeux de la communication scientifique
Pourquoi et comment communiquer la science ?
Stratégies et techniques modernes d’expression écrite et orale
Interactions et échanges scientifiques en milieu académique
Fonctionnement des échanges scientifiques
Présentation et valorisation de ses recherches
Utilisation des outils numériques pour la visibilité
Open Science et vulgarisation scientifique
Stratégies de diffusion vers le grand public
Utilisation des médias numériques et des nouvelles technologies
Interaction avec la presse et les médias
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- English for Biologists - Starter1 créditsCoefficient 1Volume semestriel: 22h30Cours / semaine: 01h30TD / semaine: —TP / semaine: —Autres heures: 05h00
Évaluation: contrôle continu 40% · examen 60%
Explorer la matière
S1English for Biologists - StarterRepères
Connaissances préalables recommandées
Prior knowledge of basic English
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
This course aims to help students build strong skills in speaking and writing in English.
Programme
Contenu de la matière
Unit 1: Tell us about yourself
Grammar: Tenses (present, past, future). Question forms (where, what, who, why, how much).
Vocabulary: words with more than one meaning.
Reading: Cell communication.
Speaking: students of ESSBO talking about each other.
Listening: Listening to a scientist speaking about his/her career.
Writing: Informal letter.
Unit 2: The way we live
Grammar: Present tenses: present simple, present continuous.
Vocabulary: At the laboratory.
Reading: Living in Oran.
Speaking: Share with us your experience about living on campus.
Listening: Student life at other universities.
Writing: Transition (linking words).
Unit 3: Biologist from the past
Grammar: Past tenses: past simple, past continuous.
Vocabulary: Time expressions.
Reading: DNA fingerprinting in forensic science
Speaking: Telling the story of a scientific discovery or famous criminal case involving biology
Listening: Rosalind Franklin and the discovery of DNA
Writing: write a short story about your favourite scientist.
Unit 4: Let’s explore the biology lab
Grammar: Much / Many, Some / Any
Vocabulary: Laboratory tools and biological products
Reading: Scientific supply chains – from biomolecules to lab benches
Speaking: Talking about materials and substances used in the lab
Listening: Visiting a forensic biology lab – what do scientists need?
Writing: Write a short paragraph describing essential biomolecules used in DNA analysis or other forensic tests
Unit 5: What do you want to do?
Grammar: Verb patterns, Expressing intentions
Vocabulary: Have, go, come.
Reading: what a DNA polymerase can do
Speaking: what are your plans?
Listening: Evolution of using DNA testing to solve crimes
- Write a short report describing how a specific enzyme (e.g. DNA polymerase) is used in forensic analysis.
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
Neurochimie et Comportement
Anatomie et physiologie humaines (02)
Criminalité Environnementale
Chimie Analytique 2
Atelier Biologie Forensique (01)
Atelier de Biochimie Forensique
UE découverte
Fondements Criminologiques pour les Sciences Forensiques
Botanique forensique
UE transversale
English for biologists - Elementary
Semestre 29 matières
- Neurochimie et Comportement5 créditsCoefficient 3Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 70h00
Évaluation: contrôle continu 40% · examen 60%
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S2Neurochimie et ComportementRepères
Connaissances préalables recommandées
Des connaissances en biologie cellulaire, biochimie et neurophysiologie sont recommandées pour suivre ce module.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
Ce module vise à fournir une compréhension approfondie des fondements chimiques des fonctions cérébrales et de leur influence sur le comportement humain. Il permet d’étudier les neurotransmetteurs, neuromodulateurs et hormones impliquées dans la régulation des émotions, de la prise de décision et des interactions sociales. Par ailleurs, il analyse les liens entre les altérations chimiques du cerveau et les comportements criminels ou pathologiques, afin d’appliquer ces connaissances de manière concrète dans le cadre des expertises en biologie criminalistique.
Programme
Contenu de la matière
Chapitre 1 : Introduction à la chimie cérébrale
Composition chimique du cerveau.
Concepts fondamentaux de la biochimie neuronale.
Synapse chimique vs synapse électrique.
Chapitre 2 : Structure et fonction des neurotransmetteurs
Classification des neurotransmetteurs.
Synthèse, stockage et libération.
Mécanismes de recapture et dégradation.
Chapitre 3 : Neurotransmetteurs excitateurs et inhibiteurs
Glutamate et GABA : rôle dans l’équilibre excitation/inhibition.
Impact sur le comportement et la cognition.
Chapitre 4 : Système dopaminergique et comportements
Rôle de la dopamine dans la motivation, la récompense et l’addiction.
Dopamine et comportements impulsifs/agressifs.
Chapitre 5 : Système sérotoninergique et régulation émotionnelle
Fonction de la sérotonine dans l’humeur et l’anxiété.
Implications dans les troubles du comportement.
Chapitre 6 : Noradrénaline et réponse au stress
Mécanismes neurochimiques du stress.
Effets sur la prise de décision et l’agressivité.
Chapitre 7 : Neurohormones et modulation sociale
Ocytocine, vasopressine et comportements sociaux.
Neurochimie de l’empathie et de la confiance.
Chapitre 8 : Interaction neuroendocrinienne dans la chimie cérébrale
Influence des hormones stéroïdes (testostérone, œstrogènes) sur la neurotransmission.
Impact sur les comportements sexuels et agressifs.
Chapitre 9 : Altérations neurochimiques associées aux comportements criminels
Déséquilibres neurochimiques et propension à la violence.
Études de biomarqueurs neurochimiques en criminalistique.
Chapitre 10 : Effets des substances psychoactives sur la chimie cérébrale
Drogues, médicaments et perturbations neurochimiques.
Influence sur la commission d’actes criminels.
Chapitre 11 : Bases toxicologiques en neurochimie criminalistique
Analyse des substances neuroactives dans les expertises médico-légales.
Techniques de détection et interprétation des résultats.
Chapitre 12 : Perspectives et limites de la neurochimie en biologie criminalistique
Applications actuelles et futures.
Questions éthiques et scientifiques.
Intégration multidisciplinaire dans l’expertise criminelle.
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Anatomie et physiologie humaine (02)4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 50h00
Évaluation: contrôle continu 40% · examen 60%
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S2Anatomie et physiologie humaine (02)Repères
Connaissances préalables recommandées
Validation du module Anatomie et Physiologie Humaines 1. Notions élémentaires en biologie moléculaire appliquée.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
Le module a pour objectif d’approfondir la connaissance des systèmes complexes du corps humain, tels que les systèmes cardiovasculaire, respiratoire, endocrinien, immunitaire et génital. Il met l’accent sur la compréhension des mécanismes physiologiques intégrés et des interactions entre ces systèmes, tout en développant des compétences pratiques pour mieux analyser les fonctions corporelles.
Programme
Contenu de la matière
Chapitre 1 : Système nerveux périphérique et autonome
Nerfs crâniens et rachidiens : structure et fonctions
Réflexes et arcs réflexes
Système nerveux autonome : sympathique et parasympathique
Chapitre 2 : Système endocrinien
Glandes endocrines principales et leurs hormones
Mécanismes d’action hormonale
Régulation hormonale et rétrocontrôle
Chapitre 3 : Système cardiovasculaire
Anatomie du cœur : cavités, valves, circulation sanguine
Cycle cardiaque et électrophysiologie
Vaisseaux sanguins : artères, veines, capillaires
Pression artérielle et régulation
Chapitre 4 : Système lymphatique et immunitaire
Anatomie des vaisseaux lymphatiques et ganglions
Fonctions du système lymphatique
Principes de l’immunité innée et adaptative
Chapitre 5 : Système respiratoire
Anatomie des voies respiratoires supérieures et inférieures
Mécanique de la respiration
Échanges gazeux au niveau des alvéoles pulmonaires
Chapitre 6 : Système digestif approfondi
Anatomie détaillée des organes digestifs
Processus de digestion, absorption et motilité
Chapitre 7 : Système urinaire approfondi
Anatomie des reins, uretères, vessie, urètre
Fonction rénale : filtration, réabsorption, sécrétion
Régulation hydrique et électrolytique
Chapitre 8 : Système reproducteur
Anatomie des appareils reproducteurs masculin et féminin
Fonctionnement physiologique et cycles
Chapitre 9 : Métabolisme et régulation de la température corporelle
Concepts de métabolisme de base
Thermorégulation et mécanismes associés
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références (Livres et polycopiés, sites internet, etc)
- Criminalité Environnementale4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: -TP / semaine: 01h30Autres heures: 50h00
Évaluation: contrôle continu 40% · examen 60%
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S2Criminalité EnvironnementaleRepères
Connaissances préalables recommandées
Connaissances en biologie, en écologie, en chimie et en criminalistique.
Objectifs
Objectif de l’enseignement
Le module a pour objectif d'offrir aux étudiants une compréhension approfondie des principes de la criminalistique appliqués aux enjeux environnementaux, en développant des compétences pratiques d’échantillonnage et d’analyse des preuves.
Programme
Contenu de la matière
Chapitre 1 – Définitions et portée
Concept et champ de la criminalité environnementale.
Typologie : pollution, déforestation, trafic d’espèces, pêche illégale.
Chapitre 2 – Impacts écologiques globaux
Effets sur la biodiversité et services écosystémiques.
Menaces : changements climatiques, désertification, acidification des océans.
Chapitre 3 – Pollution et dégradation des milieux
Pollution de l’air, de l’eau et des sols : sources, métaux lourds, perturbateurs endocriniens.
Altération des habitats : effondrement des récifs, déforestation tropicale.
Chapitre 4 – Trafic d’espèces et exploitation illégale
Braconnage et trafic : espèces menacées, plantes médicinales.
Pêche INN et déversements marins : hydrocarbures, plastiques.
Chapitre 5 – Outils de surveillance écologique
Bio-indicateurs : macroinvertébrés, diatomées.
eDNA : principes, applications à la traçabilité des infractions.
Technologies : drones, capteurs, imagerie satellite.
Chapitre 6 – Impacts de l’environnement sur la criminalité
Influence sur le comportement : pollution, stress urbain, pollution sonore, climat.
Études de cas : violences post-catastrophe, migrations climatiques.
Chapitre 7 – Cadre juridique international et national
Conventions clés : CITES, accords de Paris, Protocoles de Kyoto.
Législation algérienne : responsabilités, sanctions, rôle des ONG.
Chapitre 8 – Taphonomie forensique environnementale
Facteurs abiotiques : température, humidité, pH du sol.
Biote : insectes, microbes, algues affectant la décomposition et l’intégrité de l’ADN.
Protocoles de prélèvement : adaptation en milieu naturel (zones humides, désert).
Chapitre 9 – Criminalité microbiologique et bioterrorisme
Détection d’agents pathogènes : PCR, MALDI-TOF.
Microbiome pour PMI : uses et limites.
Chapitre 10 – Toxicologie forensique environnementale
Dépistage de polluants : GC-MS, LC-MS/MS.
Écotoxicologie : effets sur la chaîne alimentaire.
Chapitre 11 – Prévention et gestion durable
Politiques publiques : aires protégées, zones de non-traitement.
Biotechnologies : phytoremédiation, bactéries dépolluantes.
Chapitre 12 – Conflits environnementaux et sécurité alimentaire
Surexploitation : crise halieutique, ressources forestières.
Migrations et sécurité : pressions démographiques, accès à l’eau.
Chapitre 13 – Synthèse et perspectives
Revue transversale des infractions et des méthodes forensiques.
Innovations : IA pour détection de déversements, blockchain pour traçabilité.
Évaluation
d) Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
e) Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Chimie Analytique24 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 50h00
Évaluation: contrôle continu 40% · examen 60%
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S2Chimie Analytique2Repères
Connaissances préalables recommandées
Notions fondamentales de Chimie générale, Mathématiques appliquées à la chimie, Techniques de laboratoire chimique, Statistiques appliquées, Informatique appliquée à la chimie.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
L’enseignement vise à introduire les principes fondamentaux et les techniques essentielles pour l'analyse qualitative et quantitative des substances chimiques, en mettant l'accent sur l'acquisition de compétences pratiques dans l'utilisation d'instruments analytiques et l'interprétation critique des résultats.
Programme
Contenu de la matière
Chapitre 1 – Introduction à la Chimie Analytique
Définition et objectifs de la chimie analytique
Présentation des principes fondamentaux de la discipline
Importance de la chimie analytique dans divers domaines tels que l'industrie, la santé et l'environnement
Historique de la chimie analytique
Évolution des techniques et des méthodes analytiques au fil du temps
Contributions de différents scientifiques à l'avancement de la discipline
Chapitre 2 – Méthodes de Prélèvement et de Préparation des Échantillons
Principes de prélèvement des échantillons
Techniques d'échantillonnage pour différents types de matrices (liquides, solides, gaz)
Facteurs à considérer lors du prélèvement pour assurer la représentativité de l'échantillon
Préparation des échantillons
Techniques de préparation pour l'analyse qualitative et quantitative
Extraction, purification et concentration des analytes
Chapitre 3 – Techniques d'Analyse Qualitative
Analyse chimique qualitative
Principes des différentes méthodes d'analyse qualitative (gravimétrique, volumétrique, spectroscopique)
Identification des ions et des composés inorganiques
Spectroscopie
Spectroscopie d'absorption atomique (SAA)
Spectroscopie d'émission atomique (SEA)
Spectroscopie d'absorption moléculaire (UV-Vis, IR)
Chapitre 4 – Techniques d'Analyse Quantitative
Analyse chimique quantitative
Principes des méthodes quantitatives (titrage, gravimétrie, spectroscopie)
Détermination des concentrations et des quantités d'analytes
Chromatographie
Chromatographie en phase liquide (HPLC)
Chromatographie en phase gazeuse (GC)
Chromatographie en phase supercritique (SFC)
Chapitre 5 – Méthodes Instrumentales Avancées
Spectrométrie de Masse
Principes de fonctionnement de la spectrométrie de masse
Applications en chimie analytique pour l'identification et la quantification des composés
Spectrométrie d'Absorption Atomique (SAA)
Techniques d'analyse des métaux et des éléments traces
Applications en environnement, alimentation et santé
Chapitre 6 – Validation des Méthodes Analytiques
Validation des méthodes analytiques
Critères de validation (sensibilité, spécificité, linéarité, précision, exactitude)
Étapes de validation des méthodes
Contrôle de Qualité
Utilisation de standards et de matériaux de référence
Assurance qualité et contrôle interne des résultats analytiques
Chapitre 7 – Applications en Industries et en Recherche
Applications industrielles
Utilisation de la chimie analytique dans l'industrie pharmaceutique, agroalimentaire, cosmétique, pétrochimique, etc.
Contrôle qualité et réglementations
Applications en recherche
Contributions de la chimie analytique à la recherche scientifique
Développement de nouvelles méthodes et techniques analytiques
Chapitre 8 – Travaux Pratiques et Études de Cas
Travaux pratiques en laboratoire
Manipulations expérimentales pour mettre en œuvre les techniques analytiques
Interprétation des résultats et rédaction de rapports
Études de cas et résolution de problèmes
Analyse de situations réelles rencontrées en chimie analytique
Développement de compétences en résolution de problèmes analytiques
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Atelier Biologie Forensique 15 créditsCoefficient 3Volume semestriel: 60h00Cours / semaine: -TD / semaine: -TP / semaine: 04h00Autres heures: 60h00
Évaluation: contrôle continu 60% · examen 40%
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S2Atelier Biologie Forensique 1Repères
Connaissances préalables recommandées
Connaissances générales en biologie cellulaire et microbiologie. Notions de base sur les scènes de crime (cours théorique préalable recommandé).
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
Comprendre les principes fondamentaux de la biologie forensique. Apprendre à sécuriser une scène de crime et à respecter la chaîne de custodie.
Programme
Contenu de la matière
TP1 : Introduction à la biologie forensique et gestion de scène de crime biologique
Notions de biosécurité, prélèvements, chaîne de custodie
Équipements et protocole de terrain
TP2 : Prélèvements et conditionnement d’échantillons biologiques
Sang, salive, cheveux, sécrétions
Supports de prélèvements et conservation
TP3 : Techniques de détection du sang latent
Luminol, Bluestar, Kastle-Meyer
Précautions et limites d’interprétation
TP4 : Typage sanguin ABO et tests préliminaires
Réactions antigène/anticorps
Applications forensiques
TP5 : Extraction d’ADN à partir d’échantillons biologiques
Méthodes manuelles et semi-automatisées
Évaluation
Évaluation de la qualité et quantité de l’ADN
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 60 % ; Examen : 40 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Atelier de Biochimie Forensique4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: -TD / semaine: -TP / semaine: 03h00Autres heures: 50h00
Évaluation: contrôle continu 60% · examen 40%
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S2Atelier de Biochimie ForensiqueRepères
Connaissances préalables recommandées
Notions de base de chimie et de biochimie structurale.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
Cette matière vise à initier les étudiants aux techniques expérimentales de base en biochimie, en développant leur capacité à concevoir, réaliser et analyser des protocoles, tout en renforçant la rigueur scientifique et les bonnes pratiques de laboratoire.
