Immunotechnologie
Relier l’immunologie aux outils de diagnostic et aux biotechnologies.
L’immunotechnologie associe immunologie, biotechnologies et analyse de données. Elle forme à l’étude des mécanismes immunitaires et à leurs applications dans l’immunodiagnostic, la vaccinologie, les biothérapies et la bioproduction.

Responsable de spécialité
Dr Imène Belhassena
Département
Département du Second Cycle
Objectifs de la formation
Comprendre le système immunitaire, de la molécule à l’organisme, et les réponses innée et adaptative. Relier ces bases à l’immunologie clinique et aux applications technologiques, aux biothérapies et à l’innovation biomédicale.
Disciplines et enseignements
S1–S2 : immunologie fondamentale approfondie, biochimie métabolique, signalisation cellulaire, biologie moléculaire, immunogénétique et immuno-informatique. S3–S4 : immunotechnologie, culture cellulaire, immunophysiopathologie, génie génétique, génomique et protéomique. S5 : oncogenèse, neuro-immunologie, microbiome humain, biologie de synthèse, biostatistiques et atelier entrepreneurial. S6 : projet de fin d’études.
Compétences développées
Analyser les interactions antigène–anticorps et les tests qui en découlent ; choisir une méthode immunologique adaptée à une question biologique ; interpréter les résultats. Développer autonomie, organisation, communication scientifique et conduite de projets dans les biotechnologies.
Domaines d’application
Immunodiagnostic, vaccinologie, biothérapies et bioproduction.
Stages
Stages en laboratoire de recherche ou en entreprise.
Projet de fin d’études
Projet mobilisant les acquis scientifiques et pratiques.
Perspectives professionnelles
biotechnologies, industrie pharmaceutique, recherche, laboratoires d’analyse et développement de projets innovants.
Doctorat et recherche
La formation prépare à la recherche et à une candidature en doctorat selon les conditions d’accès et les offres ouvertes. À l’ESSBO, les formations doctorales en Biotechnologie et Santé et en Biotechnologie Microbienne prolongent l’environnement scientifique des sciences biologiques.
Votre parcours, semestre par semestre
46 matières affichées
Semestre 19 matières
- Immunologie Fondamentale Approfondie 15 créditsCoefficient 3Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 80h00
Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %
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S1Immunologie Fondamentale Approfondie 1Repères
Connaissances préalables recommandées : Notions d’immunologie.
Objectifs
Objectif de l’enseignement : Dans ce module l’étudiant approfondi les connaissances de l’immunologie en concentrant sur l'immunité innée et la réaction inflammatoire.
Programme
Contenu de la matière :
Cours
Partie I : Introduction à l’immunologie
Chapitre 1 : Concept de base en immunologie
Vue d’ensemble du système immunitaire
Notion d’antigène et structure de reconnaissance
Soi, Non soi, sélection clonale
Rôle et propriété du système immunitaire
Chapitre 2 : Structure et organisation générale du système immunitaire
Les organes lymphoïdes : localisation, structure et fonction
Les différentes cellules immunitaires : morphologie, fonction, marqueurs de différentiation
Partie II : Immunité innée et la réaction inflammatoire
Chapitre 1 : Immunité innée
Les cellules d’immunité innée et leurs récepteurs.
Chapitre 2 : Le système du complément
Les voies d'activation du complément
Les voies effectrices du système du complément
La régulation
Les récepteurs du complément
Complément et pathologies humaines
Exploration du système du complément
Chapitre 3 : Les lymphocytes NK (Natural Killer)
Les caractéristiques générales des cellules NK
L'origine et maturation des cellules NK
Les fonctions des cellules
Mécanisme de la reconnaissance de l’activation des cellules NK
Récepteurs des cellules NK
Implication dans l'immunité anti-tumorale
Chapitre 4 :Les neutrophiles
Introduction aux neutrophiles
Origine et développement des neutrophiles : de la moelle osseuse au foyer inflammatoire
Phénotypes et plasticité fonctionnelle des neutrophiles
Fonctions effectrices des neutrophiles
Chapitre 5 : Réactions inflammatoires
Introduction
Les différents éléments qui interviennent dans le processus inflammatoire.
Les différentes phases de l'inflammation
Les différents types de l'inflammation
Les marqueurs biologiques de l’inflammation
Traitement
Travaux dirigés
Série d’exercices surla réponse immunitaire innée et inflammation
Série d’exercices surle système du complément
Analyse d’articles scientifiques ou exposés
Évaluation
d) Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
e) Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
Les bases de l’immunologiefondamentale et clinique. Abul K. Abbas, Andrew H. Lichtman. Traduction de la 3e édition anglaise : Pierre L. Masson, 2008 ; 244 pages.
Immunologie fondamentale et immunopathologie, 2e édition, de l'ASSIM : Collège des Enseignants d'Immunologie, Elsevier Masson SAS; 2018.
Immunologie exercices QCM, questions de cours et problèmes résolus. Bruno Lemaître, Giovanna Clavarino, Bianca Petrignani, Ppur. 2020: 304 pages.
- Biochimie Métabolique et Régulation4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 55h00
Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %
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S1Biochimie Métabolique et RégulationRepères
Connaissances préalables recommandées : Biochimie structurale, enzymologie et biologie moléculaire.
Objectifs
Objectifs d'enseignement : Acquérir des connaissances approfondies du métabolisme des glucides, des lipides, des acides aminés et de ses régulations.
Programme
Contenu de la matière :
Cours
Partie I : Vue d’ensemble du métabolisme
Chapitre 1 : Carrefours métaboliques
Rappel des différentes voies métaboliques
Chapitre 2 : Bioénergétique
Rappels de thermodynamique
Mécanisme moléculaire et le transfert d’électrons de la chaine respiratoire mitochondriale
Chapitre 3 : Catalyse enzymatique
Structure et propriétés des enzymes
Nomenclature et Classification des enzymes
Mécanisme de l’action enzymatique
Cinétique enzymatique
Activité catalytique
Les enzymes allostériques
Partie II : Métabolismes et processus de régulation
Chapitre 1 : Régulation enzymatique et hormonale
Régulation enzymatique
Régulation hormonale et métabolique
Chapitre 2 : Métabolisme des glucides et des glycoconjugués
Métabolisme et régulation de la glycolyse
Régulation et pathologies du métabolisme du Glycogène
Transduction du signal et les transports membranaires
Autres voies du métabolisme des glucides
Chapitre 3 : Exploration du métabolisme des lipides
Organisation du métabolisme des lipides
Métabolisme des eicosanoides
Métabolisme des vitamines liposolubles
Régulation du métabolisme des lipides et des acides gras
Chapitre 4 : Métabolisme des aminoacides
Biosynthèse des acides aminés
Catabolisme de l'azote et du squelette carboné des acides aminés
Transformation des acides aminés en produits spécialisés
Chapitre 5 : Biochimie intégrative de la cellule
Radicaux libres et stress oxydatif
La biochimie du vieillissement
Métabolisme du tissu nerveux et régulation métabolique des synapses
Évaluation
d) Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
e) Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
Biochimie structurale et métabolique. Christian Moussard. 3e Édition. 2006 ; 352 pages.
Biochimie et biologie moléculaire. Christian Moussard. DE BOECK SUP. 2e Édition. 2020; 344 pages.
Biochimie métabolique. Sabine Meyer-Rogge et Kai Meyer-Rogge, De Boeck, 2012.
- Signalisation Cellulaire et Moléculaire4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 55h00
Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %
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S1Signalisation Cellulaire et MoléculaireRepères
Connaissances préalables recommandées : L’étudiant devra avoir les bases en biochimie, immunologie et en biologie cellulaire.
Objectifs
Objectifs d'enseignement : Cette matière a pour objectif de donner les bases de la dynamique membranaire, la compartimentation intracellulaire et son intégration dans la fonction cellulaire ainsi que la transmission des signaux intracellulaires à partir de ligands hydrophiles. Notions de modules et d’interconnexions de réseaux de signaling. Initiation à la génomique biochimique.
Programme
Contenu de la matière :
Chapitre I : Rappel sur l’organisation moléculaire des biomembranes
1. Structure des biomembranes
1.1. Asymétrie de composition et de répartition des lipides membranaires
1.2. Répartition des protéines membranaires
2. Fluidité membranaire
3. Mécanismes d’adressage
3.1. Trafic vésiculaire intracellulaire des protéines
3.2. Modifications post-traductionnelles des protéines
3.2.1. Lipidation
3.2.2. Glycosylation
Chapitre II : Récepteurs membranaires et molécules de signalisation intracellulaires
Récepteurs membranaires et leurs ligands
Caractéristiques des récepteurs
Classification des récepteurs selon leur localisation
1.2.1. Récepteurs nucléaires
1.2.2. Récepteurs membranaires
Types de récepteurs membranaires
1.3.1. Récepteurs canaux ioniques
1.3.2. Récepteurs couplés aux protéines G (GPCR)
1.3.3. Récepteurs à activité enzymatique intrinsèque
1.3.3.1. Récepteurs tyrosine kinase (RTK)
1.3.3.2. Récepteurs à activité sérine/thréonine kinase
1.3.4. Récepteurs à activité guanylatecyclase
1.3.5. Récepteurs couplés à une tyrosine kinase
1.3.6. Récepteurs couplés à une sérine/thréonine kinase
Schéma général d’une voie de signalisation
Réseau de molécules de signalisation intracellulaires
Principales protéines adaptatrices
Domaines d’interaction protéine-protéin
3.1.1.1. Domaines SH (Src Homology Domain)
3.1.1.2. Domaines PTB (PhosphoTyrosine Binding)
3.1.2. Protéines adaptatrices à domaines SH2
3.1.2.1. Protéine Grb2
3.1.2.2. Protéine Shc
Petites protéines G monomériques
3.2.1. Superfamille des protéines Ras
3.3. Protéines régulatrices associées aux petites protéines G
3.3.1. Protéines d’échange GEP (GTP/GDP Exchange proteins)
3.3.2. Protéine GAP (GTPase-ActivatingProteins)
3.4. Enzymes et Seconds messagers intracellulaires
3.4.1. Propriétés d’un second messager
3.4.2. Réactions de synthèse des seconds messagers et enzymes
3.4.2.1. AMPcyclique et adénylate cyclase
3.4.2.2. Diacyl glycérol (DAG), inositol triphosphate (IP3) et phospholipases C
3.4.2.3. Phosphatidyl inositol triphosphate (PIP2) et PI3-Kinase
3.4.2.4. GMPcyclique et guanylatecyclase
3.5. Protéines kinases
3.5.1. Réactions de phosphorylation et les domaines kinases
3.5.2. Principales protéines kinases
3.5.2.1. Protéine kinase A (PKA)
3.5.2.2. Protéine kinase C (PKC)
3.5.2.3. Protéine kinase B (Akt)
3.5.2.4. Mitogen-activated protein kinases (MAPK)
Chapitre III : Bases moléculaires de signalisation par les récepteurs Tyrosine kinase
Mécanismes d’activation des récepteurs Tyrosine kinase (RTK)
Dimérisation des récepteurs
Transphosphorylation des récepteurs
Activation de la cascade des Mitogen-ActivatedProteins kinases (MAP Kinases)
Facteurs de transcription activés par les MAP kinases : AP1 (Activator Protein-1)
Activation de la voie de la phosphatidyIinositol-3-kinase (PI3K)
Activité lipide kinase de la PI3K
Classes de la PI3K
Classe IA
Classe IB
Rôle des sous-unités de la PI3K
Mécanismes d’activation de la PI3K par les RTK
Activation directe
Activation par la protéine adaptatrice IRS (insulinreceptorsubstrate 1)
Activation par la protéine Ras
Recrutement de la PDK (Phosphoinositide-dependent kinase 1)
Activation de la protéine Akt (PKB)
Chapitre IV : Voies de signalisation par les récepteurs couplés aux protéines G
Protéines hétérotrimériques G
Structure des protéines G (sous-unités , et )
Les protéines G et sous-unités : s, i, q et12
Cycle d’activation/inactivation de la protéine G
Activation de l’adénylate cyclase par la sous-unité s de la protéine G
Activation de la phospholipase C (PLC) par la sous-unité q de la protéine G
4.1. Libération des seconds messagers : Diacylglycérol (DAG), inositol- triphosphate (IP3)
4.2. DAG et activation de la Protéine kinase C (PKC)
4.3. IP3 et mobilisation du calcium intracellulaire
Implication de la sous-unité de la protéine G dans l’activation de la PI3-Kinase
Facteurs de transcription CREB
Chapitre VI : Facteurs de transcription dépendant du signal
Classification simplifiée des facteurs de transcription
Facteurs de transcription constitutivement actifs
Facteurs de transcription régulés
Facteurs de transcription régulés par un signal membranaire
Facteurs à localisation nucléaire (C/EBP, AP1)
Facteurs à localisation cytoplasmique
STAT (Signal Transducer and Activator of Transcription)
SMAD (Sma et Mad)
NF-B (Nuclear Factor-B)
Activation des facteurs de transcription STAT par la voie des cytokines
Définition et classes de cytokines
Récepteurs couplés à une tyrosine kinase cytoplasmique JAK (Janus kinase)
Membres de la famille JAK
Activation des récepteurs par les kinases JAK
Transmission du signal par les STAT
Membres de la famille des STAT
Structure des protéines STAT
Activation des STAT et translocation vers le noyau
Activation de la voie JAK/STAT par l’IL-6
Activation de la voie JAK/STAT par l’IFN-
Activation des facteurs de transcription SMAD par le TGF-
Membre de la famille des SMAD
Structure des protéines SMAD
Voie canonique d’activation des SMAD par les Récepteurs sérine/thréonine kinase
Voie canonique d’activation du NF-B par l’IL-1 et le TNF-
4.1. NF-B
4.1.1. Membres de la famille du NF-B
4.1.2. Caractéristiques structurales du NF-B
4.1.3. Protéinesinhibitrices IB ( et )
4.1.4. Kinase IKK (IB kinase)
4.2. Activation du NF-B par l’IL-1
4.2.1. Complexe du récepteur de l’IL-1
4.2.2. Voie de signalisation de l’IL-1 MyD- dépendante
4.3. Activation du NF-B par le TNF-
4.3.1. Récepteurs du TNF-
4.3.2. Voie de signalisation par le récepteur de type 1 du TNF-
4.4. Gènes de réponse au NF-B
Chapitre V : Apports de l’intelligence artificielle dans l’étude des voies de signalisation cellulaire
Analyse des réseaux d’interactions protéiques avec STRING
Fonctionnement de STRING : sources de données, scores de confiance
Visualisation d’un réseau de signalisation (ex : voie MAPK)
Interprétation des connexions : protéines centrales, hubs, complexe
Enrichissement fonctionnel et exploration des voies avec ShinyGO
Concept de Gene Ontology (GO) et de pathways (KEGG, Reactome)
Analyse d’un jeu de données (liste de gènes/protéines)
Identification des voies de signalisation significativement enrichies
Prédiction de la structure 3D des protéines de signalisation avec AlphaFold
De la séquence à la structure : principes de la prédiction
Utilisation de la base AlphaFoldProtein Structure Database
Identification des domaines fonctionnels (ex : domaines kinases, SH2, etc.)
Cas pratique : visualisation d'une protéine clé dans PyMOL ou ChimeraX
Étude de cas intégrée : Voie PI3K-AKT
Reconstitution du réseau avec STRING
Enrichissement des fonctions associées avec ShinyGO
Visualisation de la structure d’AKT ou de PI3K via AlphaFold
Discussion : apport combiné des outils pour comprendre la régulation cellulaire
Limites, perspectives et ouverture vers la recherche
Limites des données et interprétation des résultats
Complémentarité avec les approches expérimentales
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
Communications et signalisations cellulaires, 4ème édition, Editeur lavoisier, ISBN : 978-2-7430-1508-4.
L’essentiel de la biologie cellulaire B. Alberts, D. Bray, K. Hopkin, A. Johnson, J. Lewis, M. Raff, K. Roberts, P. Walter, 3e edition, 2012.
Biologie moléculaire de la cellule B. Alberts, J. Wilson, 5e édition, 2011.
- Biologie Moléculaire 14 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 55h00
Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %
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S1Biologie Moléculaire 1Repères
Connaissances préalables recommandées
En biologie cellulaire, en biochimie et en génétique.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
Les étudiants devraient être capables d'acquérir des connaissances de base sur la structure et les propriétés des acides nucléiques et comprendre l’organisation des génomes et des gènes chez les procaryotes et les eucaryotes. L’objectif de cette matière est aussi d'apprendre les divers événements moléculaires impliqués dans la réplication et la transcription de l’ADN, ainsi que la traduction de l’ARN messager. Les mécanismes par lesquels l'ADN pourrait être endommagé et réparé y seront également détaillés.
Les étudiants seront également sensibilisés à l’intégration de l’intelligence artificielle (IA) en biologie moléculaire, afin de développer des compétences en analyse de données biologiques et encourager une approche interdisciplinaire innovante.
Programme
Contenu de la matière :
Introduction à la biologie moléculaire
Définition
Historique
Dogme central de la biologie moléculaire
Structure des acides nucléiques
1. Les composants chimiques des acides nucléiques
1.1. Les bases azotées
1.2. Les pentoses
1.3. Le groupement phosphate
2. Nucléosides, nucléotides
2.1. Liaison N-glycosidique et les différents nucléosides générés
2.2. Liaison phosphoester
2.3. Liaison pyrophosphate
2.4. Nomenclature
3. Polymérisation des nucléotides
3.1. Liaison phosphodiester et formation des polymères nucléotidiques
3.2. Conventions d’écriture
4. L’acide désoxyribonucléique (ADN)
4.1. Structure de l’ADN
4.2. Caractéristiques de la double hélice
4.3. Propriétés physico-chimiques de l’ADN
4.4. Structure tridimensionnelle (compaction), suprastructure.
5. Les acides ribonucléiques (ARN)
5.1. Structure et caractéristiques acides ribonucléiques
5.2. Les différents types d’acides ribonucléiques : synthèse et fonction
6. Manipulation des acides nucléiques
Exonucléases, endonucléases de restriction.
Organisation des génomes et des gènes
Définitions
Organisation des génomes
2. 1 Contenu des génomes
2. 2 Variabilité des génomes
2. 3 Ressemblance entre génomes
2. 4 Génome des procaryotes
ADN chromosomique
ADN extrachromosomique : les plasmides
2. 5 Génome des eucaryotes
Hétérogénéité des séquences d’ADN
ADN hautement répété
ADN moyennement répété
ADN non répété
ADN mitochondrial
2. 6 Plasticité des génomes et éléments transposables
Organisation des gènes
3. 1 Chez les procaryotes
3. 2 Chez les eucaryotes
3. 3 Différents types de gènes
Gènes à copie unique ; gènes de structure, gènes de régulation, pseudogènes et gènes de ménage.
Familles et superfamilles de gènes (homologues, paralogues, orthologues, xénologues)
Réplication de l’ADN
Généralités
Lois fondamentales de la réplication
2. 1. Réplication semi-conservative
2. 2. Origine de réplication
2. 3. Réplication bidirectionnelle
2. 4. Polymérisation unidirectionnelle
2. 5. Réplication semi-discontinue
2. 6. Amorce d’ARN (primer)
Les enzymes de la réplication
3. 1. Les hélicases
3. 2. Les topoisomérases
3. 3. La primase
3. 4. Les ADN polymérases
3. 5. L’ADN ligase
Les protéines de la réplication
La réplication chez les procaryotes
5. 1. Les différentes protéines mise en jeu
5. 2. Origines et terminaisons chez E-Coli
5. 3. Les étapes de la réplication procaryote
5. 4. Régulation de la réplication chez E-Coli
La réplication chez les eucaryotes
6. 1. Les ADN polymérases eucaryotes
6. 2. Les télomères et les télomérases
Histones et réplication
La réplication du matériel génétique des rétrovirus
Variations et maintenance du matériel génétique
Introduction
Lésions de l’ADN
Lésions endogènes
Erreurs de réplication
Tautomérisation
Dépurinations et dépyrimidations
Désaminations
Erreurs de méthylations
Lésions provoquées par des agents exogènes
Les lésions dues à des mutagènes physiques
Les lésions dues à des mutagènes chimiques
Prévention
Réponses cellulaires aux lésions de l’ADN
Réparation de l’ADN
Réparation immédiate
Réparation durant la réplication
Inversion directe photolyases
Inversion directe par alkyl transférases
Réparation secondaire
Réparation par excision de base (BER)
Réparation par excision de nucléotide (NER)
Réparation des mésappariements
Réparation des cassures par la recombinaison
Système SOS chez E. coli
Déficience de systèmes de réparation (quelques exemples)
Variations génétiques
Types de mutations ponctuelles
Selon la nature de la mutation
Mutation par substitution ; Mutation par délétion ; Mutation par addition
Selon la conséquence de la mutation
Mutation faux sens ; Mutation non-sens ; Mutation silencieuse ; Mutation Frameshift
Transcription de l’ADN
Généralités
L’unité de transcription
Notion de brin matrice et brin codant
Transcription chez les procaryotes
Initiation
Elongation
Terminaison
Terminaison rho-dépendante
Terminaison rho-indépendante
Maturation des transcrits primaires
Transcription chez les eucaryotes
Différence dans la transcription eucaryote
Les ARN-polymérases eucaryotes
Complexe protéique nécessaire à la transcription
Promoteurs eucaryotes
Initiation
Elongation
Terminaison
Maturation post-transcriptionnelle de l’ARNm chez les eucaryotes
Le coiffage
La poly-adénylation
Epissage
Traduction
Le code génétique
Les acteurs de la traduction
2.1. Les ribosomes (synthèse, structure et fonction)
2.2. Les ARNt (structure et rôle) et les aminoacyl-ARNt synthétases
Structure des ARNt et ARNt iso-accepteur
Chargement de l’acide aminé sur l’ARNt
Les différentes étapes de la traduction procaryote
3.1. Initiation
3.2. Elongation
a. Réaction de couplage
b. Formation de la liaison peptidique et libération du premier ARNt
c. Translocation
3.3. Terminaison
Les spécificités de la traduction eucaryote
Modifications post-traductionnelles
Définitions et exemples
La phosphorylation
L’acétylation et la méthylation des histones
Acétylation de p53
Introduction aux applications de l’intelligence artificielle (IA) en biologie moléculaire
Définition de l’IA et concepts clés (algorithmes, machine learning, deep learning)
Introduction aux bases de données biologiques (NCBI, Ensembl, UniProt)
Introduction aux outils : BLAST, Clustal Omega, AlphaFold
Introduction à l’utilisation de l’IA pour l’analyse des séquences ADN/ARN : alignement multiple, prédiction des structures secondaires
Introduction aux outils informatiques et d’IA utilisés pour l’annotation automatique des génomes (ex. : DeepGene, GeneMark)
IA pour la prédiction des promoteurs et d’épissage alternatif
Modélisation des structures protéiques, prédiction des sites actifs, simulation de la traduction.