Programme
Contenu de la matière
Atelier 1 : Préparation des solutions
Rappel sur l’expression des concentrations (notions de molarité, molalité, normalité, dilution…)
Les tampons (préparation, pKa, choix du tampon …ect)
Manipulations de base : verrerie, volumes et pipetage
Atelier 2 : Méthodes de précipitation des protéines
Effet du pH (pI)
Précipitation par sels (salting-out)
Précipitation par solvants (éthanol)
Atelier 3 : Dosage des protéines par méthodes spectrophotométriques
Méthode de Lowry
Méthode de Bradford
Atelier 4 : Chromatographie d’exclusion de taille
Démonstration par séparation de molécules colorées (Bleu de dextran / Fluorescéine)
Application à la purification de protéines
Analyse des fractions collectées par spectrophotométrie
Atelier 5 : Chromatographie échangeuse d’ions
Application à la purification de protéines du lactosérum
Analyse des fractions collectées par spectrophotométrie
Chromatographie d’affinité (IMAC : Enseignement théorique)
Atelier 6 : Electrophorèses des protéines en condition dénaturante : SDS-PAGE
Tricine-SDS-PAGE (Electrophorèses des peptides : Enseignement théorique)
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 60 % ; Examen : 40 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Fondements Criminologiques pour les Sciences Forensiques2 créditsCoefficient 1Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: -TP / semaine: 01h30Autres heures: 25h00
Évaluation: contrôle continu 40% · examen 60%
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S2Fondements Criminologiques pour les Sciences ForensiquesRepères
Connaissances préalables recommandées
Bases en sociologie, droit pénal et en psychologie.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
Pour appréhender le phénomène criminel dans son ensemble et dans ses spécificités, l’étude des grandes théories criminologiques est une étape indispensable dans la formation du futur criminologiste.
Programme
Contenu de la matière
Chapitre 1 : L'école classique (XVIIIᵉ - début XIXᵉ siècle)
Contexte historique : Lumières et révolution des idées.
Cesare Beccaria et la notion de responsabilité individuelle.
Jeremy Bentham et le principe d'utilitarisme.
Les concepts de peine proportionnelle, libre arbitre et choix rationnel.
Chapitre 2 : L'école positiviste (XIXᵉ siècle)
Rupture avec l'école classique : déterminisme biologique et social.
Cesare Lombroso et l'atavisme criminel.
Enrico Ferri et l’environnement social.
Rafael Garofalo et la notion de dangerosité.
Evaluation.
Chapitre 3 : Les théories psychologiques du crime
Approches psychanalytiques (Freud, concepts du Ça, Moi, Surmoi).
Approches comportementalistes et cognitives.
Troubles de la personnalité (sociopathie, psychopathie).
Chapitre 4 : La théorie de l'anomie
Emile Durkheim : l'anomie sociale et le suicide.
Robert K. Merton : Strain Theory et adaptations déviantes.
Application aux sociétés modernes.
Chapitre 5 : Les théories de la désorganisation sociale
L'école de Chicago : contexte urbain et criminalité.
Shaw et McKay : les zones urbaines de criminalité.
Impact de la mobilité sociale et du tissu communautaire.
Chapitre 6 : La théorie de l’apprentissage différentiel
Edwin Sutherland : la criminalité comme comportement appris.
Principes du contact différentiel.
Héritages et critiques.
Chapitre 7 : Les théories du contrôle social
Travis Hirschi : Social Bond Theory.
Michael Gottfredson et Travis Hirschi : Self-Control Theory.
Crime et faiblesse des liens sociaux.
Chapitre 8 : Les théories critiques de la criminologie
Criminologie marxiste : inégalités économiques et criminalité.
Théories féministes : genre et justice pénale.
Criminologie verte : écocriminalité.
Chapitre 9 : Criminologie et justice forensique
Application des théories à l'investigation criminelle.
Profilage criminel et construction de typologies.
Limites et utilités dans les enquêtes forensiques.
Chapitre 10 : Réflexions contemporaines
Nouveaux champs d'investigation : cybercriminalité, criminalité environnementale, terrorisme.
Besoins de théories adaptées aux réalités du XXIᵉ siècle.
Synthèse.
Évaluation
Mode d’évaluation
Contrôle continu : 40% (exposés, analyses de cas criminels, quizz)
Examen final : 60% (questions de réflexion et études de cas)
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Botanique forensique1 créditsCoefficient 1Volume semestriel: 22h30Cours / semaine: 01h30TD / semaine: -TP / semaine: -Autres heures: 15h00
Évaluation: contrôle continu 40% · examen 60%
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S2Botanique forensiqueRepères
Connaissances préalables recommandées
Biologie végétale, Botanique, Ecologie.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
Enseigner aux étudiants comment utiliser les connaissances botaniques dans le cadre des enquêtes criminelles.
Programme
Contenu de la matière
Introduction à la botanique forensique :
Définition de la botanique forensique et son importance dans les enquêtes criminelles
Historique et développement de la discipline
Méthodes d'analyse en botanique forensique :
Collecte et préservation des échantillons botaniques sur les scènes de crime
Techniques d'identification des plantes, y compris l'utilisation de clés de détermination, de microscopie et de biologie moléculaire
Utilisation des plantes dans les enquêtes criminelles :
Décomposition des végétaux comme indicateur de la chronologie des événements
Analyse de la végétation pour déterminer le lieu de décès ou de dépôt de preuves
Palynologie forensique :
Analyse des pollens et des spores pour retracer les déplacements des suspects ou des victimes
Utilisation de la palynologie pour dater des échantillons et reconstituer les scènes de crime
Entomologie forensique végétale :
Étude des insectes associés aux plantes en décomposition
Utilisation des insectes pour estimer le temps depuis le décès ou la déposition des cadavres
Cas pratiques et études de cas :
Analyse de cas réels où la botanique forensique a joué un rôle crucial dans la résolution d'enquêtes criminelles
Études de scénarios fictifs pour illustrer les applications potentielles de la botanique forensique
Développements récents et tendances futures :
Nouvelles technologies et avancées en botanique forensique
Défis et opportunités pour l'application de la botanique forensique dans le domaine de la justice criminelle
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- English for biologists - Elementary1 créditsCoefficient 1Volume semestriel: 22h30Cours / semaine: 01h30TD / semaine: -TP / semaine: -Autres heures: 05h00
Évaluation: contrôle continu 40% · examen 60%
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S2English for biologists - ElementaryRepères
Connaissances préalables recommandées
Prior knowledge of basic English.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
This course aims to help students build strong skills in speaking and writing in English.
Programme
Contenu de la matière
Unit 1: Tell me what’s it like
Grammar: What it's like to? Comparative and superlative adjectives in biology.
Vocabulary: Talking about modern life and crimes!.
Reading: A story of two plants or insects in forensic investigations" - Forensic use of plants / insects in criminal cases.
Speaking: Comparing different forensic applications of plants / insects
Listening: How insects and plants are used in forensic investigations.
Writing: Describing a crime scene where plant or insect evidence plays a key role.
Unit 2: Asking scientific questions
Grammar: Present perfect and past simple in scientific writing.
Vocabulary: Adverbs in experimental protocols (slowly, carefully…).
Reading: scientist interview
Speaking: questionnaire for research.
Listening: Interview with a forensic biologist
Writing: writing a research protocol.
Unit 3: Do and don’t in the science Lab
Grammar: Have to, got to, should, must.
Vocabulary: Science laboratory safety symbols and hazard signs.
Reading: How biologists ensure safety in criminal investigations through lab protocols
Speaking: Do I need to be good at math to excel in biology? One question, many answers.
Listening: Fire safety in the Lab.
Writing: Should I have good mathematical and statistical skills? (Argument essay).
Unit 4: Inventions that changed the world
Grammar: Passive voice.
Vocabulary: past participle verbs used in scientific writing
Reading: The Role of DNA Analysis in Forensic Science
Speaking: Passive voice battleship.
Listening: How molecular biology revolutionized criminal investigations
Writing: Write a review of a documentary about how scientific police solve crimes
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références (Livres et polycopiés, sites internet, etc)
Psychopathologie et Criminalité
Entomologie forensique
Biologie moléculaire 2
Toxicologie Forensique
Atelier Biologie Forensique (02)
Atelier d’entomologie Forensique
UE découverte
Anthropologie et victimologie criminelles
Droits de Propriété Intellectuelle
UE transversale
Bio-programmation 1
English for biologists – Intermediate
Semestre 310 matières
- Psychopathologie et criminalité4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 50h00
Évaluation: contrôle continu 40% · examen 60%
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S3Psychopathologie et criminalitéRepères
Connaissances préalables recommandées
La psychologie générale, la génétique humaine et la criminologie.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
Comprendre les principaux troubles mentaux associés à la criminalité et identifier les facteurs de risque et les moyens de protection.
Programme
Contenu de la matière
Chapitre 1 – Introduction à la psychopathologie forensique
Définitions et périmètre : psychopathologie, criminalité, lien entre troubles mentaux et actes criminels
Histoire et évolution du champ : des premiers traités médico-légaux à l’émergence de la psychiatrie forensique
Rôle de l’expert : place du psychologue/psychiatre en justice, limites éthiques et déontologiques
Chapitre 2 – Modèles explicatifs de la délinquance
Modèle bio-psycho-social : interactions gènes, neurobiologie et environnement
Neurobiologie de l’agressivité : circuits limbique et préfrontal, rôle de la dopamine et de la sérotonine
Facteurs psychosociaux : attachement, traumatisme précoce, influence familiale et pairale
Chapitre 3 – Troubles de la personnalité et criminalité
Personnalité antisociale (ASPD) : critères DSM-5, comportements violant les droits d’autrui
Psychopathie : construct Cleckley / Hare et évaluation PCL-R
Profil épidémiologique : prévalence ASPD vs psychopathie en population générale et carcérale
Chapitre 4 – Autres troubles de la personnalité (Cluster B)
Narcissique : grandiosité, besoin d’admiration, manque d’empathie
Borderline : instabilité émotionnelle, impulsivité, risque suicidaire
Histrionique : recherche d’attention, théâtralité, séduction comme stratégie de manipulation
Chapitre 5 – Troubles liés à l’usage de substances
Addictions en contexte criminel : rôle des stimulants, dépresseurs et hallucinogènes dans la désinhibition
Comorbidités psychiatriques : ASPD et toxicomanie, impact sur la récidive
Chapitre 6 – Traumatisme, stress post-traumatique et agression
PTSD : symptômes d’intrusion, évitement, hyperactivation
Trauma complexe : maltraitance infantile, violence conjugale et lien avec la délinquance
Approches thérapeutiques : EMDR, TCC focale sur le trauma
Chapitre 7 – Psychoses et actes criminels
Schizophrénie et troubles délirants : délire de persécution, hallucinations commandantes
Criminalité associée : études statistiques, rôle des comorbidités (substances, évictions sociales)
Insanité et responsabilité pénale : critères légaux (article 122-1 CP), expertise psychiatrique
Chapitre 8 – Délinquance sexuelle et psychopathologie
Typologies d’auteurs : pédophilie, exhibitionnisme, fétichisme
Outils d’évaluation : STATIC-99, RSVP, mesures dynamiques du risque
Traitements et prévention : thérapies cognitivo-comportementales et pharmacologiques
Chapitre 9 – Évaluation clinique forensique
Entretien semi-structuré (SCID-5-CV) : diagnostic différentiel, construction du cas clinique
Échelles et tests projetifs : MMPI-2, Rorschach, implications légales
Usages et limites : fiabilité inter-juges, biais culturels
Chapitre 10 – Profilage criminel et neurosciences
Bases du profiling : méthodes inductives vs déductives (FBI, IP)
Apports de l’imagerie cérébrale : IRMf, TEP pour comprendre tendances violentes
Éthique et validité : controverses autour du déterminisme biologique
Chapitre 11 – Gestion du risque et mesures de sécurité
Concepts de récidive et d’imprévisibilité : Taux de faux positifs, score de violence future
Programmes de prise en charge : suivi GPS, centres de jour et hospitalisations sous contrainte
Normes et recommandations : Hagellande, NICE (UK), Haute Autorité de Santé (France)
Chapitre 12 – Victimologie et impact post-infraction
Réactions des victimes : stress post-traumatique, syndrome de Stockholm
Chapitre 13 – Interventions thérapeutiques et réhabilitation
Approches multimodales : TCC, thérapies de groupe, interventions familiales
Programmes spécifiques : résolution de conflit, gestion des impulsions
Chapitre 14 – Études de cas et simulation d’expertise
Analyses de dossiers célèbres : Manson, Dahmer, Anders Breivik
Rédaction de rapports d’expertise : structure, clarté, argumentation scientifique
Simulations de témoignage oral : atelier de dépôt devant « jury », gestion du contre-interrogatoire
Évaluation
Évaluations spécifiques : tests biologiques, entretiens motivationnels
Évaluation médico-légale : croisement témoignage/preuves, fiabilité des souvenirs
Protection et suivi : prise en charge psychologique, dispositifs juridiques (VOA, indemnisation)
Évaluation de l’efficacité : indicateurs de récidive, qualité de vie post-libération
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc
- Entomologie forensique4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: -TD / semaine: -TP / semaine: 03h00Autres heures: 50h00
Évaluation: contrôle continu 40% · examen 60%
Explorer la matière
S3Entomologie forensiqueRepères
Connaissances préalables recommandées
Des connaissances en biologie générale, en entomologie fondamentale, des notions de criminalistique ainsi que des compétences de laboratoire.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
Au terme du cours d'Entomologie Forensique, les étudiants seront capables de comprendre et d'appliquer les principes fondamentaux de cette discipline. Ils sauront collecter, analyser et interpréter les données entomologiques sur les scènes de crime pour estimer avec précision le post-mortem interval. De plus, ils seront en mesure d'évaluer les facteurs environnementaux et saisonniers influençant la colonisation des cadavres par les insectes, ainsi que de reconnaître le rôle crucial de l'entomologie forensique dans le processus judiciaire. Précision : l’estimation doit expliciter ses incertitudes ; l’âge des insectes étaye souvent un intervalle minimal, sans garantir une heure exacte du décès.
Programme
Contenu de la matière
Chapitre 1 – Introduction et historique
Définition et portée de l’entomologie forensique.
Repères historiques : des premières observations médiévales aux protocoles modernes.
Domaines d’application : PMI, localisation, entomotoxicologie, sécurité alimentaire.
Acteurs institutionnels : AFQSE, AAFS, normes internationales
Chapitre 2 – Anatomie et morphologie externes
Tête : antennes, pièces buccales – distinctions Calliphoridae/Sarcophagidae
Thorax : segmentation, types d’ailes, pattes – adaptations nécrophages
Abdomen : spiracles, stigmates respiratoires pour stade larvaire
Morphologie larvaire : spicules, soies, critères d’identification
Chapitre 3 – Cycle de vie et développement
Stades ontogénétiques : œuf, L1–L3, pupe, adulte – durées indicatives
Effets abiotiques : température (loi de Van ’t Hoff), humidité, substrat
Accumulated Degree-Hours (ADH) et Days (ADD) : calculs et utilisation pour PMI
Variabilité interspécifique : Chrysomya vs Lucilia spp.
Chapitre 4 – Biologie reproductive et communication
Comportement d’accouplement : repérage du site de ponte
Phéromones : composition chimique, diffusion et rôle attractif
Sélection des sites de ponte : préférence pour tissus nécrosés, facteurs olfactifs
Signaux multimodaux : vibrations, température
Chapitre 5 – Alimentation, nutrition et succession entomologique
Stratégies trophiques : nécrophage primaire vs secondaire
Phases de décomposition : fraîche, putréfaction, fermentation – communautés successives
Interactions interspécifiques : compétition larvaire, prédation par Dermestidae
Modèles prédictifs : succession standardisée vs environnement urbain
Chapitre 6 – Systématique et taxonomie
Clés morphologiques : utilisation de Byrd & Castner (2001)
Caractères diagnostiques : genitalia, microstructures cuticulaires
Approches moléculaires : séquençage COI, barcode BOLD
Intégration morpho–génomique : phylogénie rapide
Chapitre 7 – Techniques de collecte sur scène
Matériel : pinces, aspirateurs entomologiques et pièges.
Protocole : points d’échantillonnage fixes et temporels
Conservation : éthanol 70 %, stockage à 4 °C, étiquetage, CoC
Sécurité et contamination : protection, stérilité
Chapitre 8 – Élevage et expérimentation
Laboratoire d’élevage : substrats, boîtes, conditions contrôlées
Collecte de données : relevés horaires, courbes de croissance
Techniques d’ablation : prélèvements larvaires pour analyses
Variations simulées : fluctuations de température
Chapitre 9 – Estimation du PMI
Méthodes statiques : âge de la larve la plus vieille
Méthodes dynamiques : modélisation bayésienne avec R.
Uncertainties & validation : bootstrap, intervalles crédibles
Études de cas : scénarios simulés vs données réelles
Chapitre 10 – Entomotoxicologie
Principe : insectes comme matrice pour détecter drogues/poisons
Extraction : méthodes de lyse, purification
Analyse : GC-MS, immuno-essais, LC-MS
Interprétation : relation dose-effet, impact sur développement
Chapitre 11 – Effets du climat et données spatiales
Changements climatiques : impact sur développement et PMI
Modélisation SIG : distribution d’espèces nécrophages
Scénarios extrêmes : sécheresse, inondation
Adaptations évolutives : espèces invasives
Chapitre 12 – Admissibilité et rapport d’expert
Normes Daubert & Frye : critères d’admission des preuves entomologiques Ces critères relèvent des contextes judiciaires qui les appliquent ; ils ne sont pas présentés comme une règle universelle.
Rédaction : structure IMRaD, annexes, rigueur scientifique
Témoignage : préparation, cross-examination
Gestion des preuves : chaîne de possession intégrale
Chapitre 13 – Éthique et déontologie
Prélèvements humains : consentement, règlementations légales
Impartialité : conflits d’intérêt, financement
Biodiversité et conservation : impact des prélèvements
Confidentialité : données sensibles des enquêtes
Chapitre 14 – Innovations et perspectives
Imagerie 3D & drones : collecte automatisée de terrains
Omics & métagénomique : détection simultanée de communautés
Intelligence artificielle : reconnaissance d’espèces, prédiction PMI
Défis futurs : législation internationale, bioéthique, collaboration globale
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références (Livres et polycopiés, sites internet, etc)
- Biologie moléculaire 24 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 50h00
Évaluation: contrôle continu 40% · examen 60%
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S3Biologie moléculaire 2Repères
Connaissances préalables recommandées
Génétique, Expression des gènes, signalisation et communication cellulaire, biodiversité.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
Cette unité d’enseignement porte trois parties. L’objectif de la première partie est d’expliquer les mécanismes de synthèse et de l’action des ARN interférents et mettre le point sur leurs intérêts et applications. Le but de la deuxième partie est d’expliquer les différents mécanismes de régulation de l’expression des gènes. La troisième partie vise à décrire les différents outils de la biologie moléculaire utilisés pour étudier la diversité génétique des espèces.
Programme
Contenu de la matière
Partie 1/ Interférence ARN
1/ Historique et mécanismes fondamentaux de l’interférence ARN
1. Historique de l’interférence ARN
2. Mécanismes fondamentaux de l’interférence ARN
2.1. siARN
2.1.1. Biosynthèse
2.1.2. Mécanisme d’action
2.2. miARN
2.2.1. Biosynthèse
2.2.2. Mécanisme d’action
2.3. piARN
2.3.1. Biosynthèse
2.3.2. Mécanisme d’action
II/ Conséquences pratiques pour la conception d’un siARN
1. Influence des propriétés intrinsèques du siARN
2. Limites imposées par le transcrit cible
III / intérêts de l’interférence ARN
1. Un outil pour la compréhension de la fonction des gènes
2. Un outil pour de nombreuses applications en thérapeutique
IV/ Contraintes associées à la transfection de courtes séquences d’acidesnucléiques
1. La stabilité des ARN interférents
2. La biodistribution
Partie 2/ Régulation de l’expression des gènes
Régulation de la transcription
Régulation de la transcription chez les procaryotes
Qu’est-ce qu’un opéron ?
Opéron catabolique inductible négativement et positivement régulé (exemple : l’opéron lactose chez E. coli)
Opéron anabolique répressible (exemple : l’opéron Tryptophane chez E. coli)
Régulation par transformation d’un répresseur en activateur (exemple : l’opéron Arabinose (araBAD) chez E. coli)
Autres exemples d’opéron
Régulation de la formation du complexe ouvert
Régulation du passage à la phase d’élongation
Régulation de la transcription chez les eucaryotes
Régulation au niveau chromatinien
Acétylation, méthylation des histones
Méthylation de l’ADN
Eléments de régulation transcriptionnelle
Les classes de régulateurs transcriptionnels
Fonctionnement des protéines activatrices de transcription
Répresseurs transcriptionnels
Séquences régulatrices enhancers et les silencers
Extinction de gènes et régulation épigénétique
Régulation post-transcriptionnelle chez les eucaryotes
L’épissage alternatif
Régulation par des petits ARN
Régulation de la stabilité des ARNm chez les eubactéries
Les acteurs de la dégradation
Les exoribonucléases
Les endoribonucléases
L’ARN pyrophosphohydrolase (RppH)
Les mécanismes de dégradation des ARNm
La voie directe d’accès
La voie dépendante de l’extrémité5’
La voie exoribonucléolytique en 3’
Les mécanismes régulant la stabilité des ARNm
Régulation de l’activité et de la concentration des RNases
Les effets de la traduction
L’interférence par les ARNs
L’influence de la séquence des ARNm
Régulation de la stabilité des ARNm chez les eucaryotes
Les acteurs de la dégradation
Les exoribonucléases agissant en 3’ de l’ARNm
Les exoribonucléases agissant en 5’ de l’ARNm
Les endoribonucléases
Les mécanismes de la dégradation
Voie majoritaire
Voies alternatives
Les mécanismes régulant la stabilité des ARNm
Le complexe Lsm1-7
La régulation de la déadénylation
La régulation du complexe d’élimination de la coiffe
Les ARN interférents :miARN, siARN et piARN
Régulation de la traduction
Introduction
Régulation de l’initiation de la traduction chez les eubactéries
Régulation de l’accès au RBS
Régulation via les structures secondaires de l’ARNm
Régulation de l’initiation de la traduction chez les eucaryotes
Régulation via les facteurs d’initiation de la traduction
Hosphorylation du facteur d’initiation eIF2
Phosphorylation des protéines 4E-BP et disponibilité du facteur d’initiatione IF4E
Inhibition de l’initiation par les miARN
Régulation via les régions 5’-et 3’-UTR chez les eucaryotes
Régulation via les régions 5’-UTR
Interaction régions 3’- et 5’-UTR
Régulation via 3’-UTR
Les voies alternatives d’initiation
uORF
Initiation par une séquence IRES
Régulation au cours de l’élongation ou de la terminaison chez les eubactéries
Régulation au cours de l’élongation ou de la terminaison chez les eucaryotes
Régulation post-traductionnelle : la dégradation des protéines intracellulaires
Introduction
Les protéines chaperonnes (chaperonines)
Les enzymes protéolytiques
Ubiquitination des protéines
Protéasome
Dégradation lysosomale
Autophagie
Partie 3/ Apport de la biologie moléculaire à l’étude de la diversité génétique
Quelques notions
Biodiversité
Diversité génétique
Mesure de la diversité génétique
Marqueurs morphologiques
Marqueurs protéiques (biochimiques)
Marqueurs ADN (moléculaires)
RFLP
AFLP
Minisatellites
Microsatellites
SNP
Marqueurs d’ADNmt
Exemples d’applications
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Toxicologie forensique4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 50h00
Évaluation: contrôle continu 40% · examen 60%
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S3Toxicologie forensiqueRepères
Connaissances préalables recommandées
Chimie générale et organique ; Principes de base en analyse chimique , biologie cellulaire, physiologie et des notions élémentaires en statistiques.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
À l’issue de ce module, les étudiants seront capables de :
Comprendre les fondements et le rôle de la toxicologie forensique dans les enquêtes judiciaires.
Maîtriser les principes pharmacocinétiques (absorption, distribution, métabolisme, excrétion) appliqués aux substances toxiques.
Appliquer rigoureusement les méthodes analytiques (immuno-essais, GC-MS, LC-MS, AAS) pour détecter et quantifier drogues et poisons.
Réaliser des analyses post-mortem et de performance humaine (toxicité aiguë, éthylotest).
Interpréter les profils toxicologiques, évaluer la fiabilité des résultats et rédiger des rapports d’expert admissibles en justice.
Programme
Contenu de la matière
Chapitre 1 – Introduction à la toxicologie forensique
Ce premier chapitre définit la discipline, retrace son histoire (Orfila, Marsh, Stas-Otto) et précise les objectifs du toxicologue en contexte judiciaire :
Définitions et périmètre : toxicologie médicolégale, toxicologie de la performance, dépistage en milieux professionnels.
Rôle et organisation : place du toxicologue dans l’enquête, structure d’un laboratoire forensique.
Chaîne de possession : traçabilité et intégrité des preuves (CoC).
Accréditation et qualité : normes ISO 17025, bonnes pratiques de laboratoire.
Chapitre 2 – Principes de base et relation dose-réponse
On y aborde les concepts essentiels de la toxicité :
Toxicité aiguë vs chronique : différences et exemples cliniques.
Courbe dose-réponse : notion de DL₅₀, ED₅₀, indice thérapeutique.
Marge de sécurité et seuils légaux (alcoolémie, THC, opiacés) : distinguer les limites légales des seuils de sécurité biologique.
Équivalence pharmacologique : comparaison de molécules selon leur puissance.
Chapitre 3 – Pharmacocinétique (ADME)
Mécanismes d’entrée, de devenir et d’élimination des substances :
Absorption : voies orale et inhalée ; la voie intraveineuse court-circuite l’absorption.
Distribution : volume de distribution, fixation aux protéines plasmatiques.
Métabolisme : phase I (oxydations / cytochrome P450) et phase II (conjugaisons).
Excrétion : rénale, biliaire, pulmonaire (kₑ, t₁/₂).
Chapitre 4 – Échantillonnage et conservation
Ce chapitre traite de la collecte et du traitement des matrices biologiques :
Matrices classiques : sang (central vs périphérique), urine, salive, cheveux.
Matrices post-mortem : liquide céphalorachidien, tissus (foie, rein).
Conditions de prélèvement : choix des volumes, anticoagulants, température.
Conservation et transport : prévention de la dégradation, contrôle de la contamination.
Chapitre 5 – Titrimétrie et méthodes colorimétriques
La chimie classique retrouve son intérêt pour le dépistage rapide :
Titrages : acido-basiques, rédox (permanganate, dichromate), précipitations (argent).
Tests colorimétriques : Marquis, Duquenois-Levine pour drogues récréatives.
Limites analytiques : sensibilité, interférences, spécificité.
Applications historiques : premiers dépistages et évolutions vers l’instrumental.
Chapitre 6 – Immuno-essais (ELISA)
Les techniques immunologiques sont détaillées :
Principe de l’ELISA : formats sandwich, compétition, direct et indirect.
Performance : sensibilité, spécificité, seuils de détection.
Interférences croisées : actions matricielles, anticorps non spécifiques.
Automatisation et tests rapides : immunochromatographie (Tox-tab).
Chapitre 7 – GC-MS (Chromatographie-spectrométrie de masse)
La référence analytique pour de nombreux toxiques :
Phase gazeuse : colonnes capillaires, choix de la phase stationnaire.
Ionisation : électronique (EI) vs chimique (CI).
Analyseurs : quadrupôle, TOF, haute résolution.
Interprétation : spectres de fragmentation, bibliothèques (NIST).
Chapitre 8 – HPLC et LC-MS
Pour les composés polaires moins volatils :
Colonnes : phase normale vs inverse, particules monodisperses
Modes opératoires : isocratique, gradient
Détecteurs : UV/PDA, spectrométrie de masse
Préparation des échantillons : solid phase extraction (SPE), dérivatisation
Chapitre 9 – Spectroscopies atomiques et moléculaires
Mesure des métaux traces et caractérisation moléculaire :
AAS (Absorption atomique) : flamme vs four graphite.
ICP-MS : plasma induit, multi-élémentaire
Spectroscopie UV-Vis/IR : bandes fonctionnelles, quantification
AES (émission atomique) : sources d’excitation, plasma ; distinguer les lampes sources généralement utilisées en AAS.
Chapitre 10 – Analyses post-mortem
Spécificités de l’interprétation après décès :
Redistribution post-mortem : phénomènes et modèles
Choix des sites de prélèvement : fiabilité comparée (sang splanchnique vs périphérique)
Doses létales : variabilité interindividuelle
Exemples jurisprudentiels : analyses décisives en affaire criminelle
Chapitre 11 – Toxicologie de la performance humaine
Chapitre 12 – Validation de méthodes et statistique
Garantir la fiabilité des résultats :
Protocoles ISO 17025 : documentation, traçabilité
Validation interne : linéarité, précision, exactitude
Limites de détection et quantification : LOD/LOQ
Analyse de l’incertitude : propagation d’erreur
Chapitre 13 – Aspects légaux et éthiques
Cadre juridique de la preuve toxicologique :
Admissibilité : Daubert et Frye, exemples issus du droit américain, et non règles générales algériennes.
Responsabilité de l’expert : impartialité, conflits d’intérêt
Confidentialité et consentement : prélèvements, autopsies
Éthique de la publication : transparence, reproductibilité
Chapitre 14 – Études de cas et ateliers pratiques
Application des connaissances à des scénarios réels :
Dossier complet : de la scène à la cour (alcool mortel, surdosage médicamenteux)
Rédaction de rapports d’expert : structure, clarté, références
Simulations d’audience : témoignage, contre-interrogatoire
Retour critique : analyse des points forts et limites des méthodes
Évaluation
Évaluation des effets comportementaux :
Alcoolémie : modèle de Widmark, seuils légaux
Drogues psychotropes : stimulants, dépresseurs, hallucinogènes
Tests sur le terrain : sobriété, éthylotests électroniques
Impacts médicaux et légaux : aptitude à conduire, travail en hauteur
d) Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
e) Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Atelier Biologie Forensique (02)5 créditsCoefficient 3Volume semestriel: 60h00Cours / semaine: -TD / semaine: -TP / semaine: 04h00Autres heures: 80h00
Évaluation: contrôle continu 60% · examen 40%
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S3Atelier Biologie Forensique (02)Repères
Connaissances préalables recommandées
Formation de premier cycle en chimie analytique ou en biologie (spectroscopie, chromatographie, biologie cellulaire).
Objectifs
Objectifs :
Fournir aux participants les compétences pratiques et théoriques nécessaires pour conduire une enquête toxicologique complète, depuis la collecte et la préparation rigoureuse des échantillons biologiques jusqu’à l’interprétation et la présentation des résultats en justice.
Programme
Contenu de la matière
Atelier 1 – Analyse capillaire et folliculaire
Théorie : cinétique d’incorporation dans le cheveu, fenêtre de détection, facteurs de croissance.
Démonstration : décontamination chimique, extraction par incubation acide/solvant, purification.
TP : analyse par LC-MS/MS de cannabinoïdes et opiacés dans des mèches humaines simulées.
Atelier 2– Redistribution post-mortem
Principes : sites d’accumulation, gradient central-périphérique, facteurs influents (lipophilie, pH).
Étude de cas : comparaison de concentrations de barbituriques dans sang cardiaque vs fémoral.
Discussion : recommandations pour prélèvements (site, délai), impacts sur les rapports d’expertise.
Atelier 3 – Cyanure et autres poisons volatils
Théorie : toxicocinétique du cyanure, mécanisme d’action (inhibition cytochrome c oxidase).
Démonstration : distillation alcaline, dérivatisation et mesure par GC-FID/MS.
TP : échantillonnage de post-mortem (foie, sang), interprétation des résultats selon scenario incendie vs ingestion.
Atelier 4 – Isotopes stables pour traçabilité
Fondements : fractionnement isotopique, sources naturelles vs synthétiques.
Démonstration : préparation d’échantillons, mesure par IRMS (Isotope Ratio MS).
Étude de cas : différenciation de méthanol artisanal vs industriel, origine géographique de cocaïne.
Atelier 5 – Méthodes avancées pour drogues de synthèse
Théorie : défis analytiques des NPS (nouveaux psychotropes), métabolites, matrices complexes.
Webinar/Démonstration : utilisation de HRAM (High Resolution Accurate Mass) et screening non ciblé.
TP : analyse de panels simulés par LC-HRAM-MS, interprétation via bibliothèques spectra.
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 60 % ; Examen : 40 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Atelier d’Entomologie Forensique4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: -TD / semaine: -TP / semaine: 03h00Autres heures: 50h00
Évaluation: contrôle continu 60% · examen 40%
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S3Atelier d’Entomologie ForensiqueRepères
Connaissances préalables recommandées
Des connaissances en Biologie générale et une familiarité avec les techniques d’extraction d’ADN et de PCR.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
Cet atelier d’Entomologie forensique a pour objectif de former les participants aux méthodes clés de la discipline : collecte et préservation rigoureuses des insectes sur une scène de crime, identification morphologique et moléculaire, modélisation du développement larvaire pour estimer l’intervalle post-mortem (PMI) et analyse entomotoxicologique — afin de produire des expertises scientifiquement solides et juridiquement recevables.
Programme
Contenu de la matière
Atelier 1 : Collecte et préservation des insectes
Techniques de capture : utilisation de filets à mailles fines, pièges « pup tent », balayages au filet et aspirateur à insectes.