Travaux dirigés :
Fiche TD 01 : Structure des acides nucléiques
Fiche TD 02 : Organisation des génomes et des gènes
Fiche TD 03 : Réplication de l’ADN
Fiche TD 04 : Variations et maintenance du matériel génétique
Fiche TD 05 : Transcription de l’ADN
Fiche TD 06 : Traduction de l’ARN messager
Fiche TD 07 : Applications de l’IA en biologie moléculaire :
Introduction aux bases de données biologiques, aux outils bioinformatiques et à l’IA (BLAST, Ensembl, AlphaFold)
Classer des séquences par similarité
Utiliser un outil simple d’alignement avec IA
Démonstration de base d’un algorithme d’apprentissage supervisé (ex : arbre de décision pour classer des mutations comme bénignes ou pathogènes)
Prédiction de structure d’ARN et de protéine avec outils IA accessibles en ligne
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Atelier de Biochimie5 créditsCoefficient 3Volume semestriel: 60h00Cours / semaine: -TD / semaine: -TP / semaine: 04h00Autres heures: 65h00
Évaluation: contrôle continu 100 % · examen —
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S1Atelier de BiochimieRepères
Connaissances préalables recommandées : Notions de base de chimie et de biochimie structurale
Objectifs
Objectifs de l’enseignement : Cet atelier permettra aux étudiants d’acquérir les principes des différentes techniques analytiques usuels en biochimie. Les notions de biosécurité sont abordées tout au long de l’atelier.
Programme
Contenu de la matière :
Contenu de la matière
Atelier 1 : Préparation des solutions :
- Rappel sur l’expression des concentrations (notions de molarité, molalité, normalité, dilution…)
- Les tampons (préparation, pKa, choix du tampon …ect)
- Manipulations de base : verrerie, volumes et pipetage
Atelier 2 : Méthodes de précipitation des protéines
-Effet du pH (pI)
- Précipitation par sels (salting-out)
- Précipitation par solvants (éthanol)
Atelier 3 : Dosage des protéines parméthodes spectrophotométriques
- Méthode de Lowry
- Méthode de Bradford
Atelier 4 : Chromatographie d’exclusion de taille
- Démonstration par séparation de molécules colorées (Bleu de dextran / Fluorescéine)
- Application à la purification de protéines
- Analyse des fractions collectées par spectrophotométrie
Atelier 5 : Chromatographie échangeuse d’ions
- Application à la purification de protéines du lactosérum
- Analyse des fractions collectées par spectrophotométrie
- Chromatographie d’affinité (IMAC : Enseignement théorique)
Atelier 6 : Electrophorèses des protéines en condition dénaturante : SDS-PAGE
-Tricine-SDS-PAGE (Electrophorèses des peptides : Enseignement théorique)
Évaluation
Mode d’évaluation : 100 % Contrôle continu.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Atelier de Chimie Pharmaceutique4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: -TD / semaine: -TP / semaine: 03h00Autres heures: 55h00
Évaluation: contrôle continu 100 % · examen —
Explorer la matière
S1Atelier de Chimie PharmaceutiqueRepères
Connaissances préalables recommandées : Connaissances fondamentales en chimie organique et en chimie analytique.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement : Cet atelier a pour objectifs d’initier les étudiants aux techniques fondamentales utilisées en chimie pharmaceutique (extraction liquide-liquide, distillation, recristallisation…) et de les familiariser avec les propriétés et les principales caractéristiques structurales des molécules organiques et ce par la mise en pratique des notions de bases acquises dans lors des enseignements théoriques de chimie en formation de base.
Les notions de biosécurité sont abordées tout au long de l’atelier.
Programme
Contenu de la matière :
Atelier 1 : Initiation aux travaux pratiques de la chimie pharmaceutique (mesure de sécurité, hygiène,…)
Atelier 2 : Titrage du chlore actif-préparation de solutés aqueux, soluté d’hypochlorite de sodium, Préparation d’une solution antiseptique
Atelier 3 : Obtention et identification de l’acide salicylique
Atelier 4 : Synthèse et Identification de l’aspirine
Atelier 5 : Extraction des huiles essentielles
Atelier 6 : Initiation à la galénique : fabrication de médicaments en officine (Gélule, Sirop, Suppositoire et Pommade)
Atelier 7 : Obtention et identification de l’acide hyaluronique
Évaluation
Mode d’évaluation : 100 % Contrôle continu.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Expérimentation Animale2 créditsCoefficient 1Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: -TP / semaine: 01h30Autres heures: 05h00
Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %
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S1Expérimentation AnimaleRepères
Connaissances préalables recommandées : Zoologie, Biologie animale, chimie.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement : Donnez aux étudiants les bases pour raisonner l’expérimentation animale ou des méthodes alternatives que ce soit d’un point de vue scientifique, réglementaire et éthique.
Les notions de bioéthique et de biosécurité sont abordées tout au long du semestre.
Programme
Contenu de la matière :
Cours
Chapitre 1 : Historique de l’expérimentation animale
Historique de l’utilisation des animaux dans la recherche.
Utilisation des animaux dans les différents domaines de la recherche.
Chapitre 2 : Aspects règlementaires et éthiques
Ethique de la recherche sur l’animal
Chapitre 3 : Hygiène et contrôle sanitaire d’une animalerie
Équipements et matériel d’animalerie : description, utilisation, entretien
Prévention des risques liés aux manipulations du laboratoire
Chapitre 4 : Les rongeurs (Rats et Souris)
Anatomie
Particularité des rongeurs
Comportement social des rongeurs / adaptabilité
Environnement : impact sur le bien être
Reproduction
Dominantes pathologies
Chapitre 5 : Les lagomorphes
Anatomie
Comportement
Elevage et reproduction
Dominantes pathologies
Chapitre 6 : Autres modèles animaux utilisés dans la recherche scientifique
Chapitre 7 : Techniques expérimentales
Contrôle des paramètres biologiques et de la validation des expériences
Techniques, méthodologie et procédés à suivre au cours des différentes phases
de l’expérimentation animale :
Techniques utilisées pour l’administration de substances : injections (S.C., IM, IV, IP).
Administration par voie orale (gavage).
Choix de la technique, volumes et fréquence d’administration.
Dissection
Techniques utilisées pour la collecte de données physiologiques : collecte de sang, urine, matières fécales, organes et tissus : choix de la technique, volume et fréquence.
La douleur chez l’animal au cours de l’expérimentation.
Euthanasie.
Chapitre 8 : Notion du modèle animal
Choix du modèle animal en recherche scientifique
Pertinence des modèles animaux et transgénèse
Limites d’utilisation d’un modèle animal
Méthodes alternatives : modèles cellulaires
Travaux pratiques
Séance 1 : Rats et souris ; Contention, gavage, injections,
Séance 2 : Méthodes de prélèvement
Séance 3 : Dissection, localisation et prélèvement des organes lymphoïdes
Séance 4 : Chirurgie animale
Séance 5 : Etapes de l’étude histologique (préparation des coupes histologiques et coloration).
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Techniques d’Analyse Biochimiques1 créditsCoefficient 1Volume semestriel: 22h30Cours / semaine: 01h30TD / semaine: -TP / semaine: -Autres heures: 02h30
Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %
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S1Techniques d’Analyse BiochimiquesRepères
Connaissances préalables recommandées : Notions de base de chimie, de biophysique et de biochimie.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement : Ce module permettra aux étudiants d’acquérir théoriquement les principes des différentes techniques de fractionnement et les différentes méthodes de séparation chromatographiques et électrophorétiques ainsi que les différentes techniques spectroscopiques.
Programme
Contenu de la matière :
Chapitre 1 : Techniques de séparation et de fractionnement
Techniques de séparation et de concentration par les membranes.
Techniques de fractionnement
Techniques de précipitation
Chapitre 2 : Techniques chromatographiques
Définitions et principes généraux de la chromatographie.
Classification des techniques chromatographiques
Description générale d’une séparation chromatographique et mécanismes mis en jeu
Autres types de chromatographie et le choix d’un système chromatographique.
Chapitre 3 : Techniques électrophorétiques
Electrophorèse (de zone)
Isoélectrofocalisation
Electrophorèse bidimensionnelle
Electrophorèse capillaire
Immuno-électrophorèse
Techniques de transfert sur les membranes : hybridation moléculaire (Southern blot, Northen blot, Western blot ….).
Chapitre 4 : Spectroscopie
Introduction aux techniques spectroscopiques.
Spectrophotométrie d’absorption moléculaire (UV-Visble)
Spectrométrie d’émission atomique
Spectrométrie d’absorption atomique
Fluorimétrie
Résonance magnétique nucléaire (RMN).
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et articles scientifiques, polycopiés, sites internet, etc
Giddings, J. C., Gudzinowicz, B. J., Snyder, L. R., Kaiser, R., & DEKKER, M. (1965). Chromatographic Science. Dynamics of Chromatography Part I Principles and Theory.
Glick, D. (1957). Methods of biochemical analysis, Volume V. Methods of biochemical analysis, Volume V.
Scott, R. P. (1995). Techniques and practice of chromatography (Vol. 70). CRC Press.
Heftmann, E. (Ed.). (2004). Chromatography: Fundamentals and applications of chromatography and related differential migration methods-Part B: Applications. Elsevier.
Maarouf A. (2002). Analyse instrumentale à l’usage des biologist.2ème édition Dar El Gharb.
Smith, I. (Ed.). (2013). Zone Electrophoresis: Chromatographic and Electrophoretic Techniques. Elsevier.
- Anglais pour les biologistes - Débutant1 créditsCoefficient 1Volume semestriel: 22h30Cours / semaine: 01h30TD / semaine: -TP / semaine: -Autres heures: 02h30
Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %
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S1Anglais pour les biologistes - DébutantRepères
Connaissances préalables recommandées : Prior knowledge of basic English
Objectifs
Objectifs de l’enseignement : The objective of this course is to provide students with a solid foundation for communicating (both written and spoken) in English.
Programme
Contenu de la matière :
Unit 1: Tell us about yourself
Grammar: Tenses (present, past, future). Question forms (where, what, who, why, how much).
Vocabulary: words with more than one meaning.
Reading: Cell communication.
Speaking: students of ESSBO and ESG2E talking about each other.
Listening: Listening to a scientist speaking about his/her carrier.
Writing: Informal letter.
Unit 2: The way we live
Grammar: Present tenses: present simple, present continuous.
Vocabulary: At the laboratory.
Reading: Living in Oran.
Speaking: Share with us your experience about living on campus.
Listening: Student life at MIT.
Writing: Transition (linking words).
Unit 3: Biologist from the past
Grammar: Past tenses: past simple, past continuous.
Vocabulary: Time expressions.
Reading: The extraordinary history of Kitab al-Hayawan.
Speaking: Telling stories.
Listening: Rosalind Franklin and the discovery of DNA.
Writing: write a short story about your favourite scientist.
Unit 4: Let’s go shopping
Grammar: Much/Many, Some/Any.
Vocabulary: Grocery shop.
Reading: Medina Jdida market.
Speaking: Talking about shopping habits.
Listening: Organic Food Market.
Writing: Short essay writing about enzymes market.
Unit 5: What do you want to do?
Grammar: Verb patterns, Expressing intentions
Vocabulary: Have, go, come..
Reading: what a DNA polymerase can do
Speaking: what are your plans?
Listening: What does a biological engineer do?
Writing: a nascent enzyme talking about its future plans
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
Immunologie Fondamentale Approfondie 2
Structure et Synthèse des Macromolécules
Immunogénétique
Biologie Moléculaire 2
Atelier de Biologie Moléculaire
Atelier de Bio-informatique et Immuno-informatique
UE découverte
Ingénierie des Biomolécules
Endocrinologie et Communication Cellulaire
UE transversale
Anglais pour les biologistes – Elémentaire
Semestre 29 matières
- Immunologie Fondamentale Approfondie 25 créditsCoefficient 3Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 80h00
Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %
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S2Immunologie Fondamentale Approfondie 2Repères
Connaissances préalables recommandées : Immunologie et les notions de base en biologie moléculaire.
Objectifs
Objectifs d’enseignement : Cette unité d’enseignement (UE) a pour but d’approfondir la description des mécanismes cellulaires et moléculaires impliqués dans les réponses immunes adaptatives et l’immunité muqueuse.