Préservation immédiate : immersion dans de l’éthanol 70 % vs congélation rapide, adaptation selon stade larvaire ou adulte.
Fiches de terrain et Chain of Custody : étiquetage interne/externe, contremarques, conditions environnementales (T°, humidité, pH du sol)
Atelier 2 : Élevage larvaire et modélisation thermique
Montage expérimental : trois chambres climatiques à 15 °C, 25 °C et 35 °C avec larves de Calliphora vicina .
Suivi des instars : mesures de longueur et diamètre toutes les 6 h, détermination des stades.
Traitement statistique : calcul de la somme des degrés-jours et corrélation avec les âges larvaires observés.
Atelier 3 : Identification morphologique et taxonomique
Clés de détermination : observation des caractères diagnostiques (antenne, trompe, sculpture alaire) sous loupe binoculaire.
Exercices de comparaison : mise en place de stations d’identification rapide pour 10 espèces courantes.
Démonstration ADN : court protocole d’extraction larvaire et amplification du gène COI (barcoding) pour validation.
Atelier 4 : Succession entomologique sur cadavre simulé
Modèle de décomposition : utilisation de blocs de viande placés en plein air, relevés journaliers des communautés.
Traitement des relevés : calcul des indices de diversité (Shannon, Simpson) et suivi des pics d’abondance des Diptera et Coleoptera .
Interprétation : comparaison avec bases de données locales pour affiner le PMI.
Atelier 5 : Entomotoxicologie
Extraction : protocole de lyse enzymatique et purification SPE pour isoler composés lipophiles.
GC–MS : paramètres chromatographiques (colonne, gradient, ionisation EI) et recherche dans bibliothèque NIST.
Analyse : calcul de concentration larvaire, discussion de l’impact sur le développement entomologique et la reconstitution des circonstances du décès.
Évaluation
Mode d’évaluation : Compte rendu : 60 % ; Examen : 40 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Anthropologie et victimologie criminelles1 créditsCoefficient 1Volume semestriel: 22h30Cours / semaine: 01h30TD / semaine: -TP / semaine: -Autres heures: 15h00
Évaluation: contrôle continu 40% · examen 60%
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S3Anthropologie et victimologie criminellesRepères
Connaissances préalables recommandées
Biologie humaine, ainsi qu’une introduction aux méthodes qualitatives et quantitatives en sciences humaines
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
Comprendre les fondements biologiques, sociaux et comportementaux du crime à travers l’anthropologie criminelle, tout en analysant les mécanismes de victimisation, la typologie des victimes et leur place dans le système judiciaire.
Programme
Contenu de la matière
Chapitre 1 – Introduction générale au module
Définitions des concepts clés : anthropologie criminelle, victimologie
Origine et évolution des disciplines
Intérêt et articulation dans le champ criminologique
Chapitre 2 – Histoire de l’anthropologie criminelle
De Cesare Lombroso aux approches modernes
Anthropométrie, phrénologie, typologies physiques
Évolutions critiques et dépassement des théories déterministes
Chapitre 3 – Bases biologiques et comportementales de la criminalité
Approches neurobiologiques, génétiques et hormonales
Liens entre cerveau, impulsivité et violence
Facteurs psychologiques et psychiatriques
Chapitre 4 – L’anthropologie du passage à l’acte
Processus de radicalisation criminelle
Dimensions culturelles et rituelles du crime
Crimes dans les sociétés traditionnelles vs modernes
Chapitre 5 – Typologies des délinquants
Délinquance juvénile, sexuelle, psychopathe, en col blanc
Études de profils
Aspects récurrents dans les parcours criminels
Chapitre 6 – Fondements de la victimologie
Naissance de la victimologie : Benjamin Mendelsohn, Hans von Hentig
Évolution vers une science autonome
Place de la victime dans le système judiciaire
Chapitre 7 – Typologie des victimes
Victimes primaires, secondaires, tertiaires
Victimes vulnérables : enfants, femmes, personnes âgées
Victimisation répétée et cumulée
Chapitre 8 – Facteurs de vulnérabilité et risques victimaires
Facteurs socio-économiques, environnementaux, comportementaux
Victimes d’abus de pouvoir, de violence conjugale, de traite
Liens avec les données épidémiologiques
Chapitre 9 – Victime et agresseur : dynamiques relationnelles
Notions d’interaction criminelle
Théories de la provocation et de la responsabilité partagée
Conséquences psychologiques sur les victimes
Chapitre 10 – Prise en charge des victimes
Accueil, écoute et accompagnement
Rôle des services médico-judiciaires et des associations
Réparation, indemnisation et justice restaurative
Chapitre 11 – Études de cas et analyses intégrées
Cas emblématiques de criminels étudiés en anthropologie
Affaires réelles de victimisation analysées de façon interdisciplinaire
Analyse comparative (victimes/criminels/société)
Chapitre 12 – Approches actuelles et perspectives
Apports des sciences forensiques et de la biologie
Victimologie numérique et cybercriminalité
Enjeux éthiques et place de la prévention
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Droits de Propriété Intellectuelle1 créditsCoefficient 1Volume semestriel: 22h30Cours / semaine: 01h30TD / semaine: -TP / semaine: -Autres heures: 15h00
Évaluation: contrôle continu 40% · examen 60%
Explorer la matière
S3Droits de Propriété IntellectuelleRepères
Connaissances préalables recommandées
Des connaissances de base en informatique.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
Fournir des connaissances de base sur les droits de propriété intellectuelle et leurs implications dans la recherche biologique et le développement de produits.
Se familiariser avec la politique de l’Algérie en matière de DPI.
Connaitre les différentes démarches pour le dépôt de brevet.
Comprendre pourquoi l'Algérie a adopté une politique en matière de DPI et se familiariser avec les grandes lignes de la réglementation en matière de brevets.
Comprendre les différents types de droits de propriété intellectuelle en général et la protection des produits issus de la recherche biotechnologique et les questions liées à la demande et à l'obtention de brevets.
Programme
Contenu de la matière
1. brevetage d'une invention
1.1. Introduction aux droits de propriété intellectuelle
1.2. Formes de droits de propriété intellectuelle
A. Propriété industrielle
- Brevet
- Conception
- Marque déposée
- Indications géographiques
B. Propriété non industrielle
- Copyright©
2. Histoire et évolution du droit des brevets
2.1. Évolution des lois sur les brevets
2.2. Histoire du système algérien des brevets
2.3. Conventions et traités internationaux
2.4. Lois sur les brevets dans d'autres pays
3. Classification des brevets
3.1. Classification des brevets en Algérie
3.2. Classification des brevets par l'OMPI
3.3. Catégories de brevets
3.4. Brevets spéciaux
3.5. Brevets de produits biologiques
4. Dispositions législatives générales pour les brevets en Algérie
4.1. Brevetabilité : Que peut-on breveter ?
4.2. Ce qui ne peut être breveté
4.3. À qui appartient le droit au brevet ?
4.4. Qu’est-ce qu’une invention de service ?
4.5. Unité de l’invention
4.6. Certificat d’addition
5. Procédures de demande et de délivrance du brevet d’invention
5.1. Dépôt
5.2. Examen
5.3. Délivrance
5.4. Maintien de la validité du brevet
6. Système national des brevets
6.1. Qu’est-ce que l’Institut National Algérien de la Propriété Industrielle (INAPI) ?
6.2. Formalités liées au dépôt d’une demande de brevet d’invention
7. Procédures de dépôt d’une demande de brevet à l’étranger
7.1. Comment protéger mon invention dans plusieurs pays ?
7.2. Qu’est-ce que le Traité de coopération en matière de brevets PCT ?
7.3. Quels sont les avantages du PCT ?
7.4. Procédure de dépôt d’une demande internationale selon PCT
8. Détenteur du brevet : droits et devoirs
8.1. Propriété du brevet
8.2. Droits du titulaire du brevet et des copropriétaires
8.3. Obligations du titulaire du brevet et des copropriétaires
8.4. Transfert des droits de brevet
8.5. Limitations des droits de brevet
8.6. Restauration des brevets
8.7. Violation des droits de brevet et infractions
8.8. Actions contre la contrefaçon : recours/recours
9. Brevet de formes de vie
14.1. Introduction
14.2. Critères d'attribution du brevet
14.2.1. Conditions préalables à la brevetabilité
14.2.2. Exigences essentielles pour la brevetabilité
14.3. Brevets de cellules et de lignées cellulaires
14.4. Brevet des gènes et des séquences d'ADN
14.4.1. Séquences utilisées pour les tests de diagnostic
14.4.2. Séquences utilisées comme outils de recherche
14.4.3. Séquences utilisées en thérapie génique
14.4.4. Séquences utilisées dans la production de protéines thérapeutiques
14.5. Brevets d'animaux
14.6. Protection des obtentions végétales
14.6.1. Brevets
14.6.2. Formes sui generis de protection des obtentions végétales : Union Internationale pour la Protection des Obtentions Végétales (UPOV)
14.6.3. Indications géographiques
10. Brevets en biopharmacie
10.1. Présentation
10.2. Produits pharmaceutiques et biopharmaceutiques
10.2.1. Différences entre les produits biologiques et les médicaments conventionnels
10.2.2. Biosimilaires et produits biologiques « interchangeables »
10.3. Nécessité d'une protection de la propriété intellectuelle des produits biopharmaceutiques
10.4. Protection par brevet pour les produits biologiques
10.4.1. Innovation incrémentale
10.4.2. « Evergreening »
10.5. Protection par brevet pour les diagnostics
10.6. L'impact de la protection par brevet dans les tests génétiques
10.7. Accords commerciaux internationaux sur les médicaments
Évaluation
Mode d’évaluation :
Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références (Livres et polycopiés, sites internet, etc)
Castle, D. (Ed.). (2009). The role of intellectual property rights in biotechnology innovation. Edward Elgar Publishing.
Ganguli, P. (2001). Intellectual Property Rights: Unleashing the Knowledge Economy. New Delhi: Tata McGraw-Hill Pub.
Goel, D., & Parashar, S. (2013). IPR, Biosafety and Bioethics. Pearson Education India.
Hennoun, M. La protection des droits de propriété intellectuelle et son incidence sur le développement en Algérie (Doctoral dissertation, Ecole Nationale Supérieure des Sciences Politiques).
http://e-services.inapi.org/SITE/?Rub=Page&ID=1
Lakhlef, S. (2016). Guide sur le Brevet D'invention _Procedures de dépôt en Algérie et à l'étranger.CENTRE DE RECHERCHE SUR L’INFORMATION SCIENTIFIQUE ET TECHNIQUE - CERIST
Nambisan, P. (2017). An introduction to ethical, safety and intellectual property rights issues in biotechnology. Academic Press.
- Bio-programmation 11 créditsCoefficient 1Volume semestriel: 22h30Cours / semaine: 01h30TD / semaine: —TP / semaine: —Autres heures: 10h00
Évaluation: contrôle continu 40% · examen 60%
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S3Bio-programmation 1Repères
Connaissances préalables recommandées
Notions élémentaires d’algorithmique (facultatif)
Savoir utiliser un ordinateur et naviguer dans un système de fichiers
Des connaissances en informatique, bio-informatique, biologie moléculaire et en génétique.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
Initier les étudiants en biologie aux bases de la programmation en Python niveau 1, dans le but de les rendre capables de structurer un code simple, manipuler des données et automatiser des tâches basiques en lien avec leur domaine scientifique.
Programme
Contenu de la matière
Introduction à la programmation
Qu’est-ce qu’un programme ? - Langages de programmation
Pourquoi choisir Python en biologie ?
Exemples d'applications en science
Installation et prise en main
Installation d’Anaconda
Premier script Python
Exécution de cellules, sauvegarde, commentaires
Variables et types de données
Types primitifs : int, float, str, bool
Les tuples, les ensembles, les listes, les dictionnaires
Opérateurs mathématiques et logiques
Expression & les instructions de bases (lecture, écriture, affectation)
Structures de contrôle
Instructions conditionnelles : if, elif, else
Opérateurs de comparaison
Structures répétitives
Boucles for et while
Instructions break et continue
Parcours de listes
Fonctions
Définir une fonction avec def
Paramètres et valeurs de retour
Fichiers
7..1. Lire et écrire des fichiers .txt et .csv
7.2. Méthodes open(), read(), write()
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Anglais pour biologistes — niveau intermédiaire1 créditsCoefficient 1Volume semestriel: 22h30Cours / semaine: 01h30TD / semaine: -TP / semaine: -Autres heures: 5h00
Évaluation: contrôle continu 40% · examen 60%
Explorer la matière
S3Anglais pour biologistes — niveau intermédiaireRepères
Prérequis
Connaissances élémentaires en anglais (niveau A2–B1).
Maîtrise des bases de la grammaire anglaise (temps simples et structures de phrase).
Objectifs
Objectifs du cours
Ce cours développe les compétences en anglais des étudiants (expression orale et écrite, compréhension orale et écrite) dans le contexte de la biologie criminalistique et des biotechnologies.
À l’issue du cours, les étudiants doivent pouvoir :
Comprendre et interpréter des textes scientifiques en biologie criminalistique et en biotechnologie.
Communiquer efficacement dans des contextes scientifiques académiques et professionnels.
Produire des écrits scientifiques et techniques structurés.
Participer à des débats sur la bioéthique, les biotechnologies et l’innovation criminalistique.
Programme
Contenu du cours
Unité 1 : Le monde scientifique et le travail dans les biotechnologies
Grammaire : present perfect et révision des temps de base.
Vocabulaire : métiers scientifiques et terminologie de l’emploi.
Lecture : les métiers rêvés des biotechnologies et des sciences forensiques.
Écoute : le rôle des biotechnologies dans les sciences forensiques.
Expression orale : mon futur métier en biologie criminalistique.
Écriture : rédiger une lettre de candidature pour un stage.
Unité 2 : Biologie criminalistique et enquête criminelle
Grammaire : auxiliaires do, be, have ; questions, négations et réponses courtes.
Vocabulaire : preuves forensiques et traces biologiques.
Lecture : les merveilles de la biologie criminalistique.
Écoute : comment les cellules biologiques contribuent à résoudre des crimes.
Expression orale : quiz de biologie et discussion d’une affaire criminelle.
Écriture : correction d’erreurs et court paragraphe descriptif.
Unité 3 : Bioéthique, biosûreté et responsabilité scientifique
Grammaire : présent simple pour les faits scientifiques.
Vocabulaire : données scientifiques et terminologie de la biosûreté.
Lecture : la bioéthique dans les sciences forensiques.
Écoute : la biosûreté dans les laboratoires forensiques.
Expression orale : débat sur les questions éthiques en biologie criminalistique.
Écriture : paragraphe scientifique mobilisant des données et le présent.
Unité 4 : Preuves, traces et interprétation scientifique
Grammaire : prétérit et expressions de quantité.
Vocabulaire : échantillons biologiques, résidus, particules et traces.
Lecture : comment les scientifiques reconstituent les scènes de crime.
Écoute : résoudre les crimes à l’aide de preuves microscopiques.
Expression orale : quelle quantité de preuves est suffisante ?
Écriture : rapport scientifique décrivant les méthodes et les résultats.
Unité 5 : Génie génétique et criminalistique moléculaire
Grammaire : modaux could, might, must et should.
Vocabulaire : outils d’analyse de l’ADN, modification génétique et génétique forensique.
Lecture : CRISPR et les organismes génétiquement modifiés en sciences forensiques.
Écoute : empreinte génétique obtenue à l’aide d’enzymes de restriction.
Expression orale : débat sur les risques et les bénéfices du génie génétique.
Écriture : paragraphe sur les usages détournés possibles des OGM dans des contextes criminels.
Unité 6 : L’avenir des biotechnologies et l’innovation criminalistique
Grammaire : formes du futur, conditionnels et propositions relatives.
Vocabulaire : innovation, technologies forensiques et startups biotechnologiques.
Lecture : CRISPR et les startups forensiques.
Écoute : l’intelligence artificielle en criminalistique et ses frontières juridiques.
Expression orale : le rôle futur du génie génétique dans les enquêtes criminelles.
Écriture : courriel au maître de stage décrivant un projet de laboratoire forensique.
Unité 7 : Biotechnologies appliquées à l’alimentation, à l’environnement et aux microalgues
Grammaire : conditionnels et discours rapporté.
Vocabulaire : enzymes, microalgues et applications biotechnologiques.
Lecture : produits à forte valeur ajoutée issus des microalgues.
Écoute : botanique forensique et affaires de criminalité environnementale.
Expression orale : biotechnologies et prévention de la criminalité environnementale.
Écriture : paragraphe scientifique utilisant les conditionnels et le discours rapporté.
Évaluation
Évaluation : contrôle continu 40 % ; examen final 60 %.
Références
Références : livres, polycopiés, sites internet, etc.
Parasites et micro-organismes forensiques
Analyses forensiques des produits alimentaires
Médecine légale
Bioinformatique
Atelier de biologie forensique (03)
Atelier de parasitologie et micro-organismes forensiques
UE de découverte
Lean Startup
Biostatistiques
UE transversale
Bio-programmation 2
Semestre 49 matières
- Parasites et micro-organismes Forensiques4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 55h00
Évaluation: contrôle continu 40% · examen 60%
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S4Parasites et micro-organismes ForensiquesRepères
Connaissances préalables recommandées
Des connaissances en Biologie cellulaire et moléculaire et en Microbiologie générale.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
Ce cours vise à former des spécialistes capables d’identifier, de caractériser et d’interpréter la présence de parasites (protozoaires, helminthes, arthropodes) et de micro-organismes (bactéries, champignons, virus) dans un contexte médico-légal, en maîtrisant tant les aspects biologiques (cycle de vie, pathogénie, écodynamique) que les techniques modernes (PCR, séquençage haut débit, métagénomique).
Programme
Contenu de la matière
Chapitre 1 - Généralités sur les parasites et leur intérêt en criminalistique
1.1 Notion de parasite
1.2 Grandes catégories de parasites
1.3 Cycle de vie et intérêt indirect en criminalistique
1.4 Parasites comme indicateurs biologiques
1.5 Parasites et trace forensique (premier lien avec le module)
1.6 Exemples simples (obligatoire pour compréhension)
Chapitre 2 - Généralités sur les bactéries et leur rôle en criminalistique
2.1 Notion de bactérie en contexte forensique
2.2 Microbiome humain et environnemental
2.3 Succession bactérienne
2.4 Bactéries comme indicateurs forensiques
2.5 Exemples simples
Chapitre 3 - Généralités sur les champignons et leur intérêt forensique
3.1 Introduction à la mycologie forensique
3.2 Champignons et décomposition
3.3 Champignons comme indicateurs environnementaux
3.4 Applications criminalistiques
3.5 Exemples simples
Chapitre 4 - Généralités sur les virus et leur rôle en criminalistique
4.1 Notion de virus
4.2 Virus comme traces biologiques
4.3 Virologie forensique
4.4 Bioterrorisme (introduction)
4.5 Exemples
Chapitre 5 - Agents biologiques atypiques (prions et entités non conventionnelles)
5.1 Introduction aux agents non classiques
5.2 Prions
5.3 Intérêt criminalistique
5.4 Cas réels
Chapitre 6 - Micro-organismes et environnement forensique
6.1 Notion de microbiome environnemental
6.2 Scène de crime comme écosystème
6.3 Transfert microbien
6.4 Applications
Chapitre 7 - Applications globales en criminalistique
7.1 Criminalistique humaine
7.2 Criminalistique animale
7.3 Criminalistique végétale
7.4 Criminalité environnementale
Chapitre 8 - Biocriminalité et bioterrorisme
8.1 Notion de biocriminalité
8.2 Agents biologiques dangereux
8.3 Enquête biologique
Chapitre 9 - Limites et interprétation des preuves biologiques
9.1 Fiabilité des preuves biologiques
9.2 Erreurs possibles
9.3 Admissibilité judiciaire
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Analyses Forensiques des Produits Alimentaires4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 55h00
Évaluation: contrôle continu 40% · examen 60%
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S4Analyses Forensiques des Produits AlimentairesRepères
Connaissances préalables recommandées
Microbiologie alimentaire, Sécurité alimentaire, Chimie alimentaire, Réglementations alimentaires et systèmes de contrôle
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
Au terme du cours, l'étudiant sera en mesure de maîtriser les diverses formes de criminalité alimentaire ainsi que leurs implications sur la santé publique et l'économie. Il saura analyser les méthodes de détection et de prévention de la fraude alimentaire, tout en développant des compétences en gestion des risques et en enquête alimentaire. De plus, il sera sensibilisé à l'importance de promouvoir la sécurité alimentaire et sera apte à participer activement à des campagnes de sensibilisation visant à informer et éduquer le public sur les pratiques alimentaires sûres.
Programme
Contenu de la matière
Chapitre 1 – Introduction à la criminalité alimentaire
Définitions : fraude alimentaire, falsification, adultération, tromperie.
Différence entre non-conformité, infraction et fraude délibérée.
Enjeux : santé publique, confiance des consommateurs, économie.
Chapitre 2 – Histoire et émergence de la criminalité alimentaire
Falsifications historiques (ex. : vin au plomb dans la Rome antique, lait à la mélamine).
Grandes affaires récentes : viande de cheval, œufs contaminés au fipronil, huile frelatée.
Influence de la mondialisation, industrialisation et logistique.
Chapitre 3 – Typologies de fraudes alimentaires
Substitution, dilution, falsification d’origine, addition d’additifs interdits.
Falsification de dates de péremption, étiquetage frauduleux, fausses allégations santé.
Contaminations volontaires vs involontaires.
Chapitre 4 – Filière agroalimentaire et points de vulnérabilité
Du champ à l’assiette : production, transformation, stockage, distribution.
Chaînes longues vs courtes : où se glissent les fraudeurs ?
Acteurs économiques impliqués et zones à risque.
Chapitre 5 – Techniques de falsification alimentaire
Falsifications courantes : ajout de colorants, substituts illégaux, dénaturation.
Faux produits bio, halal, AOP, IGP.
Cas spécifiques : huiles, vins, viande, miel, poissons, lait, épices.
Chapitre 6 – Conséquences sanitaires des fraudes alimentaires
Intoxications alimentaires, allergies, effets chroniques, cancérogénicité.
Études de cas : aflatoxines, dioxines, métaux lourds, pesticides illicites.
Populations vulnérables : enfants, femmes enceintes, immunodéprimés.
Chapitre 7 – Techniques d’analyse et de détection en laboratoire
Analyses physico-chimiques (GC-MS, HPLC, IR, RMN) et moléculaires (PCR). Précision : la PCR est une technique de biologie moléculaire.
Détection d’ADN d’espèces (fraudes sur origine animale/végétale).
Méthodes rapides (tests ELISA, chromatographie portable, capteurs).
Chapitre 8 – Enquête criminalistique et traçabilité
Constitution de la preuve : prélèvements, scellés, protocoles.
Systèmes de traçabilité (code-barres, blockchain alimentaire).
Rédaction du rapport expertal en cas de litige ou d’enquête.
Chapitre 9 – Cadre réglementaire et juridique de la sécurité alimentaire
Lois nationales et européennes (Règlement CE 178/2002, PAC, Codex Alimentarius). Ces textes et cadres sont de nature et de portée distinctes ; leur étude ne signifie pas leur application universelle.
Responsabilités des industriels et distributeurs.
Infractions et sanctions (pénales, civiles, administratives).
Chapitre 10 – Contrôle officiel et rôle des autorités de surveillance
Rôles de la DGCCRF, services vétérinaires, laboratoires de contrôle.
Audit, inspection, échantillonnage ciblé.
Cas de retrait, rappel, fermeture administrative.
Chapitre 11 – Criminalité alimentaire et commerce international
Règlementation à l’import/export.
Marchés noirs agroalimentaires.
Exemples de crises mondiales : contamination de riz, viande avariée exportée, faux miel chinois.
Chapitre 12 – Criminalité alimentaire et criminalité organisée
Mafias agroalimentaires (ex. : la mafia de la mozzarella, contrôle des marchés).
Blanchiment d’argent via le commerce alimentaire.
Enjeux géopolitiques et corruption.
Chapitre 13 – Prévention et technologies de lutte contre la fraude
Emballages intelligents, étiquettes inviolables, traçabilité numérique.
Vérification de l’authenticité (spectrométrie, signatures chimiques).
Innovation : IA, IoT, blockchain pour la sécurité alimentaire.
Chapitre 14 – Rôle des professionnels et sensibilisation des consommateurs
Devoirs des agriculteurs, transformateurs, distributeurs, restaurateurs.
Éducation du consommateur : lecture d’étiquettes, détection de produits suspects.
Associations de défense et lanceurs d’alerte.
Chapitre 15 – Études de cas, simulations et projet de lutte intégrée
Cas : lait frelaté en Chine, faux vins Bordeaux, saumon d’élevage trafiqué.
Simulation d’une enquête sur un produit suspect.
Élaboration d’un plan de prévention pour une entreprise agroalimentaire fictive.
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Médecine légale4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 55h00
Évaluation: contrôle continu 40% · examen 60%
Explorer la matière
S4Médecine légaleRepères
Connaissances préalables recommandées :
Connaissances de base en anatomie, biologie et notions générales de droit.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement :
Ce module vise à initier les étudiants aux principes fondamentaux de la médecine légale, en leur fournissant les connaissances nécessaires pour comprendre l'intervention médico-légale dans le cadre judiciaire. Il aborde les pratiques d'autopsie, l'analyse des lésions, la détermination des causes de décès et la collaboration entre experts médicaux et autorités judiciaires.
Programme
Contenu de la matière
Médecine légale générale
Introduction
Histoire de la médecine légale
La médecine légale dans le monde
Définition de la médecine légale
Définition
Les branches de la médecine légale
La vocation de la médecine légale
Rampart face au crime
La recherche de la vérité
Domaine d’application de la médecine légale
Chez les personnes vivantes
Urgences médico-judiciaires
Dommages corporels
Expertises en responsabilité (médicale, civile, pénale, etc.)
Chez les personnes décédées
La thanatologie : (autopsie, levée de corps etc.)
L’identification :(anthropologie, génétique etc.)
La toxicologie
Le rôle du médecin légiste
Le médecin légiste face à la société
Le médecin légiste face à la justice
La valeur de la preuve médico-légale
Les différents types de preuves matérielles
Les enjeux légaux et scientifiques relatifs aux preuves médico- légales
Médecine légale spécialisée
Introduction
La médecine légale traumatologique
Abrasion
Contusions
Plaies par armes blanches
Plaies contuses
Fractures
Ecrasement
Médecine légale infantile
Maltraitance
Infanticide
Mort subite du nourrisson
Médecine légale sexuelle
Outrage public à la pudeur
Attentat à la pudeur
Attentat pédérastique
Viol
Perversions sexuelles
Avortement
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références (Livres et polycopiés, sites internet, etc)
- Bioinformatique4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 55h00
Évaluation: contrôle continu 40% · examen 60%
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S4BioinformatiqueRepères
Connaissances préalables recommandées
Connaissances de base en informatique, biologie moléculaire et en Biochimie.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
L’objectif de ce cours est de fournir un enseignement théorique et pratique de l’usage des outils bioinformatiques et des bases de données spécifiquement appliqués à la biologie criminalistique, permettant de traiter et d’interpréter les données génétiques (STR, SNP, mtDNA) et protéiques issues de scènes de crime pour l’identification des individus, le profilage ADN, la reconstitution phylogénétique des souches pathogènes et la formulation de rapports d’expert.
Programme
Contenu de la matière :
Programme des cours :
Chapitre 1 – Fondamentaux et bases de données forensiques
11 . Informatique en biologie criminalistique : applications (profilage ADN, traçabilité des souches bactériennes)
Introduction à Unix/Linux : navigation, scriptage pour pipelines forensiques
Concepts de bases de données : schéma relationnel, indexation, métadonnées d’échantillons
Bases de données nucléotidiques et protéiques : GenBank, RefSeq, forensic STR database
Bases structurales : PDB, structures de protéines pathogènes et antigènes
Formats XML/DTD biologiques : formats d’échange (SBML, FASTA-XML)
Algorithmes de correspondance de motifs : recherche de repeats courts (STR)
Outils de recherche : BLAST, HMMER – contextes d’usage forensiques
Identification protéique à partir d’ADN : traduction, cadre de lecture et analyse peptidique
Recherche de séquences similaires : alignement local vs global, applications au génotypage
Utilisation des portails NCBI : interface, GEO, SRA, ClinVar
Outils publics et pipelines automatisés : Galaxy, Bioconda, Nextflow
Ressources EBI : ENA, UniProtKB et africa forensic data
Ressources web spécialisées : CODIS, Europol DNA databases
Exploration de bases de données : filtres, requêtes SQL simples et BioPython
Chapitre 2 – Analyse unitaire de séquences d’ADN criminelles
Bases de données de gènes humains : STR loci, Y-STR, mito-DNA
Soumission/recherche de séquences : dbSTR, YHRD
Alignement de séquence : principes, scoring matrices adaptées (forensic match)
Alignement pair-à-pair : BLASTn, Smith–Waterman pour profil STR
Découverte de motifs STR : détection automatique de repeats, catalogage d’allèles
Variants structurels locaux : indels, micro-variants STR et leur interprétation médico-légale
Assemblage de génomes bactériens : suivi d’une contamination (salmonella, bacille)
Chapitre 3 – Alignement multiple et phylogénétique forensique
Alignements multiples : CLUSTAL Omega, MUSCLE appliqués aux séquences STR multi-locus
Recherche flexible : FASTA3 pour divergences entre souches pathogènes
CLUSTALW/CLUSTALX : interfaces graphiques pour experts forensiques
Soumission de séquences alignées : SEQUIN, NCBI BankIt
Mise à jour & annotation : versions, tracking des modifications
Analyse phylogénétique : MEGA, construction d’arbres pour retracer source d’épidémie ou contamination croisée
Interprétation génétique : bootstrap, distances génétiques, clusters forensiques
Programme des Travaux Pratiques (5 ateliers)
Recherche de séquences : BLASTn sur loci STR humains, interrogation de GenBank & ForenSTR.
Conception d’amorces : Primer3 adapté aux courts repeats STR, vérification in silico des profils.
Simulation PCR & clonage : SnapGene pour multiplex PCR STR, insertion de fragments dans vecteurs.
Alignements : pair (BLAST) et multiple (CLUSTAL), analyse de profils ADN mixtes.Construction d’un arbre phylogénétique (outil : MEGA)
Arbre phylogénétique & annotation : MEGA pour profilage de souches, Geneious pour annotation.
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références (Livres et polycopiés, sites internet, etc)
- Atelier Biologie Forensique 35 créditsCoefficient 3Volume semestriel: 60h00Cours / semaine: -TD / semaine: -TP / semaine: 04h00Autres heures: 60h00
Évaluation: contrôle continu 60% · examen 40%
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S4Atelier Biologie Forensique 3Repères
Connaissances préalables recommandées
Les apprenants doivent avoir une bonne connaissance des bases en biologie moléculaire, microbiologie, toxicologie et droit sanitaire. Une familiarité avec les techniques de traçabilité (ADN, isotopie, profils microbiens) et les normes de sécurité alimentaire (HACCP, ISO, Codex Alimentarius) est souhaitable pour tirer pleinement parti de l’enseignement. Une culture générale sur les systèmes agroalimentaires et les mécanismes de contrôle qualité constitue également un atout.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
Ce module vise à sensibiliser les étudiants aux enjeux biologiques, juridiques et criminologiques liés aux fraudes et délits alimentaires. Il a pour but de former des professionnels capables d’identifier, d’analyser et d’interpréter des cas de falsification, de contamination volontaire ou accidentelle, de non-conformité sanitaire, ou de substitution frauduleuse dans les chaînes de production et de distribution alimentaires. L’approche est pluridisciplinaire : elle mobilise la biologie, la toxicologie, la traçabilité génétique, la microbiologie, la réglementation, et les outils d’enquête forensique. À l’issue du module, les étudiants seront capables de participer à une expertise en cas d’infraction alimentaire, de mener une investigation scientifique et de produire un rapport circonstancié.
Programme
Contenu de la matière
Ateliers 1 : Détection d’adultération dans les produits alimentaires (miel, lait, huile)
Tests d’authenticité du miel (solubilité, test à la chaleur, test à l’eau).
Détection de l’ajout d’amidon ou d’eau dans le lait.
Analyse de l’indice de peroxyde et d’acidité pour l’huile d’olive.
Interprétation en lien avec les pratiques frauduleuses.
Atelier 2 : Isolement et identification de micro-organismes pathogènes dans des échantillons alimentaires
Ensemencement de lait, viande ou jus sur milieux sélectifs (Salmonella, E. coli, Listeria).
Incubation, observation des colonies, coloration de Gram.
Interprétation microbiologique dans un contexte d’intoxication alimentaire.
Atelier 3 : Recherche de contaminants chimiques (pesticides, métaux lourds) dans les denrées alimentaires
Extraction de contaminants à partir de fruits, légumes ou céréales.
Détection qualitative de pesticides (ex : chromatographie sur couche mince – CCM).
Tests colorimétriques pour les métaux lourds (plomb, mercure).
Mise en lien avec la réglementation en vigueur.
Atelier 4 : Détection de viande frauduleuse par PCR (traçabilité ADN)
Extraction de l’ADN à partir d’échantillons de viande.
Amplification PCR avec amorces spécifiques (bœuf, cheval, porc, etc.).
Visualisation des produits par électrophorèse.
Interprétation des résultats dans un contexte d’étiquetage frauduleux.