Programme
Contenu de la matière :
Cours
Partie I : Immunité adaptative
Chapitre 1 : La réponse immunitaire adaptative
La dynamique de l'immunité adaptative
Les réponses immunitaires cellulaires
Les réponses immunitaires humorales
Chapitre 2 : Les cellules dendritiques
L'origine et les sous-types des cellules dendritiques
Le recrutement des cellules dendritiques
La reconnaissance et capture de l'antigène
Maturation fonctionnelle et migration des cellules dendritiques
L'activation des lymphocytes par les cellules dendritiques
Ciblage thérapeutique
Signalisation CD40 et activation des cDC1
Chapitre 3 : Les macrophages
Ontogénie et diversité des macrophages :
Activation, polarisation et plasticité fonctionnelle des macrophages
Rôles effecteurs et immunorégulateurs des macrophages
Macrophages en pathologie et en thérapeutique
Chapitre 4 : Les lymphocytes T
Origine, différentiation et répertoire lymphocytaire T
L'immunité adaptative : activation et polarisation des lymphocytes T
L'immunité adaptative : lymphocytes T régulateurs et notion de tolérance.
Lymphocytes T régulateurs et pathologies
L'immunité adaptative : réponse T CD8+ cytotoxique
Chapitre 5 : Les lymphocytes B
Diversité et ontogenèse
Les lymphocytes B : différentiation et activation
Déficits immunitaires liés à l'activation des B et la production d'anticorps
La mémoire immunitaire
Chapitre 6 : Les immunoglobulines
La structure générale d'une molécule d'immunoglobuline
Les interactions antigène-anticorps
Les fonctions effectrices des anticorps
Chapitre 7 : Le complexe majeur d'histocompatibilité humain (HLA).
Le complexe génique HLA
Les deux classes de gènes HLA classiques et non classique
La formation des complexes CMH-peptides
La reconnaissance des molécules CMH à la surface de la cellule par les lymphocytes T
Les autres molécules HLA et molécules apparentées
HLA et maladies auto-immunes
Chapitre 8 : L'immunité muqueuse.
L'organisation du tissu muqueux MALT (Mucosae Associated Lymphoid Tissue)
Les cellules immunes innées intestinales
L'immunité adaptative intestinale
Travaux dirigés
Série d’exercices pour chaque chapitre.
Analyse d’articles scientifiques ou exposés
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
Immunologie.. David Male, Jonathan Brostoff. David B. Roth. Ivan Roitt. 7e édition. Elsevier Masson. 2007.
- Structure et Synthèse des Macromolécules4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 55h00
Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %
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S2Structure et Synthèse des MacromoléculesRepères
Connaissances préalables recommandées : Biochimie
Objectifs
Objectifs d'enseignement : Acquérir des connaissances approfondies sur la détermination chimique des structures des biopolymères et leurs synthèses chimiques.
Programme
Contenu de la matière :
Cours
Partie I : Peptides, protéines structures et principales propriétés
Chapitre 1 : Les peptides
Classification et nomenclature
Propriétés physiques et chimiques
Étude de quelques peptides ayant une importance biologique
Chapitre 2:Protéines
Conformation tridimensionnelle : Structure secondaire, tertiaire et quaternaire
Dénaturation des protéines
Déterminisme de la conformation tridimensionnelle
Chapitre 3:Principales propriétés des protéines
Solubilité et masse moléculaire
Caractère amphotère et pression osmotique
Isolement, fractionnement et purification des protéines
Chapitre 4: Classification des protéines
Classification en fonction de la forme des molécules
Classification en fonction de la solubilité
Classification en fonction de la composition
Chapitre 5: Dynamique et évolution structurale des protéines
Repliements des protéines
Conception de la structure des protéines
Dynamique des protéines et ingénierie
Partie II : polysaccharides et glycoprotéines
Chapitre 1 : Les polysaccharides
Polyholosides
Hétérosides
Chapitre 2 : Les glycoprotéines
Les constituants monosaccharidiques
Les protéoglycannes
Les peptidoglycannes
Les glycoprotéines
Chapitre 3 : Biosynthèse des glycoprotéines
Importance des glycoprotéines
Rôle des groupements glycanniques
Glycotechnologies
Partie III : Lipides et membranes
Chapitre 1 : Les lipides
Classifications des lipides membranaires
Propriétés des agrégats lipidiques
Chapitre 2 : Les membranes biologiques
Membrane biologique et dynamique structurale
Assemblage des membranes
Chapitre 3 : Les hormones lipophiles
Généralités sur les hormones
Structures, biosynthèses et rôles des hormones lipophiles
Superfamille des récepteurs nucléaires
Mécanismes d’action
Partie IV : Nucléotides et acides nucléiques
Chapitre 1 : Nucléotides
Pentoses
Bases azotés
Nucléosides ; mono di et triphosphates
Chapitre 2 : Acides nucléiques
Structure primaire
Détermination des séquences nucléotidiques
L'ADN en double hélice
Structure secondaire des ARN
Propriétés physico-chimiques des acides nucléiques
Chapitre 3 : Synthèse des acides nucléiques
Synthèse des ribonucléotides puriques
Synthèse des ribonucléotides pyrimidiques
Formation des désoxyribonucléotides
Dégradation des nucléotides
Biosynthèse des coenzymes nucléotidiques
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet,
- Immunogénétique4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 55h00
Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %
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S2ImmunogénétiqueRepères
Connaissances préalables recommandées : La finalité de ce module est d’apporter, à travers les cours, des connaissances sur la génétique de l’immunologie normale et pathologique, et à travers les travaux dirigés, des connaissances sur les outils technologiques associés.
Objectifs
Objectifs d’enseignement : L’objectif du cours est de s’approfondir dans la compréhension des mécanismes moléculaires de la réponse immunitaire, et des gènes en amont de ces mécanismes. Il vient en prolongement des cours d’immunologie fondamentale normale et pathologique, et s’appuie sur des connaissances complémentaires en signalisation cellulaire, en génétique et biologie moléculaires, et en expérimentation animale.
Programme
Contenu de la matière :
Cours
Chapitre 1 : Introduction à l’immunogénétique : concepts et applications multiples
Chapitre 2 : Immunogénétique normale
Génétique de l’immunité innée (ex. PRR, KIR)
HLA et gènes
Génétique de la présentation antigénique
TCR et gènes
BCR et gènes
Crosstalk entre immunité et ADN (ex. réparation d’ADN, Nétose, mtDNA)
Chapitre 3 : Immunogénétique pathologique
Immunogénétique de la transplantation
Immunogénétique des déficits immunitaires
Immunogénétique des maladies infectieuses
Immunogénétique de la réponse anti-tumorale
Immunogénétique des maladies auto-immunes
Immunogénétique des maladies neurologiques et psychiatriques
Chapitre 4 : Aboutissements de l’immunogénétique : l’immunothérapie,Veni , vidi , vici
Travaux dirigés
Inflammasomes et leur régulation
Complément et complosome
ISGs à l’état normal et pathologique
Abécédaire du typage HLA
Régulation épigénétique de la différentiation des LT CD4+
Immunothérapie et variabilité de réponse : la part de la génétique
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet,
- Biologie Moléculaire 24 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 55h00
Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %
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S2Biologie Moléculaire 2Repères
Connaissances préalables recommandées
Génétique, Expression des gènes, signalisation et communication cellulaire, biodiversité.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
Cette unité d’enseignement porte trois parties. L’objectif de la première partie est d’expliquer les mécanismes de synthèse et de l’action des ARN interférents et mettre le point sur leurs intérêts et applications. Le but de la deuxième partie est d’expliquer les différents mécanismes de régulation de l’expression des gènes. La troisième partie vise à décrire les différents outils de la biologie moléculaire utilisés pour étudier la diversité génétique des espèces.
Les étudiants seront également initiés à l’apport de l’intelligence artificielle (IA) dans l’analyse des différents mécanismes détaillés dans les premières parties du programme(mécanismes de synthèse et de l’action des ARN interférents, mécanismes de régulation de l’expression des gènes et l’étude la diversité génétique des espèces) favorisant ainsi une lecture approfondie et innovante des mécanismes moléculaires et une initiation à l’exploitation de données massives (Big Data) en biologie.
Programme
Contenu de la matière
Partie 1/ Interférence ARN
I/ Historique et mécanismes fondamentaux de l’interférence ARN
1. Historique de l’interférence ARN
2. Mécanismes fondamentaux de l’interférence ARN
2.1. siARN
2.1.1. Biosynthèse
2.1.2. Mécanisme d’action
2.2. miARN
2.2.1. Biosynthèse
2.2.2. Mécanisme d’action
2.3. piARN
2.3.1. Biosynthèse
2.3.2. Mécanisme d’action
II/ Conséquences pratiques pour la conception d’un siARN
1. Influence des propriétés intrinsèques du siARN
2. Limites imposées par le transcrit cible
III / intérêts de l’interférence ARN
1. Un outil pour la compréhension de la fonction des gènes
2. Un outil pour de nombreuses applications en thérapeutique
IV/ Contraintes associées à la transfection de courtes séquences d’acidesnucléiques
1. La stabilité des ARN interférents
2. La biodistribution
Partie 2/ Régulation de l’expression des gènes
Régulation de la transcription
Régulation de la transcription chez les procaryotes
Qu’est-ce qu’un opéron ?
Opéron catabolique inductible négativement et positivement régulé (exemple : l’opéron lactose chez E. coli)
Opéron anabolique répressible (exemple : l’opéron Tryptophane chez E. coli)
Régulation par transformation d’un répresseur en activateur (exemple : l’opéron Arabinose (araBAD) chez E. coli)
Autres exemples d’opéron
Régulation de la formation du complexe ouvert
Régulation du passage à la phase d’élongation
Régulation de la transcription chez les eucaryotes
Régulation au niveau chromatinien
Acétylation, méthylation des histones
Méthylation de l’ADN
Eléments de régulation transcriptionnelle
Les classes de régulateurs transcriptionnels
Fonctionnement des protéines activatrices de transcription
Répresseurs transcriptionnels
Séquences régulatrices enhancers et les silencers
Extinction de gènes et régulation épigénétique
Régulation post-transcriptionnelle chez les eucaryotes
L’épissage alternatif
Régulation par des petits ARN
Régulation de la stabilité des ARNm chez les eubactéries
Les acteurs de la dégradation
Les exoribonucléases
Les endoribonucléases
L’ARN pyrophosphohydrolase (RppH)
Les mécanismes de dégradation des ARNm
La voie directe d’accès
La voie dépendante de l’extrémité5’
La voie exoribonucléolytique en 3’
Les mécanismes régulant la stabilité des ARNm
Régulation de l’activité et de la concentration des RNases
Les effets de la traduction
L’interférence par les ARNs
L’influence de la séquence des ARNm
Régulation de la stabilité des ARNm chez les eucaryotes
Les acteurs de la dégradation
Les exoribonucléases agissant en 3’ de l’ARNm
Les exoribonucléases agissant en 5’ de l’ARNm
Les endoribonucléases
Les mécanismes de la dégradation
Voie majoritaire
Voies alternatives
Les mécanismes régulant la stabilité des ARNm
Le complexe Lsm1-7
La régulation de la déadénylation
La régulation du complexe d’élimination de la coiffe
Les ARN interférents :miARN, siARN et piARN
Régulation de la traduction
Introduction
Régulation de l’initiation de la traduction chez les eubactéries
Régulation de l’accès au RBS
Régulation via les structures secondaires de l’ARNm
Régulation de l’initiation de la traduction chez les eucaryotes
Régulation via les facteurs d’initiation de la traduction
Hosphorylation du facteur d’initiation eIF2
Phosphorylation des protéines 4E-BP et disponibilité du facteur d’initiatione IF4E
Inhibition de l’initiation par les miARN
Régulation via les régions 5’-et 3’-UTR chez les eucaryotes
Régulation via les régions 5’-UTR
Interaction régions 3’- et 5’-UTR
Régulation via 3’-UTR
Les voies alternatives d’initiation
uORF
Initiation par une séquence IRES
Régulation au cours de l’élongation ou de la terminaison chez les eubactéries
Régulation au cours de l’élongation ou de la terminaison chez les eucaryotes
Régulation post-traductionnelle : la dégradation des protéines intracellulaires
Introduction
Les protéines chaperonnes (chaperonines)
Les enzymes protéolytiques
Ubiquitination des protéines
Protéasome
Dégradation lysosomale
Autophagie
Partie 3/ Apport de la biologie moléculaire à l’étude de la diversité génétique
Quelques notions
Biodiversité
Diversité génétique
Mesure de la diversité génétique
Marqueurs morphologiques
Marqueurs protéiques (biochimiques)
Marqueurs ADN (moléculaires)
RFLP
AFLP
Minisatellites
Microsatellites
SNP
Marqueurs d’ADNmt
Exemples d’applications
Partie 4/ Intelligence Artificielle et Biotechnologie Moléculaire
Introduction aux modèles d’intelligence artificielle et à la conception de siARN et d’amorces. Étude des outils siDirect et RNAxs ; critères de conception des siARN et accessibilité du site cible.