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 60 % ; Examen : 40 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Ateliers Parasites et micro-organismes Forensiques4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: -TD / semaine: -TP / semaine: 03h00Autres heures: 50h00
Évaluation: contrôle continu 60% · examen 40%
Explorer la matière
S4Ateliers Parasites et micro-organismes ForensiquesRepères
Connaissances préalables recommandées
Une connaissance de base en microbiologie, parasitologie et biologie moléculaire est requise. Les étudiants doivent maîtriser les fondamentaux de la microscopie optique, les notions de cycle parasitaire, ainsi que les principes de la PCR et de la culture microbienne. Une sensibilisation préalable à la démarche criminalistique ou médico-légale est également souhaitée pour mieux contextualiser les travaux pratiques proposés.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
Cet atelier a pour objectif d’initier les apprenants aux méthodes d’analyse parasitologique et microbiologique appliquées aux sciences forensiques. Il vise à développer des compétences pratiques dans la détection, l’identification morphologique et moléculaire de parasites et de micro-organismes d’intérêt médico-légal, ainsi qu’à interpréter leur rôle dans le cadre d’une enquête criminelle ou sanitaire. Les apprenants apprendront à mobiliser ces connaissances dans des contextes variés : estimation du temps de mort, traçabilité environnementale, suspicion de biocriminalité, maltraitance ou intoxication parasitaire.
Programme
Contenu de la matière
Atelier 1 – Identification morphologique des parasites d’intérêt forensique
Atelier 2 – Micro-organismes bactériens dans les scènes criminelles
Atelier 3 – Fongiques Forensiques : les champignons comme traceurs biologiques
Atelier 4 – Techniques moléculaires appliquées à la parasitologie et à la mycologie forensique
Atelier 5 – Diagnostic comparatif sur scène simulée
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 60 % ; Examen : 40 %.
Références
Références (Livres et polycopiés, sites internet, etc)
- Lean Startup3 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: -TP / semaine: 01h30Autres heures: 20h00
Évaluation: contrôle continu 80% · examen 20%
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S4Lean StartupRepères
Connaissances préalables recommandée
Les étudiants sont censés posséder des connaissances préalables dans les domaines suivants :
Les fondamentaux de l’entrepreneuriat.
Les bases de la gestion de projet.
Les concepts liés à l’innovation et au développement technologique.
La méthodologie générale de recherche.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
Ce cours se concentre sur l’étude des concepts, méthodes et outils associés à la méthodologie du Lean Startup. Il met l’accent sur les mécanismes de création d’entreprises innovantes dans des environnements caractérisés par un haut niveau d’incertitude, à travers l’expérimentation, l’apprentissage rapide et la validation continue des hypothèses.
À l’issue de ce module, les étudiants seront capables de :
Comprendre les principes fondamentaux et la philosophie de la méthodologie Lean Startup.
Transformer une idée innovante ou un résultat de recherche en un projet d’entreprise viable.
Formuler et tester les hypothèses clés sous-jacentes à un projet entrepreneurial.
Concevoir et développer un Produit Minimum Viable (MVP).
Analyser les données du marché et prendre des décisions d’affaires éclairées.
Aligner l’innovation et la recherche scientifique avec les besoins du marché et les attentes des clients.
Le module adopte des approches pédagogiques modernes, notamment :
L’apprentissage par projet (Project-Based Learning – PBL).
L’apprentissage expérientiel.
Le travail en équipe pluridisciplinaire.
La simulation d’un écosystème de startup.
L’apprentissage basé sur la résolution de problèmes.
Programme
Contenu de la matière
I- Cours magistraux
L’université entrepreneuriale et l’Université 4.0
Évolution des universités de 1.0 à 4.0
Caractéristiques de l’Université 4.0
Transformation numérique et intelligence artificielle dans l’enseignement supérieur
Rôle des universités dans l’économie de la connaissance
Valorisation de la recherche scientifique
Transformation des résultats de recherche en startups
Les universités comme moteurs de l’innovation et du développement économique
Exemples internationaux d’universités entrepreneuriales : Massachusetts Institute of Technology (MIT), Stanford, Cambridge, Tsinghua, National University of Singapore (NUS), Technical University of Munich (TUM) et PSL University/Polytechnique (France) PSL et École Polytechnique sont des établissements distincts.
Écosystème de l’entrepreneuriat et de l’innovation en Algérie et à l’université
Définition de l’écosystème entrepreneurial
Acteurs clés de l’écosystème
Politique algérienne de soutien à l’innovation
Incubateurs et accélérateurs
Fonds d’investissement
Décision ministérielle 1275 (startups, micro-entreprises, brevets)
Incubateurs universitaires et centres de soutien technologique
Rôle de l’intelligence artificielle dans l’écosystème
Liaison entre l’université et l’environnement économique
Introduction aux startups et à la méthodologie Lean Startup
Différence entre entreprises traditionnelles et startups
Concept d’innovation
Incertitude dans les projets entrepreneuriaux
Origines de l’approche Lean Startup
Principes fondamentaux de la méthodologie
Apprentissage validé (Validated Learning)
Réduction du gaspillage
Cycle Construire–Mesurer–Apprendre (Build–Measure–Learn)
Comptabilité de l’innovation (Innovation Accounting)
Différence entre comptabilité traditionnelle et comptabilité de l’innovation
Mesure de la progression en contexte d’incertitude
Indicateurs d’apprentissage plutôt que d’indicateurs de profit
Compréhension du marché et découverte client
Étapes de création d’une startup : idée, équipe, prototype, investissement
Méthodologie de Steve Blank
Customer Development : compréhension du marché et du comportement des clients
Identification des problèmes
Analyse des besoins des clients
Entretiens entrepreneuriaux
Construction d’hypothèses
Problem–Solution Fit (adéquation problème–solution)
Business Model Canvas
Concept du Business Model Canvas
Proposition de valeur
Segments de clients
Canaux de distribution
Flux de revenus
Structure financière / structure de coûts
Produit Minimum Viable (MVP)
Concept du MVP
Types de MVP : numérique, expérimental, service, fake-door
Test des hypothèses
Prototypage rapide
Outils de développement de prototypes
MVP numériques et industriels
Comment mesurer l’échec dans le délai le plus court possible
Intelligence artificielle et TRIZ pour l’innovation
Intelligence artificielle dans l’entrepreneuriat
Génération d’idées
Analyse de marché
Développement de MVP
Marketing intelligent
Méthodologie TRIZ
Contradictions techniques
Résultat final idéal (Ideal Final Result)
Combinaison de l’IA avec TRIZ
Startups Deep Tech
Mesure, analytique et gestion de l’échec
KPI (indicateurs clés de performance)
Gestion des startups
Leadership des équipes d’innovation
Concepts de mesure de la croissance des startups
Métriques AARRR : méthode d’évaluation du développement des startups en cinq étapes :
Acquisition : comment atteignons-nous et attirons-nous les clients ?
Activation : l’utilisateur essaie-t-il le produit pour la première fois ?
Retention (rétention) : les utilisateurs reviennent-ils utiliser le produit ?
Revenu : le projet génère-t-il des revenus ? Distinguer le chiffre d’affaires du profit.
Referral (recommandation) : les utilisateurs recommandent-ils le produit à d’autres ?
Pivot ou persévérer
Concept de pivot : changement stratégique partiel ou complet
Concept de persévérer : continuer dans la direction actuelle
Quand faut-il changer de direction ?
Types de pivot
Indicateurs de prise de décision
Financement, croissance et mise à l’échelle
Financement initial
Autofinancement / bootstrapping
Investisseurs
Investisseurs providentiels (business angels)
Capital-risque (venture capital)
Financement participatif (crowdfunding)
Étapes de financement
Growth hacking
Moteurs de croissance (engines of growth)
II- Séances pratiques :
1 - L’université entrepreneuriale et l’Université 4.0
Étude de cas : pourquoi le MIT a réussi à créer des milliers de startups ?
Les étudiants réalisent une analyse :
La relation entre la recherche scientifique et l’innovation
Le rôle des séminaires et des accélérateurs
Les mécanismes de valorisation de l’innovation
La contribution de l’université dans l’économie locale
Travail demandé :
Identifier les éléments du modèle de l’université entrepreneuriale
Comparer les universités algériennes avec le MIT
Proposer un plan de transformation d’une université algérienne vers une Université 4.0
Atelier : Conception d’une Université Algérienne 4.0
Les étudiants sont répartis en équipes.
Chaque équipe conçoit :
un centre d’innovation
un incubateur d’entreprises
un accélérateur de projets
un centre de soutien technologique et d’innovation
une entreprise filiale
un fonds d’investissement universitaire
Puis, les étudiants présentent un plan organisationnel intégré et cohérent, représentant une feuille de route complète pour une Université 4.0.
2 - Étude de cas : parcours d’une startup algérienne
Sélectionner une startup algérienne ayant obtenu le label startup ;
Travail demandé :
Analyser les parties prenantes impliquées et leur rôle
Identifier les sources de financement
Représenter la cartographie du système environnemental (écosystème)
Proposer des outils pour accélérer sa croissance
Atelier : cartographie de l’écosystème entrepreneurial à l’aide de Miro ou Canva,
L’objectif est de permettre aux étudiants de comprendre les différents acteurs impliqués dans l’écosystème entrepreneurial et d’analyser leurs interactions.
Qu’est-ce que la cartographie de l’écosystème entrepreneurial ?
Il s’agit d’une représentation visuelle du système environnemental dans lequel une startup se crée, se développe et évolue.
Cette cartographie permet de montrer les différentes parties prenantes impliquées dans la création, le développement et l’accompagnement des projets entrepreneuriaux, ainsi que les relations et interactions entre elles.
Étape 1 : Identification des acteurs
Les étudiants doivent identifier les principaux acteurs présents dans l’écosystème, par exemple :
Universités et établissements de recherche
Incubateurs universitaires
Accélérateurs de startups
Entreprises et industriels
Institutions économiques et financières
Banques
Agences gouvernementales
Startups et porteurs de projets
Étape 2 : Organisation des acteurs en groupes
Il est possible de structurer les acteurs de l’écosystème en plusieurs catégories.
1. Axe de Production de la connaissance
Universités
Centres de recherche
Laboratoires scientifiques
2. Axe de formation, d’accompagnement et de soutien
Incubateurs
Accélérateurs de startups
Centres de soutien à l’entrepreneuriat
3. Axe de financement
Business angels (investisseurs providentiels)
Fonds d’investissement
Banques
4. Axe du marché
Institutions économiques
Clients
Partenaires industriels
5. Axe de régulation et d’organisation
Ministères
Instances gouvernementales
Agences nationales
Étape 3 : Création de la cartographie de l’écosystème
À l’aide de Miro ou Canva
Travail demandé :
Placer « l’entreprise innovante » au centre de la carte
Positionner les autres acteurs autour
Représenter la nature des relations entre les acteurs
Exemple de structuration :
Université → recherche → entreprise
Incubateur → accompagnement → startup
Investisseur → financement → entreprise
Institution économique / entreprise → marché
Étape 4 : analyse des relations
Chaque équipe doit répondre aux questions suivantes :
Qui sont les acteurs clés dans la réussite d’une startup ?
Quelles sont les relations manquantes dans l’écosystème ?
Comment renforcer la coopération entre universités et entreprises ?
Quels sont les obstacles rencontrés par les startups dans cet écosystème ?
Fin de la séance (atelier)
Chaque groupe doit présenter :
une carte de l’écosystème entrepreneurial
une explication des relations entre les acteurs
des propositions pour améliorer l’écosystème entrepreneurial en Algérie
Cet atelier ne vise pas uniquement à développer la connaissance théorique des acteurs de l’écosystème entrepreneurial, mais aussi à permettre aux étudiants de comprendre la réussite d’une startup en tant que système global.
L’idée est que la startup ne repose pas uniquement sur une idée, mais sur un réseau complet d’acteurs et de relations au sein de l’écosystème entrepreneurial.
Les étudiants doivent construire :
une cartographie des incubateurs
une cartographie des investisseurs
une cartographie des universités
une cartographie des instances gouvernementales
une représentation des relations entre ces acteurs
3 - Étude de cas : échec d’une startup technologique
Une startup a développé un produit complet sans validation préalable du besoin du marché.
Travail demandé :
Identifier les erreurs commises
Analyser les sources de gaspillage (waste)
Proposer une application de la méthodologie Lean Startup
Construire une version alternative du cycle Build–Measure–Learn
Atelier : analyse du cas Dropbox
Avant de développer le produit complet, l’entreprise a validé la demande du marché à travers une vidéo explicative simple.
Travail demandé :
Identifier les hypothèses de départ
Analyser le mécanisme de validation
Comparer le coût de l’expérimentation avec celui du développement complet d’un produit
4 - Étude de cas : plateforme d’intelligence artificielle pour les étudiants
L’équipe pédagogique estime que les étudiants ont besoin d’une plateforme d’assistance académique.
Travail demandé :
Formuler 10 hypothèses
Préparer un guide d’entretien
Réaliser 20 entretiens terrain
Extraire les problèmes réels
Atelier : entretiens entrepreneuriaux
Simulation d’entretiens
Les étudiants jouent différents rôles :
entrepreneur
client potentiel
investisseur
Travail demandé :
poser des questions pertinentes
simuler des échanges réalistes
analyser les réponses obtenues
5 - Étude de cas : une startup dans le domaine de la santé numérique
Fournir des consultations médicales à distance
Travail demandé :
Élaborer un modèle d’affaires complet incluant :
la valeur proposée
les clients
les revenus
les partenaires
Atelier :
Défi de 60 minutes
Chaque équipe présente un projet différent
Création d’un Business Model Canvas complet
Défense du projet devant un jury d’évaluation
6 - Étude de cas : application de validation intelligente
Défi d’équipe à ressources limitées
Travail demandé :
Concevoir un MVP à moindre coût
Identifier les hypothèses critiques à tester
Choisir le type de MVP le plus approprié
Définir des indicateurs de succès et d’échec
Atelier : construction d’un MVP réel
Les étudiants construisent un MVP fonctionnel à l’aide des outils suivants :
Figma
Glide
Bubble
Canvas
Les étudiants doivent développer un prototype initial pendant la séance ou le terminer à domicile.
7 - Étude de cas : startup d’agriculture intelligente
Augmentation de la production agricole tout en réduisant la consommation d’eau.
Travail demandé :
Identifier la contradiction technique
Appliquer les principes de la méthode TRIZ
Utiliser des outils d’intelligence artificielle (assistants d’IA générative) pour générer des solutions
Évaluer les solutions proposées
Atelier : AI Innovation Sprint
Durée : 90 minutes
Travail des étudiants :
Générer une idée innovante
Définir un MVP
Construire un modèle d’affaires
Utiliser uniquement des outils d’intelligence artificielle pour la génération d’idées
8 - Étude de cas : plateforme d’e-learning
Données :
10 000 visites
1 000 inscriptions
400 utilisateurs actifs
40 clients payants
Travail demandé :
Calculer les indicateurs AARRR disponibles et identifier les données manquantes de rétention, recommandation et revenus.
Identifier le point de blocage principal
Proposer des solutions d’amélioration
Évaluer les signes d’adéquation produit–marché sans considérer ces seuls effectifs comme une preuve suffisante.
Atelier : tableau de bord startup
Les étudiants doivent construire un dashboard incluant :
Acquisition
Activation
Rétention
Revenus
Recommandation
Burn Rate
Travail demandé :
interpréter les résultats
expliquer les forces et faiblesses du projet
proposer des actions correctives
9 - Étude de cas : Instagram
Analyse de la transition Burbn → Instagram
Travail demandé :
Identifier la raison du pivot
Identifier les données ayant soutenu la décision
Analyser les résultats obtenus
Proposer des alternatives stratégiques possibles
Atelier : simulation de conseil stratégique
Les étudiants simulent une réunion de comité de direction et analysent un dossier de startup incluant :
indicateurs de performance
avis clients
données financières
Les étudiants doivent prendre une décision collective :
Pivot
Persevere (persévérer)
Kill Project (arrêter le projet)
Toute décision doit être argumentée à l’aide de données et de statistiques.
10 -Projet semestriel : Startup Lab
Le projet pratique de fin de semestre s’étend sur toute la durée du module.
Il comprend :
Identification d’un problème réel
Customer Discovery (découverte client)
Business Model Canvas
Conception d’un MVP
Utilisation des outils IA et TRIZ
Analyse et mesure des résultats
Décision Pivot / Persevere
Plan de financement et de croissance
Présentation finale (Pitch)
Section supplémentaire présente dans le source : éthique et professionnalisme en psychologie criminelle
Normes éthiques dans la pratique
Responsabilités professionnelles
Limites et controverses
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 80 % ; Examen : 20 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc
The Lean Startup, 2011, Eric Ries
The Startup Owner’s Manual, 2012, Steve Blank, Bob Dorf
Running Lean, 2012, Ash Maurya
Business Model Generation, 2010, Alexander Osterwalder, Yves Pigneur
Value Proposition Design, 2014, Alexander Osterwalder, Yves Pigneur, Gregory Bernarda, Alan Smith
Traction: How Any Startup Can Achieve Explosive Customer Growth, 2015, Gabriel Weinberg, Justin Mares
Hooked: How to Build Habit-Forming Products, 2014, Nir Eyal
Lean Analytics, 2013, Alistair Croll, Benjamin Yoskovitz
Measure What Matters, 2017, John Doerr
High Output Management, 1983, Andrew S. Grove
The Hard Thing About Hard Things, 2014, Ben Horowitz
Prediction Machines: The Simple Economics of Artificial Intelligence, 2018, Ajay Agrawal, Joshua Gans, Avi Goldfarb
Competing in the Age of AI, 2020, Marco Iansiti, Karim R. Lakhani
The Innovation Algorithm: TRIZ, Systematic Innovation and Technical Creativity, 1999, Genrich Altshuller
TRIZ: The Theory of Inventive Problem Solving, 2003, Sergei Ikovenko
Why the Lean Start-Up Changes Everything, 2013, Steve Blank
Do Things That Don’t Scale, 2013, Paul Graham
Startup Playbook, 2018, Y Combinator
The State of AI in Business, 2023, McKinsey Global Institute
Artificial Intelligence Index Report, 2024, Stanford University
OECD Entrepreneurship and Innovation Policy Frameworks, 2022, OECD
- Biostatistique1 créditsCoefficient 1Volume semestriel: 22h30Cours / semaine: 01h30TD / semaine: -TP / semaine: -Autres heures: 15h00
Évaluation: contrôle continu 40% · examen 60%
Explorer la matière
S4BiostatistiqueRepères
Connaissances préalables recommandées
En mathématique, en informatique et en biostatistique
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
L'objectif de cette matière est d'initier les étudiants aux méthodes statistiques et de comprendre les principes sous-jacents, ainsi que des directives pratiques de « comment le faire » et « comment l'interpréter » des données statistiques en particulier pour les biosystèmes. A l'issue de ce cours, les étudiants doivent être capables de :
Comprendre comment résumer des données statistiques.
Appliquer des tests statistiques appropriés basés sur une compréhension de la question de l'étude, du type d'étude et du type de données.
Interpréter les résultats des tests statistiques et leur application dans les systèmes biologiques.
Programme
Contenu de la matière
Introduction : Bienvenu à l’univers R
Installation du logiciel
Principes de base de l'utilisation de R
Calcul de la moyenne et des écart-types
Analyse de la corrélation et de la régression
Représentations graphiques
Analyse de la variance (un facteur et deux facteurs) et de la covariance
Tests statistiques
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Bio-programmation 21 créditsCoefficient 1Volume semestriel: 22h30Cours / semaine: 01h30TD / semaine: —TP / semaine: —Autres heures: 10h00
Évaluation: contrôle continu 40% · examen 60%
Explorer la matière
S4Bio-programmation 2Repères
Connaissances préalables recommandées
Maîtrise des concepts de base de Python niveau 1.
Familiarité avec un environnement de développement (IDE comme PyCharm ou Jupyter).
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
L’objectif de cet enseignement est de consolider les bases de la programmation en Python, en révisant l’utilisation des variables, boucles, fonctions et fichiers, tout en initiant les étudiants à l’usage des bibliothèques scientifiques telles que NumPy, Pandas et Matplotlib appliquées aux problématiques biologiques. Il vise également à développer l’autonomie dans l’installation et l’importation de bibliothèques via Anaconda, à familiariser les étudiants avec les outils bio-informatiques et à les amener à réaliser un projet d’analyse ou de simulation.
Programme
Contenu de la matière
Manipulation de données avec NumPy
Utiliser des tableaux NumPy pour représenter des données biologiques (séquences, matrices).
Appliquer des opérations vectorielles et le slicing pour l’analyse de données.
Analyse de données biologiques avec Pandas
Lire et manipuler des fichiers CSV (ex : résultats PCR, dosages enzymatiques).
Trier, filtrer et regrouper des données pour l’analyse expérimentale.
Visualisation des données avec Matplotlib
Créer des graphiques (courbes, histogrammes) pour présenter des résultats biologiques.
Personnaliser des visualisations (titres, légendes, étiquettes).
Programmation Orientée Objet (POO)
Concepts fondamentaux (Comprendre les classes, objets, attributs et méthodes. Implémenter une classe simple.
Héritage et méthodes spéciales.
Introduction à Biopython
Lire et analyser des fichiers FASTA.
Extraire des informations de séquences ADN (longueur, contenu).
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
Génétique Moléculaire des Pathologies Humaines
Criminalité pharmaceutique
Expertise des Traces Physiques : Empreintes, Balistique & Micro‑traces
Cybercriminalité
Atelier Biologie Forensique (04)
Atelier Génétique Moléculaire des Pathologies Humaines
UE découverte
Psychologie Criminelle
Ingénierie inversée
UE transversale
English for Biologists – Advanced
Semestre 59 matières
- Génétique Moléculaire des Pathologies Humaines5 créditsCoefficient 3Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 70h00
Évaluation: contrôle continu 40% · examen 60%
Explorer la matière
S5Génétique Moléculaire des Pathologies HumainesRepères
Connaissances préalables recommandées
Bases en biologie cellulaire, génétique classique et techniques de biologie moléculaire.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
Ce cours vise à fournir une compréhension approfondie des mutations génétiques, des modes de transmission héréditaire et des mécanismes moléculaires des maladies génétiques. Il met en lumière les facteurs influençant l’expression des gènes, comme la pénétrance, l’expressivité variable et l’épigénétique, tout en soulignant leurs applications en biologie criminalistique. Les étudiants apprendront les techniques de détection des altérations génétiques, ainsi que les aspects éthiques et juridiques liés à l’utilisation des données génétiques dans le contexte médico-légal.
Programme
Contenu de la matière
Chapitre 1 : Fondements des mutations génétiques et transmission des pathologies humaines
Les types de mutations à l’origine des pathologies génétiques humaines
Altérations génétiques fines
Mutations ponctuelles
Substitutions : transition, transversion
Effets : faux-sens, non-sens, silencieuses
Insertions et délétions (indels) et ses conséquences
Mutations affectant l'épissage et des conséquences sur l’ARNm et la synthèse protéique
Anomalies chromosomiques
Anomalies de nombre
Anomalies de structure
Techniques de détection : caryotype, FISH, CGH-array
Origine des mutations génétiques
Mutations innées (constitutionnelles)
Mutations acquises
Mutations de novo
Modes de transmission des maladies génétiques
Transmission mendélienne classique
Autosomique dominante
Chorée de Huntington
Syndrome de Marfan
Autosomique récessive
Mucoviscidose
Phénylcétonurie
Transmission liée à l’X
Récessive : hémophilie, DMD, daltonisme
Dominante : rachitisme héréditaire cité. Le syndrome d’Alport, également cité, présente plusieurs modes de transmission : lié à l’X, autosomique dominant ou récessif.
Transmission mitochondriale
Neuropathie optique de Leber
Modes de transmission particuliers
Codominance
Empreinte parentale
Disomie uniparentale
Chapitre 2 : Les concepts modulant l’expression des maladies
Pénétrance
Définition
Types de pénétrance
Pénétrance complète
Pénétrance incomplète
Facteurs influents
Environnement,
Épigénétique
Expressivité variable
Variabilité des signes cliniques entre individus porteurs de la même mutation
Exemple : neurofibromatose de type 1
Maladies multifactorielles
Interaction entre génome et environnement
Diabète, schizophrénie, obésité, maladies auto-immunes
Maladies d’apparition tardive
Chapitre 3 : Approches moléculaires des pathologies et leur application en criminalistique
Épigénétique et pathologies
Principes de l’épigénétique
Mécanismes : méthylation de l'ADN, modifications des histones, ARN non codants
Impact de l’épigénétique sur les pathologies humaines
Influence de l’environnement (stress, alimentation, pollution) sur l'expression des gènes
Épigénétique et comportements criminels : étude critique des associations et des limites de l’inférence causale.
Associations étudiées entre épigénétique et comportements violents ou antisociaux, sans déterminisme biologique.
Études sur la relation entre traumatismes, stress post-traumatique et comportements criminels
Oncologie moléculaire et génétique du cancer
Bases moléculaires de l'oncogenèse
Mutations activatrices et inactivatrices : oncogènes et gènes suppresseurs de tumeurs
Instabilité génomique : rôle des anomalies chromosomiques dans le développement des cancers
Oncogénétique et identification des causes de décès suspectes
Pharmacogénétique et médecine légale
Principes de la pharmacogénétique
Variabilité interindividuelle dans la réponse aux médicaments
Étude des polymorphismes des gènes impliqués dans la réponse aux traitements médicamenteux
Pharmacogénétique et criminologie
Compréhension des effets des médicaments sur les comportements dans les enquêtes criminelles (empoisonnement ou surdosage)
Évaluer les risques de réactions extrêmes aux traitements et leurs effets comportementaux possibles ; une susceptibilité génétique ne démontre pas un comportement criminel.
Génétique moléculaire des pathologies humaines et la biologie criminalistique
Amélioration de l'identification des suspects et des victimes
Étude des comportements criminels et des troubles mentaux, dans les limites de l’inférence génétique.
Chapitre 4 : Méthodes d’exploration des lésions géniques et chromosomiques
Techniques classiques
PCR, qPCR, PCR, séquençage Sanger
Blots (Southern, Northern)
Technologies avancées
NGS : WGS, WES, panels ciblés, Puces à ADN
RNA-seq pour les troubles d’expression
CGH-array et FISH pour anomalies chromosomiques
Interprétation bio-informatique
Bases de données : ClinVar, HGMD, GnomAD
Outils prédictifs : SIFT, PolyPhen, MutationTaster
Chapitre 5 : Implications éthiques et juridiques des données génétiques
Diagnostic prénatal et postnatal : impact éthique et sociétal
Confidentialité et gestion des données génétiques
Génétique et responsabilité pénale
Influence des troubles génétiques sur les comportements
Dérives possibles de l’argument "gène du crime"
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références (Livres et polycopiés, sites internet, etc)
- Criminalité pharmaceutique4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 50h00
Évaluation: contrôle continu 40% · examen 60%
Explorer la matière
S5Criminalité pharmaceutiqueRepères
Connaissances préalables recommandées
Pharmacologie générale, Législation pharmaceutique, Chimie organique, Criminalistique
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
Ce cours aura pour objectifs, entre autres, d’initier l’étudiant aux principales infractions en rapport avec les produits pharmaceutiques et médicamenteux : malfaçon ; contrefaçon ; non-conformité ; vente illicite de produits médicamenteux ; falsification de documents sanitaires.
Programme
Contenu de la matière
Chapitre 1 – Introduction générale à la criminalité pharmaceutique
Définitions fondamentales : contrefaçon, falsification, sous-standard, médicament illicite.
Criminalité pharmaceutique vs criminalité organisée.
Présentation des enjeux sanitaires, économiques, géopolitiques et éthiques.
Chapitre 2 – Histoire et émergence du phénomène
Grands scandales historiques (ex. : Elixir Sulfanilamide, sirop de paracétamol frelaté).
Évolution des trafics pharmaceutiques avec la mondialisation.
Études de cas marquants en Afrique, Asie et Europe.
Chapitre 3 – La chaîne du médicament : étapes légales et failles exploitées
Fabrication, distribution, dispensation : les circuits officiels.
Points vulnérables à l'infiltration criminelle.
Le rôle des marchés parallèles et du e-commerce.
Chapitre 4 – Typologies et formes de médicaments falsifiés
Classification selon la nature de la fraude : absence de PA, dosage incorrect, mauvais excipients, etc.
Différence entre génériques et contrefaçons.
Profils types : médicaments falsifiés dans l’oncologie, infectiologie, cardiologie.
Chapitre 5 – Techniques de falsification et circuits de production illicites
Moyens employés pour imiter les produits : emballage, marquage, formulations.
Usines clandestines et commerce de composants chimiques.
Connexions avec d'autres formes de criminalité (trafic d'organes, drogues, armes).
Chapitre 6 – Outils analytiques de détection en laboratoire
Méthodes de contrôle qualité : TLC, HPLC, UV, spectroscopie, spectrométrie de masse.
Utilisation des dispositifs portatifs sur le terrain (Raman, NIR, Minilab).
Protocoles d’échantillonnage, conservation, documentation.
Chapitre 7 – Impact sanitaire et toxicologique des médicaments falsifiés
Intoxications, décès, résistances antimicrobiennes.
Cas concrets : faux antipaludiques, insulines, vaccins.
Répercussions sur les systèmes de santé publique.
Chapitre 8 – Investigations criminalistiques et médico-légales
Prélèvements, saisies, conditionnement des preuves pharmaceutiques.
Analyse comparative (produit suspect vs produit original).
Rédaction de rapports d’expertise médico-légale.
Chapitre 9 – Lutte contre la criminalité pharmaceutique sur le plan juridique
Textes de loi et qualifications pénales.
Responsabilité civile, administrative et pénale.
Jurisprudences et exemples de sanctions.
Chapitre 10 – Réglementations nationales et internationales
Cadres juridiques OMS, OMC, OMPI, EMA, FDA.
Directives européennes (ex. : sérialisation).
Harmonisation des lois entre pays (coopération transfrontalière).
Chapitre 11 – Interventions des agences spécialisées et opérations internationales
Présentation d’agences : OMS, Interpol, ONUDC, Europol, DGCCRF.
Opérations marquantes : Pangea, GPHF, Rapid Alert System.
Limites et obstacles dans la lutte à l’échelle mondiale.
Chapitre 12 – Criminalité pharmaceutique et cybercriminalité
Vente de médicaments sur le dark web.
Réseaux sociaux, pharmacies en ligne illégales.
Outils numériques de traçabilité (blockchain, e-prescription, QR codes).
Chapitre 13 – Technologies et innovations de sécurisation des médicaments
Techniques anti-contrefaçon : hologrammes, numéros de série, RFID.
Sérialisation et traçabilité logistique.
Plateformes d’authentification pour professionnels et consommateurs.
Chapitre 14 – Prévention, sensibilisation et rôle des professionnels de santé (3h)
Éducation des prescripteurs et pharmaciens.
Campagnes de sensibilisation auprès des patients.
Signalement des produits suspects.
Chapitre 15 – Études de cas, simulations et exercices pratiques (3h)
Études de cas : faux antituberculeux, affaire Avastin, sirops pédiatriques toxiques.
Simulation d’analyse d’un produit suspect.
Élaboration d’un plan de lutte intégré dans un pays fictif.
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Expertise des Traces Physiques : Empreintes, Balistique & Micro traces4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: -TP / semaine: -Autres heures: 50h00
Évaluation: contrôle continu 40% · examen 60%
Explorer la matière
S5Expertise des Traces Physiques : Empreintes, Balistique & Micro tracesRepères
Connaissances préalables recommandées
Biologie, chimie, physique, droit et science forensique.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
Ce module a pour objectif de former les apprenants aux principes, méthodes et enjeux de l’analyse des traces physiques dans un contexte criminalistique : empreintes digitales, balistique et micro-traces (fibres, verre, peinture, etc.)
Programme
Contenu de la matière
Chapitre 1 – Introduction à la trace en criminalistique
Définition de la trace (selon Locard) : concept et typologie.
Valeur scientifique et judiciaire des traces.
Chaîne de custodie, conservation, transport.
Notion d’intelligence criminelle basée sur les traces.
Chapitre 2 – Scène de crime et gestion des traces physiques
Sécurisation et balisage d’une scène.
Stratégie de recherche des traces visibles et latentes.
Plan de prélèvement, documentation photographique.
Matériel de prélèvement : kits, gants, lumière forensique.
Chapitre 3 – Introduction à l'expertise dactyloscopique
Historique de l’identification par empreintes digitales.
Anatomie et formation des crêtes papillaires.
Types d’empreintes : latentes, moulées, visibles.
Classification des empreintes (Galton, Vucetich).
Chapitre 4 – Techniques de relevé et de révélation des empreintes
Poudres révélatrices (noires, magnétiques, fluorescentes).
Fumigation cyanoacrylate, ninhydrine, DFO, IND.
Techniques modernes : VMD, laser, lumière alternative.
Cas pratique : révélation d’empreintes sur différentes surfaces.
Chapitre 5 – Analyse et comparaison des empreintes digitales
Caractéristiques : delta, bifurcations, terminaisons. Distinguer le delta, caractéristique du motif, des minuties locales telles que bifurcations et terminaisons.
Méthode ACE-V (analyse, comparaison, évaluation, vérification).
Erreurs possibles et biais cognitifs.
Bases de données automatisées (AFIS, EURODAC).
Chapitre 6 – Notions de balistique : fondements et typologie
Balistique interne, externe, terminale.
Armes à feu : catégories, fonctionnement, types de projectiles.
Principes physiques : énergie cinétique, trajectoire.
Terminologie : ogives, douilles, percussion, rayures.
Chapitre 7 – Balistique forensique : traces et marques balistiques
Marquage du projectile par l’arme (rayures, stries).