Introduction aux modèles d’intelligence artificielle appliqués à la régulation génique. Étude de DeepSEA pour la prédiction des caractéristiques de la chromatine et des effets des variants non codants ; distinction avec la prédiction directe de l’expression génique.
Diagnostic moléculaire assisté par IA.
Applications de l’IA dans la phylogénie, le clustering génétique, et la détection des variants (SNP).
Perspectives éthiques et limites de l’IA en biologie moléculaire.
Travaux dirigés :
Fiche TD 1 : Régulation de l’expression des gènes chez les procaryotes (1) : cas de l’opéron tryptophane et l’opéron lactose
Fiche TD 2 : Régulation de l’expression des gènes chez les procaryotes (2) : cas de l’opéron arabinose et l’opéron histidine
Fiche TD 3 : Régulation l’expression des gènes chez les eucaryotes (1) : Etude de la structure, de l’expression et de la fonction du gène bdnf
Fiche TD 4 : Régulation l’expression des gènes chez les eucaryotes (2) : Etude de la régulation de l’expression et de la fonction du gène c-myc
Fiche TD 5 : Analyse de séquences biologiques par IA (Prédiction de l’efficacité de séquences siARN par IA,extraction de motifs, reconnaissance de promoteurs)
Fiche TD 6 : Utilisation de notebooks (Google Colab) pour des exemples simples de machine learning en biologie (classifications de séquences, clustering de variants)
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Atelier de Biologie Moléculaire5 créditsCoefficient 3Volume semestriel: 60h00Cours / semaine: -TD / semaine: -TP / semaine: 04h00Autres heures: 65h00
Évaluation: contrôle continu 100 % · examen —
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S2Atelier de Biologie MoléculaireRepères
Connaissances préalables recommandées : Notions de base en biologie moléculaire, génétique, biochimie.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement : Cet atelier vise à aborder la démarche expérimentale de l’extraction et de l’amplification d’un fragment d’ADN génomique des procaryotes par réaction de polymérisation en chaine (PCR).
Les notions de bioéthique et de biosécurité si nécessaires sont abordées tout au long de l’atelier.
Programme
Contenu de la matière :
Atelier 1 : Préparation des solutions
Atelier 2 : Extraction de l’ADN génomique
Atelier 3 : Tests de qualité des ADN extraits
Atelier 4 : Amplification du gène ARNr 16S et du gène d’intérêt de la souche bactérienne
Atelier 5 : Identification de la souche bactérienne à l’échelle de l’espèce et construction de l’arbre phylogénétique
Atelier 6 : PCR-RFLP
Évaluation
Mode d’évaluation : 100 % Contrôle continu.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Atelier Bio-informatique et immun-informatique4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: -TD / semaine: -TP / semaine: 03h00Autres heures: 55h00
Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %
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S2Atelier Bio-informatique et immun-informatiqueRepères
Connaissances préalables recommandées : Connaissances fondamentales en biologie moléculaire et en immunologie. Maitrise de l’outil informatique.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement : Cet atelier se propose de fournir des bases solides sur l’usage des outils et des bases de données de la bioinformatique et de l’immunoinformatique en vue de leurs applications dans différentes analyses immunologiques citons à titre d’exemple : la prédiction et l’analyse de l’immunogénicité des anticorps thérapeutiques.
Programme
Contenu de la matière :
Atelier 1 : Bases de données de la biologie moléculaire
Atelier 2 : Outils d’analyse de séquences
Alignements par pair et alignement multiples des séquences biologique
Détection des motifs dans séquences biologiques par des outils de bioinformatiques
Reconstruction des arbres phylogénétiques
Atelier 3 : Introduction à l’immunoinformatique et à l’IMGT® (international ImMunoGeneTics information system)
Atelier 4 : Connaissance des Bases de Données relatives aux séquences et structures des anticorps
Atelier 5 : Bases de données d'épitopes de lymphocyte B et de lymphocyte T
Atelier 6 : Bases de données de prédiction des allergies
Atelier 7: Base des données des anticorps monoclonaux thérapeutiques et différents projets lies à celle-ci
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Ingénierie des Biomolécules2 créditsCoefficient 1Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 05h00
Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %
Explorer la matière
S2Ingénierie des BiomoléculesRepères
Connaissances préalables recommandées : Notions en microbiologie et, particulièrement, en biochimie microbienne et génétique bactérienne.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement : L’enseignement de cette matière permettra à l’étudiant en premier lieu d’acquérir des connaissances sur la production et la biosynthèse des molécules bioactives. En outre, l’étudiant connaîtra que la biosynthèse de ces molécules bioactives est essentiellement génétique comparativement aux eucaryotes où elles dérivent principalement du métabolisme secondaire. En deuxième lieu de maitriser les modes d’actions des différentes substances bioactives et l’intérêt de leur utilisation.
Programme
Contenu de la matière :
Chapitre 1 : Cellule Procaryote : Structure et Métabolisme
Introduction.
Voies Métaboliques.
Voies carrefours du métabolisme central et secondaire.
Phase de production des métabolites secondaires.
Chapitre 2 : Les microorganismes d’intérêt :
Les bactéries.
Les levures.
Les moisissures.
Chapitre 3 : Les enzymes
Introduction.
Origine des enzymes.
Synthèse.
Applications.
Chapitre 4 : Les bactériocines et les substances antimicrobiennes
Historique.
Classification et nomenclature.
Mécanismes de biosynthèse et sa régulation.
Méthodes de détection, de quantification et de purification.
Mécanismes d'action.
Applications
Chapitre 5 : Les toxines bactériennes et les mycotoxines
Généralités.
Production et voie de biosynthèse.
Applications.
Chapitre 6 : Les exopolysaccharides
Généralités.
Production.
Application.
Chapitre 7 : Les vitamines
Généralités.
Production et voie de biosynthèse.
Application.
Chapitre 8 : Autres molécules bioactives
Molécules bioactives d’origine végétale.
Molécules bioactives d’origine animale.
Application.
Chapitre 9 : Caractérisation préliminaire des substances bioactives
Effet de pH
Effet de température
Effet des enzymes
Effet des solvants organiques
Effet du stockage
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Endocrinologie et Communication Cellulaire1 créditsCoefficient 1Volume semestriel: 22h30Cours / semaine: 01h30TD / semaine: -TP / semaine: -Autres heures: 02h30
Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %
Explorer la matière
S2Endocrinologie et Communication CellulaireRepères
Connaissances préalables recommandées : Notions de base en biologie cellulaire, en physiologie des grandes fonctions et en immunologie fondamentale.
Objectifs
Objectif de l’enseignement ; Les étudiants devraient être capables d'acquérir des connaissances de base sur la structure et les propriétés des hormones et comprendre l’organisation des différentes composantes du système endocrinien. L’objectif de cette matière est aussi d'apprendre les divers événements moléculaires impliqués dans la communication intercellulaire. Les mécanismes de défense immunitaires impliqués en relation avec le système endocrinien seront également détaillés.
Programme
Contenu de la matière
Chapitre 1 : Introduction à l'endocrinologie
Les 3 grands systèmes intégrateurs et l’homéostasie générale de l’organisme
Les systèmes de communications cellulaires
Les 4 grandes classes des hormones : Nature chimique et synthèse
Mécanisme d'action des hormones
Chapitre 2 : L’axe hypothalamohypophysaire
- Le système limbique et les transducteurs neuro-endocriniens
L’hypophyse et ses rapports avec l’hypothalamus
Les hormones hypothalamiques
Les hormones antéhypophysaires
L’hypophyse postérieure et ses relations avec l’hypothalamus
Chapitre 3 : Les hormones thyroïdiennes et leurs effets métaboliques
Anatomie fonctionnelle
Biosynthèse et sécrétion hormonale
Régulation de la sécrétion hormonale
Rôle physiologique des hormones thyroïdiennes
Physiopathologie
Chapitre 4 : Pancréas endocrine
Anatomie et histologie
L’insuline : Physiologie
Régulation du métabolisme par l’insuline
Le Glucagon : sécrétion, mécanisme d’action et régulation du métabolisme
Le diabète sucré
Chapitre 5 : Les glandes surrénales
Cortex surrénalien : structure et fonction
Hormones cortico-surrénaliennes : physiologie et rôle dans la régulation du métabolisme
Médullosurrénale : physiologie des hormones médullosurrénaliennes et rôle dans la régulation du métabolisme
Chapitre 6 : Hormones calciotropes et homéostasie phosphocalcique
Mouvements du calcium et des phosphates
Hormone parathyroïdienne
Calcitonine
Vitamine D3, cholécalciférol
Chapitre 7 : L'épiphyse
Localisation
Structure
Rôles
Mélatonine (structure chimique et biosynthèse)
Autres sécrétions
Chapitre 8 : Endocrinologie du tissu adipeux
Notion de tissu adipeux blanc et de tissu adipeux brun
Les hormones du tissu adipeux blanc : mécanisme d’action et rôle dans la régulation du métabolisme
Chapitre 9 : Immuno-endocrinologie
Les récepteurs hormonaux et leur interaction avec les cellules immunitaires : Modulation de la réponse immunitaire.
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Anglais pour les biologistes – Elémentaire1 créditsCoefficient 1Volume semestriel: 22h30Cours / semaine: 01h30TD / semaine: -TP / semaine: -Autres heures: 02h30
Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %
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S2Anglais pour les biologistes – ElémentaireRepères
Connaissances préalables recommandées :Prior knowledge of basic English.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement : The objective of this course is to provide students with a solid foundation for communicating (both written and spoken) in English.
Programme
Contenu de la matière :
Unit 1: Tell me what’s it like
Grammar: What it's like to? Comparative and superlative adjectives in biology.
Vocabulary: Talking about modern life.
Reading: “A story of two bacteria belonging to the same genus” - beneficial/pathogenic bacteria.
Speaking: Comparing cellulases from different sources.
Listening: Brenda Lee, Tell me what it's like.
Writing: Describing a wetland.
Unit 2: Asking scientific questions
Grammar: Present perfect and past simple in scientific writing.
Vocabulary: Adverbs in experimental protocols (slowly, carefully…).
Reading: scientist interview.
Speaking: questionnaire for research.
Listening: an interview with an eminent biologist.
Writing: writing a research protocol.
Unit 3: Do and don’t in the science Lab
Grammar: Have to, got to, should, must.
Vocabulary: Science laboratory safety symbols and hazard signs.
Reading: What can biologist do to help protect our environment?
Speaking: Do I need to be good at math to excel in biology? One question, many answers.
Listening: Fire safety in the Lab.
Writing: Should biologists have good math skills? (Argument essay).
Unit 4: Inventions that changed the world
Grammar: Passive voice.
Vocabulary: past participle verbs used in scientific writing (grown, produced, cultivated, shown, made…).
Reading: Agriculture, an invention that changed the world.
Speaking: Passive voice battleship.
Listening: The molecular biology.
Writing: Writing a documentary film review.