Traces sur la douille (percuteur, extracteur).
Comparaison sous microscope balistique.
Fiches balistiques et banques de données (IBIS).
Chapitre 8 – Scène de crime et tir : interprétation et reconstitution
Tirs à bout touchant, à distance, en angle.
Analyse des trajectoires et projections.
Rôle des taches de sang en appui de la balistique.
Études de cas : meurtres, fusillades, suicides simulés.
Chapitre 9 – Résidus de tir (GSR) : détection et interprétation
Composition des résidus conventionnels mentionnés : plomb, baryum, antimoine.
Prélèvements : tampons, adhésifs, coton.
Analyse au MEB-EDX, spectrométrie.
Valeur probante, délais de détection.
Chapitre 10 – Introduction aux micro-traces : concepts et classification
Définition et intérêt criminalistique.
Microfibres, éclats de verre, peintures, terre, pollen, etc.
Transport primaire/secondaire, persistance, transfert.
Traces associatives vs traces indicatives.
Chapitre 11 – Fibres textiles : prélèvement et analyse comparative
Types de fibres : naturelles, artificielles, synthétiques.
Techniques d’analyse : microscope polarisant, IRTF, microspectrométrie UV-Vis.
Rédaction d’un rapport comparatif.
Études de cas : enlèvements, agressions.
Chapitre 12 – Traces de verre, peinture et plastiques
Caractéristiques physiques et chimiques du verre.
Fractures et reconstitution (fractographie).
Peintures automobiles : couches, pigments, analyse par GC-MS.
Identification des plastiques : pyrolyse, spectroscopie.
Chapitre 13 – Traces de semelles, chaussures et pneus
Types de traces : positives, négatives, tridimensionnelles.
Techniques de relevé : moulage, gélatine, électrostatique.
Bases de données (SICAR, SoleMate).
Comparaison manuelle et assistée par logiciel.
Chapitre 14 – Exploitation des traces dans l'enquête judiciaire
Corrélation entre traces physiques et hypothèse de crime.
Poids probatoire, pertinence, spécificité.
Communication avec magistrats, avocats, enquêteurs.
Rédaction du rapport d’expertise.
Chapitre 15 – Études de cas, simulations et erreurs d’interprétation
Études célèbres d’empreintes ou de balistique (ex : Madrid bombing).
Faux positifs, faux négatifs, erreurs humaines.
Démonstrations pratiques, résolution de scènes simulées.
Réflexion éthique et scientifique sur la fiabilité.
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Cybercriminalité4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 50h00
Évaluation: contrôle continu 40% · examen 60%
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S5CybercriminalitéRepères
Connaissances préalables recommandées
Informatique de base, Sécurité informatique, Réseaux informatiques, Analyse des données, Éthique en informatique.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
L’enseignement de la criminologie générale classique s’avère insuffisant au regard du développement de la technologie en ces temps modernes. L’internet est venu donner un moyen sophistiqué au criminel du savoir ou usant de celui-ci à des fins criminelles. La cybercriminalité est ainsi apparue avec une bonne longueur d’avance sur les pouvoirs judiciaires. Et l’objectif de l’enseignement de cette matière est de doter le criminologue et le criminologiste d’une formation spécialisée dans cette lutte contre le fait cybercriminel.
Programme
Contenu de la matière
Introduction à la cybercriminalité
Définitions et concepts de base
Historique et évolution de la cybercriminalité
Cadre juridique et réglementaire
Loi sur la cybercriminalité et réglementations internationales
Juridictions et compétences dans les affaires de cybercriminalité
Responsabilités légales des individus, des entreprises et des gouvernements
Techniques de piratage informatique
Ingénierie sociale
Logiciels malveillants (malware) : virus, vers, chevaux de Troie, ransomwares, etc.
Attaques par déni de service (DDoS)
Exploitation de vulnérabilités
Méthodes d'enquête et de lutte contre la cybercriminalité
Collecte et préservation des preuves numériques
Analyse forensique informatique
Collaboration entre les forces de l'ordre, les agences gouvernementales et les entreprises privées
Coopération internationale dans les enquêtes sur la cybercriminalité
Risques et menaces liés à la cybercriminalité
Vol d'identité et fraude en ligne
Espionnage industriel et cyberespionnage
Cyberterrorisme et guerre cybernétique
Attaques contre l'infrastructure critique (énergie, finance, santé, etc.)
Protection et prévention
Sécurité des réseaux informatiques
Sécurité des données et des systèmes d'information
Bonnes pratiques en matière de cybersécurité pour les individus, les entreprises et les organisations gouvernementales
Sensibilisation à la sécurité et formation des utilisateurs
Éthique et questions morales
Impacts sociaux et éthiques de la cybercriminalité
Responsabilité des professionnels de la sécurité informatique
Débats sur la vie privée, la surveillance et la liberté d'expression en ligne
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 100 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Atelier Biologie Forensique (04)5 créditsCoefficient 3Volume semestriel: 60h00Cours / semaine: -TD / semaine: -TP / semaine: 04h00Autres heures: 60h00
Évaluation: contrôle continu 60% · examen 40%
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S5Atelier Biologie Forensique (04)Repères
Connaissances préalables recommandées
Notions en biologie moléculaire, chimie analytique, et manipulation des indices en contexte forensique.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
Acquérir les bases pratiques de l’analyse des traces physiques (empreintes, micro-traces, balistique) et de la criminalité pharmaceutique, en lien avec l’identification, la traçabilité et l’authentification des preuves.
Programme
Contenu de la matière
Atelier1 — Étude des empreintes digitales et génétiques
Atelier 2 — Recherche et interprétation de micro-traces biologiques associées
Atelier 3 — Micro-traces et balistique (Initiation)
Atelier 4 — Criminalité pharmaceutique : identification de contrefaçons
Atelier 5 — Traçabilité et authentification de produits pharmaceutiques
Évaluation
Mode d’évaluation : Compte rendu : 60 % ; Examen : 40 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc
- Atelier de Génétique moléculaire des pathologies humaine4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: -TD / semaine: -TP / semaine: 03h00Autres heures: 50h00
Évaluation: contrôle continu - · examen 100%
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S5Atelier de Génétique moléculaire des pathologies humaineRepères
Connaissances préalables recommandées
Des connaissances en biologie moléculaire et en génétique.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
L'objectif de cet atelier est de familiariser les étudiants avec diverses techniques fondamentales de biologie moléculaire, en particulier celles basées sur la réaction de polymérisation en chaîne (PCR), telles que la PCR-RFLP, la PCR multiplex et la PCR allèle spécifique. L’atelier abordera également plusieurs applications pratiques de ces techniques chez les eucaryotes, notamment pour le diagnostic des maladies héréditaires, la détection de polymorphismes génétiques et l’établissement de liens de parenté.
Programme
Contenu de la matière
Atelier 1 : Extraction de l’ADN génomique humain (technique salting-out ou avec Kit)
Atelier 2 : Tests quantitatifs et qualitatifs des ADN extraits
Atelier 3 : PCR Allèle Spécifique
Atelier 4 : PCR -RFLP
Atelier 5 : PCR Multiplex
Atelier 6 : PCR-SSCP
Atelier 7 : qPCR
Évaluation
Mode d’évaluation : Compte rendu : 60 % ; Examen : 40 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc
- Psychologie criminelle2 créditsCoefficient 1Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 25h00
Évaluation: contrôle continu 40% · examen 60%
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S5Psychologie criminelleRepères
Connaissances préalables recommandée
Des connaissances en Psychologie
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
Comprendre les motivations, les comportements et les facteurs psychologiques sous-jacents au comportement criminel, ainsi que développer des stratégies pour prévenir la criminalité et réhabiliter les délinquants.
Programme
Contenu de la matière
Introduction à la psychologie criminelle
Définitions et domaines d'étude
Historique de la psychologie criminelle
Importance et applications pratiques
Théories de la criminalité
Théories biologiques
Théories psychologiques (psychodynamiques, cognitives, sociales)
Théories sociologiques
Approches intégratives
Facteurs psychologiques du comportement criminel
Troubles mentaux et criminels
Psychopathie et comportement antisocial
Développement de la délinquance
Méthodes de recherche en psychologie criminelle
Études longitudinales et transversales
Méthodes d'observation et d'entrevue
Techniques d'évaluation psychologique
Profilage criminel
Techniques de profilage
Cas d'étude et applications pratiques
Interventions psychologiques
Thérapies cognitivo- comportementales
Programmes de réhabilitation des délinquants
Prévention de la récidive
Éthique et professionnalisme en psychologie criminelle
Normes éthiques dans la pratique
Responsabilités professionnelles
Limites et controverses
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc
- Ingénierie inversée1 créditsCoefficient 1Volume semestriel: 22h30Cours / semaine: 01h30TD / semaine: -TP / semaine: -Autres heures: 15h00
Évaluation: contrôle continu 40% · examen 60%
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S5Ingénierie inverséeRepères
Connaissances préalables recommandées
Notions de biologie moléculaire, génétique, biochimie et bases en informatique scientifique.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
Ce module initie les étudiants aux principes fondamentaux du reverse engineering appliqué aux sciences du vivant, en mettant l'accent sur la compréhension et la reconstruction des systèmes biologiques complexes. Il couvre les notions de rétro-ingénierie technologique, les niveaux de maturité technologique (TRL), ainsi que les enjeux juridiques liés à la propriété intellectuelle. Les étudiants acquerront également des compétences pratiques en bioinformatique, en modélisation de réseaux biologiques, et en ingénierie de constructions génétiques. L'objectif est de former des biologistes capables de concevoir, simuler et optimiser des systèmes biologiques à l’aide d’approches intégrées et innovantes.
Programme
Contenu de la matière
Chapitre 1 : Principes et enjeux du Reverse Engineering en sciences du vivant
Concepts fondamentaux du Reverse Engineering
Définition et historique
Origine du concept en ingénierie mécanique, électronique, puis adaptation aux sciences du vivant.
Importance du RE dans la biologie moderne : comprendre, améliorer, reproduire.
Différences entre Reverse Engineering et Forward Engineering
Forward Engineering : processus de conception linéaire (de l'idée au produit).
Reverse Engineering : partir d'un produit existant pour en déduire la conception.
Applications industrielles
Maintenance et amélioration d'appareillages biologiques (PCR, séquenceurs).
Innovation compétitive : bio-impression, création d'outils diagnostics alternatifs.
Interopérabilité : compatibilité entre instruments, logiciels et bases de données.
Échelle TRL (Technology Readiness Level)
Présentation des 9 niveaux TRL
TRL 1 : Observation scientifique de base.
TRL 5 : Validation technologique en environnement pertinent.
TRL 9 : Système validé en environnement opérationnel.
Positionnement d’un projet biologique selon les TRL
Exemples : développement d’un test PCR rapide, production de vaccins expérimentaux.
Les moyens nécessaires pour franchir les TRL
Ressources humaines, matérielles, financières.
Planification des essais pilotes et pré-industriels.
Cadre juridique et propriété intellectuelle
Le droit à l’ingénierie inverse face aux brevets
Principe du fair use, DMCA, directives européennes.
Analyse comparative internationale
Tableau résumé :
Pays
Autorisation du RE
Restrictions principales
USA
Oui
Clauses contractuelles, DMCA
UE
Limité
Directives sur les logiciels
Gestion des risques juridiques
Rédaction de contrats clairs, clauses spécifiques RE, protections anti-contournement.
Limites légales
RE autorisé pour analyse et interopérabilité ; interdit pour copie/revente non autorisée.
Chapitre 2 : Approches intégrées de rétro-ingénierie, bioinformatique et modélisation des systèmes biologiques
Reverse Engineering des Systèmes Biologiques
Approche de déconstruction biologique
Décomposition de réseaux métaboliques et voies de signalisation.
Reconstruction fonctionnelle à partir de données expérimentales.
Exemples concrets
Réseaux de réponse au stress oxydatif.
Mécanismes moléculaires de l'apoptose.
Bioinformatique et Logiciels Libres en Sciences Biologiques
Introduction aux logiciels open-source
Biopython, RStudio, Galaxy pour bioanalyse.
Ateliers pratiques
Annotation génomique libre avec GenomeTools.
Analyse de séquences de gènes cibles avec FastQC et Clustal Omega.
Modélisation et Simulation en Biologie
Outils de simulation libre
COPASI pour la dynamique des systèmes biochimiques.
CellDesigner pour modéliser les réseaux de signalisation.
Mini-projets
Simulation de la dynamique d'un réseau d'inflammation.
Optimisation d’une voie métabolique via un modèle dynamique.
Reverse Engineering des analyses biologiques forensiques
Étude de kits ADN commerciaux et open source (STRait Razor).
Outils libres pour l’interprétation de profils ADN (Arlequin, STRUCTURE).
Atelier
Reconstruction d’une scène de crime virtuelle avec des outils libres.
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- English for Biologists – Advanced1 créditsCoefficient 1Volume semestriel: 22h30Cours / semaine: 01h30TD / semaine: -TP / semaine: -Autres heures: 5h00
Évaluation: contrôle continu 40% · examen 60%
Explorer la matière
S5English for Biologists – AdvancedRepères
Connaissances préalables recommandées
Connaissances de base en anglais
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
Cette matière développe les compétences des étudiants en communication écrite et orale en anglais.
Programme
Contenu de la matière
Unité 1 : Règles fondamentales de rédaction des manuscrits scientifiques
- Vue d’ensemble de la langue des manuscrits scientifiques
- Temps verbaux
- Grammaire
- Phrases
- Paragraphes
Unité 2 : Erreurs fréquentes à éviter dans la rédaction d’un manuscrit
Unité 3 : Soutenance de thèse
- Qu’est-ce qu’une soutenance de thèse ?
- Comment commencer sa présentation ?
- Formuler la problématique et les objectifs de recherche
- Décrire les méthodes
- Décrire et discuter les résultats
- Conclusion et perspectives
- Travailler les transitions
- Comment conclure sa présentation ?
Unité 4 : Après le diplôme, quelle suite ?
- Définir ses objectifs professionnels
- Préparer un entretien d’embauche
- Rédiger son CV
- Rédiger une lettre de motivation
- Présenter une candidature à une bourse
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
Projet de fin d’études
Semestre 61 matière
- Projet de Fin d’Etudes30 créditsCoefficient 17Volume semestriel: 750Cours / semaine: 75TD / semaine: 225TP / semaine: 450Autres heures: -
Évaluation: contrôle continu 50 % · examen 50 %
Explorer la matière
S6Projet de Fin d’EtudesObjectifs
Objectifs du projet :
Les objectifs du projet de fin d’études sont de préparer les étudiants à s'adapter à l'environnement de la recherche et à comprendre comment les projets sont exécutés dans un laboratoire. Il permettra également aux étudiants d'apprendre les aspects pratiques de la Biologie Moléculaire et de former les étudiants à l'art de l'analyse et de la rédaction de thèses.
Résultats d'apprentissage des étudiants :
Les étudiants devraient être capables d'apprendre comment sélectionner et défendre un sujet de leur recherche, comment planifier, exécuter, évaluer et discuter efficacement leurs expériences. Les étudiants devraient être en mesure de démontrer une amélioration considérable dans les domaines suivants :
• Connaissance approfondie du domaine de recherche choisi.
• Capacité à intégrer de manière critique et systématique les connaissances pour identifier les problèmes qui doivent être traités dans le cadre d'une thèse spécifique.
• Compétence dans la conception et la planification de la recherche.
• Capacité à créer, analyser et évaluer de manière critique différentes solutions techniques.
• Capacité à mener des recherches de manière indépendante.
• Aptitude à appliquer des techniques analytiques/méthodes expérimentales.
• Compétences en gestion de projet.
• Compétences en rédaction de rapports.
• Des talents pour la résolution des problèmes.
• Compétences en communication et relations interpersonnelles.
Programme
Démarche méthodologique
Planification et réalisation d'expériences
Sur la base de la proposition de projet soumise au semestre précédent, les étudiants devraient être capables de, planifier et de s'engager dans une enquête critique indépendante, un projet de fin d’études en sciences biologiques criminalistiques. Ils devraient être en mesure d'identifier systématiquement la théorie et les concepts pertinents, de les relier aux méthodologies et aux preuves appropriées, d'appliquer les techniques appropriées et de tirer les conclusions appropriées. Les étudiants doivent être en mesure de travailler de manière indépendante et soient capables de comprendre le but de chaque expérience qu'ils réalisent. Ils devraient également être en mesure de comprendre les résultats possibles de chaque expérience.
Rédaction du manuscrit
À la fin de leur projet, un mémoire de fin d’étude doit être rédigé donnant tous les détails tels que l'objectif, la méthodologie, les résultats, la discussion et les travaux futurs liés à leur projet. Les étudiants peuvent viser à faire publier leurs résultats de recherche dans une revue à comité de lecture. Si les résultats de la recherche ont des résultats orientés vers l'application, les étudiants peuvent déposer une demande de brevet.