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc
Immunotechnologie 1
Culture Cellulaire
Immuno-physiopathologie
Génomique et Protéomique
Atelier d’Immunotechnologie 1 _ Approche générale
Atelier Technologie des Molécules Bioactives _ Synthèse
UE découverte
Pharmacologie Moléculaire
UE transversale
Bio-programmation 1
Anglais pour les biologistes – Pré-Intermédiaire
Semestre 39 matières
- Immunotechnologie 14 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 55h00
Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %
Explorer la matière
S3Immunotechnologie 1Repères
Connaissances préalables recommandées : Notions en immunologie fondamentale approfondie et en biochimie.
Objectifs
Objectifs de l'enseignement : Cette unité d'enseignement est de donner aux étudiants l’essentiel des techniques utilisées en immunologie. Ce qui permettra à l’apprenant de maîtriser l’outils d’immunoanalyse nécessaire à l’élaboration d’un choix dans un but diagnostique ou même dans tout protocole de recherche scientifique abordant une pathologie immunologique ou autre.
Programme
Contenu de la matière :
Chapitre 1 : Rappels sur la réaction antigène-anticorps et ses applications
Chapitre 2 : Les techniques sans traceurs
Précipitation en milieu liquide (immuno-précipitation)
Précipitation en milieu gélifié (immunodiffusion)
Immuno-chromatographie
Mesure d’affinité par résonance plasmolique de surface
Réaction d’agglutination
Mise à profit des capacités cytotoxique du complément
Chapitre 3 : Les techniques avec traceurs
Type de traceurs
Technique d’immunodosage
Dosage immunoenzymatique (ELISA)
Dosage immunofluorescent (FLISA)
Dosage radioimmunologique
Immuno-dosage multiplex sur billes
Immuno-empreinte/Western-blot
Immuno-fixation
Puce à protéines/Protein Arrays
Cytométrie en flux
Immunocytologie et immunohistologie
Puce tissulaire (tissue micro-array)
ELISpot
Chapitre 4 : Techniques de biologie moléculaire utilisées en immunologie
Techniques d’amplification
Diagnostic de clonalité et analyse du répertoire
Puces à ADN (DNA microarrays)
Tests cellulaires
Etude cytologique des cellules immunitaires
Immunophénotypage
Prolifération cellulaire
Chapitre 5 : Exemples d’application
Exploration du complément
Exploration des immunoglobulines
Détection/dosage des cytokines et leurs récepteurs
Exploration de HLA
Hypermutations somatiques et translocations chromosomiques
Immuno-hématologique
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc
- Culture Cellulaire4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: -TP / semaine: 01h30Autres heures: 55h00
Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %
Explorer la matière
S3Culture CellulaireRepères
Connaissances préalables recommandées : Avoir des connaissances de la structure et de la physiologie des cellules eucaryotes. Module généralités sur la physiologie cellulaire.
Objectifs
Objectifs de l'enseignement : S’initier aux techniques de culture cellulaire et de l’environnement nécessaire à sa réalisation. Connaître les bases techniques de la culture de cellules in vitro, que ce soit à des fins de recherche fondamentale ou appliquée ou pour des objectifs de production biotechnologique.
Programme
Contenu de la matière :
Cours
Partie I : Biologie et environnement des cellules en culture
Chapitre 1 : Introduction
Origine de la culture de cellules
Les modalités d’obtention des cellules
Chapitre 2 : Adhésion cellulaire
Méthodes d'étude de l'adhésion cellulaire
Régulation de l’adhésion cellulaire
Contrôle du détachement des cellules adhérentes
Comment l’adhésion à un substrat peut-elle modifier le comportement cellulaire ?
Chapitre 3 : Variabilité non génétique dans les cultures cellulaires
Cellule unique et population cellulaire
Fluctuations d’origine interne
Fluctuations d’origine externe
Chapitre 4 : Dynamique du micro environnement cellulaire
De la matrice extracellulaire au microenvironnement
Le microenvironnement évolue avec le dialogue cellules/matrice
Une dynamique particulière : le microenvironnement tumoral
Chapitre 5 : Défis de la culture de cellules animales en bioréacteur
Principaux réacteurs en mode agité
Influence de l’environnement cellulaire
Culture des cellules sur microporteurs
Analyses et régulations en ligne sur le bioréacteur
Chapitre 6 : Bonnes pratiques de culture cellulaire
Matières premières
Matériels
Milieu : le laboratoire de culture cellulaire
Chapitre 7 : Cryopréservation des cellules
Aspects physicochimiques de la formation des cristaux
Effets biophysiques de la formation de glace
Effets biologiques de la formation de glace
Conditions de congélation
Partie II : Méthodologie en culture cellulaire
Les systèmes cellulaires : La culture primaire - Les lignées cellulaires - Les cellules souches
La prolifération cellulaire : Courbe de croissance en culture
La transformation cellulaire : l’immortalisation et la transformation tumorale
Le milieu de culture et les conditions de culture : Les systèmes de culture cellulaire.
Etude de Protocoles : Conservation des lignées cellulaires - Introduction : les 5 grandes catégories de lignées cellulaires - Obtenir une lignée cellulaire - Les banques de référence-Acheter une lignée Fabriquer
Cryo-conservation des lignées cellulaires : l’azote et sécurité – Congélation Décongélation
Les contaminations en culture de lignées cellulaires :
Les principales contaminations
La détection des contaminations
Prévention des contaminations
Utilisation et entretien du matériel : Procédures et bonnes pratiques
Chapitre 1 : Viabilité, cytotoxicité, génotoxicité
Méthodes d’étude de la viabilité cellulaire
Quantification des cellules mortes par la perte d’intégrité de la membrane plasmique
Détection couplée des cellules mortes et des cellules vivantes
Cytotoxicité : étude spécifique des différentes voies de mort cellulaire
Méthodes d’étude de la prolifération cellulaire
Chapitre 2 : Apport de la cytométrie en flux à la culture cellulaire
Principe de la cytométrie en flux
Différents types de marquages
Interprétation des résultats
Applications
Partie III : Systèmes intégrés et cultures spécialisées
Chapitre 1 : Les systèmes cellulaires
Culture primaire
Lignées cellulaires et hybridomes
Cellules souches
Banques de cellules
Chapitre 2 : Les systèmes de culture
Culture d’organes et d’explants
Culture de cellules
Culture organotypique
Chapitre 3 : La culture de cellules
La culture des cellules en suspension
La culture des cellules adhérentes
La culture en monocouche et en trois dimensions
Chapitre 4 : Cultures spécialisées
Les conditions de culture
Les milieux de culture
La culture à l’échelle industrielle.
Travaux pratiques
Initiation à la culture cellulaire (bonne pratique d’hygiène et de manipulation)
Séparation des PBMCs sous gradient de densité et comptage
Culture des cellules adhérentes (monocytes) et détachement des plaques par trypsine et accutase
Culture des HUVEC humains
Les notions de bioéthique et de biosécurité sont abordées tout au long des travaux pratiques.
Évaluation
Mode d'évaluation : 100 % Contrôle continu.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc
Culture de cellules animales (3° éd.) De BARLOVATZ-MEIMON Georgia, RONOT Xavier. Lavoisier Tec & Doc, ISBN : 978-2-7430-1989-1.
Culture de cellules animales, Georgia Barlovatz-Meimon Monique Adolphe Christiane Guillouzo Xavier Ronot Méthodologies, applications Paru le 1 janvier 1988 Etude (broché). Inserm, ISBN 2855983339.
Technologie de culture cellulaire animale. Principes et applications Principes et applications, Rajasekhar PINNAMANENI. Editions Universitaires Europeennes04/2020. ISBN : 9786139534265
- Immuno-physiopathologie4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 55h00
Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %
Explorer la matière
S3Immuno-physiopathologieRepères
Connaissances préalables recommandées : Notions d’immunologie de base abordant le fonctionnement normal du système immunitaire.
Objectifs
Objectifs de l'enseignement : Apporter des connaissances générales sur les mécanismes physiopathologiques des maladies du système immunitaire (hypersensibilités, déficits immunitaires, syndromes immuno prolifératifs et auto immunité). L'implication des éléments de l’immunologie dans la réponse antitumorale ainsi que l’immunité des transplantations seront également abordés.
Programme
Contenu de la matière :
Cours
Rappel sur la physiologie du système immunitaire
Chapitre 1 : Physiopathologie de l’hypersensibilité
Généralités sur les allergènes
Hypersensibilité de type I
Hypersensibilité de type II
Hypersensibilité de type III
Hypersensibilité de type IV
Hypersensibilité V
Hypersensibilité VI
Hypersensibilité VII
Chapitre 2 : Mécanismes physiopathologiques de l’auto-immunité
Introduction
Le concept de la tolérance immunologique
La base génétique de l’auto-immunité
Les facteurs déclenchants environnementaux
Les mécanismes hypothétiques de déclenchements de l’auto-immunité
Les mécanismes lésionnels des effecteurs auto-immuns
Chapitre 3 : Mécanismes physiopathologiques des anomalies de prolifération lymphocytaire
Les maladies lymphoprolifératives : notion de clonalité
Les mécanismes physiopathologiques des maladies lymphoprolifératives
Quelques données sur trois prototypes de maladies lymphoprolifératives
Chapitre 4 : Mécanismes de l’immunosurveillance anti-tumorale
Introduction
Immunoedition du cancer
Chapitre 5 : Mécanismes généraux des déficits immunitaires primitifs
Origine des déficits immunitaires primitifs
Mécanismes physiopathologiques des déficits immunitaires primitifs
Déficits du complément
Déficits du système de phagocytose
Déficits immunitaires combinés sévères
Déficits des lymphocytes B
Déficits des lymphoctes T
Chapitre 6 : Mécanismes de l’alloréactivité et des rejets de greffe
Définition
L’allo-antigène
La réponse allogénique
Mécanisme d’action et cibles moléculaires des principaux immunosuppresseurs
Chapitre 7 : L’immunologie de la grossesse
Introduction
Les interfaces materno-fœtales
La réponse immunitaire maternelle et les étapes de la grossesse
Les mécanismes de protection développés au niveau du placenta
Chapitre 8 : La sénescence cellulaire
Définition
Arrêt du cycle cellulaire
Sénescence moteur du vieillissement
Mécanismes à l’origine de la sénescence cellulaire
Caractéristiques des cellules sénescentes
Travaux dirigés
Analyse d’articles récents
Évaluation
Mode d'évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc
Immunologie fondamentale et immunopathologie, 2 edition Collège des Enseignants d'Immunologie, Editeur Elsevier Masson, ISBN : 9782294756580.
Les bases de l'immunologie fondamentale et clinique Abul K. Abbas (Auteur) Andrew H. Lichtman (Auteur) Shiv Pillai (Auteur) 5ème édition . Elsevier Masson. ISBN 2294752422.
- Génomique et Protéomique4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 55h00
Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %
Explorer la matière
S3Génomique et ProtéomiqueRepères
Connaissances préalables recommandées
Des connaissances en biologie moléculaire et en génétique.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
Les progrès des technologies et de l'informatique utilisées pour générer et traiter de grands ensembles de données biologiques (donnéesomiques) favorisent un changement critique dans l'étude des sciences biologiques et biotechnologiques.Les objectifs de cette matière sont de fournir des connaissances introductives concernant la génomique, la transcriptomique, la protéomique et les approches de l’IA appliquées à l’interprétation des profils omiques, en mettant l’accent sur la détection de signatures moléculaires, la prédiction fonctionnelle des gènes, et l’exploration des réseaux biologiques complexes. Cela favorise une approche intégrative et innovante des grandes bases de données issues des sciences omiques.
Programme
Contenu de la matière
1. Bases de la génomique et de la protéomique
1.1. Aperçu de l'organisation du génome procaryote et eucaryote ;
1.2. ADN extra-chromosomique : plasmides bactériens, mitochondries et chloroplastes.
2. Cartographie du génome
2.1. Cartes génétiques et physiques
2.2. Marqueurs pour la cartographie génétique
2.3. Méthodes et techniques utilisées pour la cartographie génétique
2.4. La cartographie physique
2.5. L'analyse de liaison
2.6. Les techniques cytogénétiques
2.7. Technique de cartographie génétique FISH
2.8. Hybridation de cellules somatiques
2.9. Cartes de radiation hybrides
2.10. Hybridation in situ
2.11. Cartographie génétique comparative
3. Projets de séquençage de génomes
3.1. Human Génome Project
3.2. Projets de séquençages de génomes de microbes, plantes et animaux
3.3. Accéder et récupérer des informations sur les projets de génomes à partir du WEB
4. Génomique comparative
4.1. Identification et classification des organismes à l'aide de marqueurs moléculaires (ARNr 16S typage/séquençage, SNP)
4.2. Utilisation des génomes pour comprendre l'évolution des eucaryotes
4.3. Suivie des maladies émergentes et conception de nouveaux médicaments
4.4. Détermination de l'emplacement du gène dans la séquence du génome
5. Transcriptomique
5.1. Introduction
5.2. Acquisition des données
5.2.1. Next Generation Sequencing (NGS) ( RNAseq, sRNAseq)
5.2.2. Microarrays
5.2.3. qPCR, RT-PCR, qRT-PCR
5.3. Description des données
5.4. Transformation, normalisation et filtrage
5.5. Analyse des données de transcriptome
5.5.1. Gènes différentiellement exprimés
5.5.2. Gènes co-exprimés
5.6. Interprétation
5.7. Caractérisation d’un ensemble de gènes
6. Protéomique
6.1. Objectifs
6.2. Stratégies et défis en protéomique
6.3. Technologies protéomiques : 2D-PAGE, focalisation isoélectrique, spectrométrie de masse, MALDI-TOF, système levure 2-hybride
6.4. Bases de données protéomiques
7. Génomique fonctionnelle et protéomique
7.1. Analyse du transcriptome pour l'identification et l'annotation fonctionnelle du gène,
7.2. Assemblage Contig
7.3. Marche du chromosome (chromosomwalking) et caractérisation des chromosomes
7.4. Identification de gènes fonctionnelles dans le génome
7.5. Fonction des gènes
7.6. Génétique directe et inverse
7.7. Interactions protéine-protéine et protéine-ADN
7.8. Puces à protéines et protéomique fonctionnelle
7.9. Les applications biomédicales et cliniques de la protéomique
7.10. Introduction à la métabolomique, à la lipidomique, métagénomique et biologie des systèmes
8. Intelligence Artificielle appliquée aux données omiques
8.1. Introduction à l’intelligence artificielle aux données omiques
Concepts de base : machine learning, deeplearning, réseaux neuronaux
Applications générales en sciences biologiques
8.2. IA en génomique
Prédiction de gènes et d’éléments fonctionnels dans le génome
Annotation automatique et classification des séquences
Analyse comparative de génomes à grande échelle
8.3. IA en transcriptomique
Identification des gènes différentiellement exprimés par modèles prédictifs
Regroupement de profils d’expression par clustering non supervisé
Détection de signatures transcriptomiques associées à des conditions biologiques (maladies, stress, etc.)
8.4. IA en protéomique
Analyse des spectres de masse avec réseaux neuronaux
Prédiction de la structure et de la fonction des protéines
Reconnaissance de motifs et d’interactions protéiques
Travaux dirigés :
TD 1 : Applications des approches omiques
Type : Travail collaboratif – Carte conceptuelle
Article :How ‘omics technologies can drive plant engineering, ecosystem surveillance, human and animal health
Objectif : Introduire les approches omiques à travers un travail visuel de synthèse
Outil/Activité : Création d’une carte conceptuelle + recherche documentaire
TD 2 : Cartographie génomique
Article :A physical map of the papaya genome with integrated genetic map and genome sequence – Qingyi Yu et al., 2009
Objectif : Comprendre les bases de la cartographie génétique et physique
Outil/Activité : Fiche TD guide existante intégrée (questions guidées + interprétation des résultats)
TD 3 : Analyse transcriptomique et lncRNA
Article : Genome-wide differential expression profiling of mRNAs and lncRNAs associated with prolificacy in Hu sheep – Xu Feng et al., 2018
Objectif : Introduction à la transcriptomique fonctionnelle et aux lncRNA
Outil/Activité : Fiche TD guide existante intégrée (questions guidées + interprétation des résultats)
TD 4 : Analyse fonctionnelle avec ShinyGO& STRING
Article : Functional annotation and network analysis of differentially expressed genes in a model organism or tissue
Objectif :
- Analyser un ensemble de gènes exprimés à l’aide de ShinyGO (enrichissement GO/KEGG)
- Explorer les interactions protéiques avec STRING
Outil/Activité : Fiche TD guide existante intégrée (questions guidées + interprétation des résultats)
TD 5 : Pipeline multi-omique simplifié (étude de cas intégrée)
Article : Données simulées ou article réel fourni : (ex : réponse à un stress chez une plante ou animal)
Objectif :
- Combiner RNA-Seq + ShinyGO + STRING + AlphaFold + InterPro
- Élaborer une interprétation biologique cohérente
Outil/Activité : Fiche TD guide existante intégrée (questions guidées + interprétation des résultats)
TD 6 : IA et apprentissage automatique pour l’analyse omique
Article : AI-assisted prediction of gene-disease associations
Objectif :
- Introduction à l’IA (clustering, réseau de gènes, Deep Learning)
- Utilisation de plateformes comme Orange ou DeepGO
Outil/Activité : Fiche TD guide existante intégrée (questions guidées + interprétation des résultats)
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Atelier d’Immunotechnologie 1_Approche générale6 créditsCoefficient 3Volume semestriel: 60h00Cours / semaine: -TD / semaine: -TP / semaine: 04h30Autres heures: 85h00
Évaluation: contrôle continu 100 % · examen —
Explorer la matière
S3Atelier d’Immunotechnologie 1 — Approche généraleRepères
Connaissances préalables recommandées : Connaissances théoriques acquises la matière immunotechnologie I
Objectifs
Objectifs de l’enseignement : Dans cet atelier l’étudiant apprendra les différentes techniques utilisées en analyses immunologiques telles que ELISA, Western-Blot et la microscopie à fluorescence. L’étudiant développera des compétences pratiques en détection d’antigènes, analyse protéique, phénotypage des cellules immunitaires et observation des réponses immunitaires.
Programme
Contenu de la matière
Atelier 1 : Dosage immuno-enzymatique (ELISA)
Atelier 2 : Western-Blot
Atelier 3 : Phénotypage des monocytes et interprétation des résultats par ImageJ
Atelier 4 : Observation des Macrophage extracellular traps (METs) et interprétation des résultats
Évaluation
Mode d’évaluation : 100 % Contrôle continu.
Références
Références (Livres et polycopiés, sites internet, etc)
- Atelier Technologie des Molécules Bioactives _ Synthèse4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: -TD / semaine: -TP / semaine: 03h00Autres heures: 55h00
Évaluation: contrôle continu 100 % · examen —
Explorer la matière
S3Atelier Technologie des Molécules Bioactives — SynthèseRepères
Connaissances préalables recommandées : Connaissances théoriques acquises dans l’enseignement du semestre 2 de la matière Ingénierie des biomolécules. Maitrise des techniques d’extraction et de séparations utilisées en biochimie.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement : Cet atelier dispense des connaissances intégrées et des compétences techniques sur l’extraction, l’analyse, l’identification et la production de molécules bioactives d’origines : végétale, animale ou microbienne ainsi que leurs utilisations dans différents secteurs tels que l’industrie, la recherche scientifique…. (Exemple d’application).
Programme
Contenu de la matière :
Atelier 1 : Extraction et purification des métabolites secondaires à partir de plantes médicinales
Atelier 2 : Extraction et purification de la chlorophylle
Atelier 3 : Synthèse et caractérisation de nanoparticules à partir d’un support microbien.
Atelier 4 : Extraction et purification d'une substance antimicrobienne à partir d'un organisme eucaryote.
Atelier 5 : Extraction et purification des exo-polysaccharides à partir d’un microorganisme.
Atelier 6 : Extraction et purification de molécules bioactives à partir de microalgues.
Évaluation
Mode d’évaluation : 100 % Contrôle continu.
Références
Références (Livres et polycopiés, sites internet, etc)
- Pharmacologie Moléculaire2 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 10h00
Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %
Explorer la matière
S3Pharmacologie MoléculaireRepères
Connaissances préalables recommandées : Notions de base en biochimie métabolique et régulation, structure et synthèse des macromolécules, signalisation cellulaire et moléculaire, interactions hôte-pathogène.
Objectifs
Objectif de l’enseignement : Acquérir les bases indispensables, de la pharmacologie et les cibles potentielles des agents pharmacologiques, du métabolisme des substances pharmacologiques et actions thérapeutiques et les connaissances comme le substrat essentiel à la conception des médicaments, des notions de pharmacocinétique, les interactions ligands récepteurs et quelques exemples d’actions de médicaments.
Programme
Contenu de la matière :
Cours
Partie I : Données fondamentales en pharmacologie
Chapitre 1 : Pharmacodynamie
- Différentes cibles moléculaires
- Différentes familles des récepteurs
- Interaction avec les systèmes de régulation
Chapitre 2 : Pharmacocinétique
- Définitions
- Etapes pharmacocinétiques
- Paramètres pharmacocinétiques
Partie II : Concepts de base en pharmacologie moléculaire
Chapitre 1 : Neurotransmetteurs
- Principes de base de la neurotransmission
- Les systèmes de neurotransmission
Chapitre 2 : Prostaglandines et dérivés apparentés
- Structure
- Biosynthèse et biotransformations
Chapitre 3 : Thérapies biologiques et anti-cytokines
- Cytokines
- Agents biologiques pour le traitement des maladies auto-immunes
- Efficacité, tolérance
Partie III : Métabolisme des xénobiotiques
Chapitre 1 : Induction enzymatique
- Les enzymes et agents inductibles
- Mécanismes de l’induction enzymatique
Chapitre 2 : Inhibition enzymatique
- Bases
- Inhibition du transport
Partie IV : Toxicologie
Chapitre 1 : Toxicité cellulaire
Cibles moléculaires
Cibles cellulaires
Chapitre 2 : Génotoxicité
Immunotoxicité des Xénobiotiques
Manifestations par organes ou systémiques
Partie V : Pharmacogénétique, pharmacogénomique et thérapie personnalisée
Chapitre 1 : Généralités sur la médecine personnalisée
Recherche clinique et pharmacogénomique
Tests génétiques et phénotypages
Progrès de la pharmacogénomique
Chapitre 2 : Nouvelles approches de la thérapie personnalisée et domaines d’applications
Travaux dirigés : Pharmacologie expérimentale
Méthodes d’études en pharmacologie
Modèles expérimentaux
Cibles potentielles des agents pharmacologiques
Implications de certains concepts moléculaires
Métabolisme des substances pharmacologiques et actions thérapeutiques
Développement d’un médicament : Interactions ligands récepteurs
Polymorphismes génétiques
Place des Biomarqueurs dans différents domaines et en cancérologie
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Bio-programmation 11 créditsCoefficient 1Volume semestriel: 22h30Cours / semaine: 01h30TD / semaine: -TP / semaine: -Autres heures: 02h30
Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %
Explorer la matière
S3Bio-programmation 1Repères
b) Connaissances préalables recommandées : Notions élémentaires d’algorithmique (facultatif), savoir utiliser un ordinateur et naviguer dans un système de fichiers, des connaissances en informatique, bio-informatique, biologie moléculaire et en génétique.
Objectifs
a) Objectif d’enseignement : Initier les étudiants en biologie aux bases de la programmation en Python niveau 1, dans le but de les rendre capables de structurer un code simple, manipuler des données et automatiser des tâches basiques en lien avec leur domaine scientifique.
Programme
c) Contenu de la matière
Chapitre 1 : Introduction à la programmation
- Qu’est-ce qu’un programme ? - Langages de programmation
- Pourquoi choisir Python en biologie ?
- Exemples d'applications en science
Chapitre 2 : Installation et prise en main
- Installation d’Anaconda
- Premier script Python
- Exécution de cellules, sauvegarde, commentaires
Chapitre 3. Variables et types de données
- Types primitifs : int, float, str, bool
- Les tuples, les ensembles, les listes, les dictionnaires
- Opérateurs mathématiques et logiques
- Expression & les instructions de bases (lecture, écriture, affectation)
Chapitre 4 : Structures de contrôle
- Instructions conditionnelles : if, elif, else
- Opérateurs de comparaison
Chapitre 5 : Structures répétitives
- Boucles for et while
- Instructions break et continue
- Parcours de listes
Chapitre 6 : Fonctions
a. Définir une fonction avec def
b. Paramètres et valeurs de retour
Chapitre 7 : Fichiers
- Lire et écrire des fichiers .txt et .csv
- Méthodes open(), read(), write()
Évaluation
d) Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Anglais pour les biologistes – Pré-Intermédiaire1 créditsCoefficient 1Volume semestriel: 22h30Cours / semaine: 01h30TD / semaine: -TP / semaine: -Autres heures: 02h30
Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %
Explorer la matière
S3Anglais pour les biologistes – Pré-IntermédiaireRepères
Connaissances préalables recommandées : Prior knowledge of basic English
Objectifs
Objectifs de l’enseignement; The objective of this course is to provide students with a solid foundation for communicating (both written and spoken) in English.
Programme
Contenu de la matière
Unit 1: The Wonder World
Grammar: auxiliary verbs (do, be, have), naming the tenses, questions and negatives, short answers.
Vocabulary: social expressions.
Reading: wonders of biology.
Speaking: Biology Quiz (using auxiliary verbs, questions and negatives and short answers).
Listening: Ten craziest things cells do.
Writing: Find the mistake and correct it.
Unit 2: Bioethics and biosecurity
Grammar: Present tense.
Vocabulary: Numbers in science.
Reading: Bioethics.
Speaking: Debate on ethics in bioengineering.
Listening: Biosecurity.
Writing: writing a paragraph to describe scientific facts using present tense and numbers.
Unit 3: Telling science stories
Grammar: Past tense.
Vocabulary: graphical representations.
Reading: Agro-industrial residues valorisation.
Speaking: Debate on environmental impacts of biomass.
Listening: Agro-industrial wastes valorisation.
Writing: writing a paragraph to describe methods and results.
Unit 4: Enzyme engineering
Grammar: Modal verbs.
Vocabulary: Enzyme engineering vocabulary
Reading: Can crop residues provide fuel for future transport?
Speaking: Promoting critical thinking with English modal verbs.
Listening: Can enzymes be reused?
Writing: writing a paragraph about the perspectives of enzymes applications using modal verbs.
Unit 5: The future of enzyme technology.
Grammar: future forms
Vocabulary: genetic engineering vocabulary
Reading: Future trends of biotechnology.
Speaking: What role do you think industrial biotechnology will play in the future?
Listening: The future of energy.
Writing: Write an email to your internship supervisor to explain what will your plan on arrival.
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc
Immunotechnologie 2
Nano-immunotechnologies
Génie Génétique
Immunologie des Infections
Atelier d’Immunotechnologie 2 _ Applications
Atelier de Génie Génétique
UE découverte
Lean Startup
UE transversale
Bio-programmation 2
Anglais pour les biologistes - Intermédiaire
Semestre 49 matières
- Immunotechnologie 24 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 55h00
Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %
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S4Immunotechnologie 2Repères
Connaissances préalables recommandées : Notions en immunologie fondamentale approfondie, signalisation cellulaire et moléculaire, biologie moléculaire et en pharmacologie moléculaire.
Objectifs
Objectif de l’enseignement : Les thèmes abordés dans cette unité d'enseignement concernent les recherches et développements actuels de technologies innovantes en immunologie (exemple des anticorps et leurs dérivés, des outils d’analyse, de diagnostic et de thérapeutique, mécanismes de suivi de la réponse immunitaire...), ainsi que les processus de valorisation de ces innovations tels que la thérapie génique et cellulaire et l'immunothérapie.
Programme
Contenu de la matière :
Cours
Chapitre 1 : Le mécanisme d’action des vaccins, le rôle de l’adjuvant
L’histoire de la vaccination
La réponse immunitaire post-vaccinale classique : les anticorps neutralisants
Les types de vaccins
Les voies d’administration
La notion d’adjuvants
Les protections individuelle et collective
Les challenges actuels de la vaccination
Chapitre 2 : Le mécanisme d’action des phages
Historique et découverte des bactériophages
Les principes de la phagothérapie
Chapitre 3 : Le mécanisme d’action des immunoglobulines polyvalentes
Les mécanismes immuno-régulateurs des immunoglobulines polyvalentes
Chapitre 4 : Les mécanismes d’action de l’immunothérapie spécifique de l’allergie ou de la désensibilisation allergénique
Les principes et modalités de l’immunothérapie spécifique de l’allergène
Les mécanismes de l’immunothérapie spécifiques de l’allergène
Chapitre 5 : les rôles et mécanismes d’action des anticorps thérapeutiques et protéines de fusion à portion Fc
L’immunogénicité des anticorps thérapeutiques
Les anticorps thérapeutiques neutralisant des cibles solubles
Les anticorps thérapeutiques antagonistes
Les anticorps thérapeutiques cytolytiques
Les biomédicaments anti-TNF
Chapitre 6 : Les cibles et mécanismes d’action des traitements par cytokines
Les interférons
Les interleukines
Chapitre 7 : Les cibles et mécanismes d’action des immunosuppresseurs
L’implication des immunosuppresseurs dans la réponse immunitaire
La classification des immunosuppresseurs
Les stratégies thérapeutiques en transplantation d’organe
Chapitre 8 : Les mécanismes d’action et cibles immunologiques des glucocorticoïdes
Le mécanisme d’action principal
Les modes d’action non génomiques
Les cibles thérapeutiques
Chapitre 9 : Les cibles et mécanismes d’action des approches d’immunothérapie cellulaire
L’immunothérapie cellulaire adoptive associée à la greffe allogénique hématopoïétique
L’immunothérapie cellulaire adoptive autologue
L’immunothérapie cellulaire adoptive des pathologies auto-immunes
L’immunothérapie cellulaire active : les cellules dendritiques comme vaccin cellulaire
Chapitre 10 : Les aspects immunologiques de la thérapie génique
La thérapie génique
Les réponses immunitaires
Travaux dirigés
Thérapie génique et Cellulaire. Production de vaccins, Immunothérapie et Sérothérapie.
Production des cytokines. Études systématiques d'expression et d'interactions.
Évaluation
Mode d'évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc
- Nano-immunotechnologies4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 55h00
Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %
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S4Nano-immunotechnologiesRepères
Connaissances préalables recommandées : Connaissances de base en immunologie, biologie moléculaire, ainsi qu’en biologie cellulaire.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement : Ce cours vise à introduire les bases de la Nano-immunotechnologie, en expliquant comment les nanotechnologies peuvent interagir avec le système immunitaire pour améliorer les diagnostics, les vaccins et les traitements ciblés. L’objectif est aussi de sensibiliser aux applications biomédicales innovantes.
Objectif : Initier à la conception d’un vecteur pour ARN ciblant un gène immunitaire.
TP 2 : Production de nanoparticules d’argent par biosynthèse biologique
Objectif : Produire des nanoparticules d’argent via un extrait bactérien ou végétal.
Programme
Contenu de la matière
CHAPITRE 1 : Interaction nanomatériaux – système immunitaire
- Propriétés des nanomatériaux à visée biomédicale
Classification des nanomatériaux : organiques (liposomes, polymères), inorganiques (or, silice, carbone)
Propriétés physicochimiques : taille, charge, forme, surface
Influence sur l’absorption, distribution, métabolisme, excrétion (ADME)
- Immunotoxicité et reconnaissance immunitaire des nano-objets
Protéinocouronne : adsorption, reconnaissance par PRRs
Activation du complément, relargage de cytokines
Exemples : toxicité des nanoparticules d’argent, dioxyde de titane
- Ingénierie de surface et immunomodulation
Fonctionnalisation des nanomatériaux : PEGylation, anticorps, ligands ciblants
Réduction de l’immunogénicité, ciblage spécifique (cellules dendritiques, macrophages)
Nanoparticules furtives vs visibles
CHAPITRE 2 : Nanotechnologies appliquées à l’immunothérapie
- Systèmes d’administration ciblée de médicaments immunomodulateurs
Encapsulation de molécules immunoactives : interleukines, anticorps, immunosuppresseurs
Nanoparticules stimuli-sensibles (pH, enzymes, température)
Exemples : curcumine nanoformulée, dexaméthasone liposomale
- Nanovaccins et adjuvants nanoparticulaires
Nanoparticules comme plateformes vaccinales (ARNm, ADN, protéines recombinantes)
Exemples : LNP (lipid nanoparticles) dans les vaccins COVID-19 (Pfizer/BioNTech, Moderna)
Adjuvants à base d’alumine, silice, polymères
- Ciblage tumoral et modulation de la réponse immunitaire
Nanoparticules pour délivrance d’inhibiteurs de checkpoints immunitaires (PD-1/PD-L1)
Immunothérapie CAR-T et nanosupports
Théranostique : combinaison thérapie + imagerie
CHAPITRE 3 : ARN, épigénétique et nanoimmunologie
- ARN non codants dans la régulation immunitaire
MicroARN : rôle dans la polarisation des macrophages, l’activation lymphocytaire, tolérance
Longs ARN non codants (lncRNA) : régulation transcriptionnelle, interactions avec chromatine
Exemples : miR-155 (activateur pro-inflammatoire), lncRNA NEAT1 (régulation des inflammasomes)
- Épigénétique et plasticité du système immunitaire
Mécanismes épigénétiques : méthylation de l’ADN, modifications des histones, remodelage chromatinien
Cellules myéloïdes : reprogrammation épigénétique par pathogènes/nanomolécules
Mémoire innée (trained immunity) via modifications durables du génome
- Nanovecteurs pour la modulation épigénétique et l’administration d’ARN
Nanoparticules pour délivrance ciblée de siRNA/miRNA/lncRNA
Outils de réécriture épigénétique (ex : CRISPR/dCas9 fusionné à des enzymes épigénétiques)
Thérapies émergentes : Cancer (délivrance ciblée de miRNA oncosuppresseurs), Maladies auto-immunes (inhibition de miRNA pro-inflammatoires via nanoparticules)
CHAPITRE 4 : Réglementation, bioéthique et tendances émergentes
- Sécurité, éthique et réglementation des nanomatériaux immunoactifs
Normes ISO, tests in vitro/in vivo
Évaluation
Évaluation des risques : biodistribution, immunotoxicité à long terme
Acceptabilité sociale, enjeux de transparence
- Nanoimmunologie et médecine de demain
Immuno-nanodiagnostic : biosenseurs, nanoparticules magnétiques
Médecine personnalisée : bioinformatique, prédiction des réponses immunes
Perspectives : vaccin contre le cancer, immunoédition, nanothérapies combinées
Travaux pratiques :
TP 1 : Modélisation d’un vecteur nanoparticulaire pour ARNm ou siRNA
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Génie génétique4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 55h00
Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %
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S4Génie génétiqueRepères
Connaissances préalables recommandées : Des connaissances en génétique, en biologie moléculaire et en microbiologie sont indispensables.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement : Les objectifs de ce cours sont d'enseigner aux étudiants différentes approches du génie génétique et de leurs applications dans la recherche biologique ainsi que dans les industries de la biotechnologie.
Compte tenu de l'impact du génie génétique dans la société moderne, les étudiants devraient être dotés d'une solide connaissance théorique de cette technologie. En conjonction avec les travaux pratiques en biologie moléculaire et en génie enzymatique, les étudiants devraient être en mesure d'entreprendre des recherches biologiques ainsi que des stages dans l'industrie biotechnologique pertinente.
Programme
Contenu de la matière
Chapitre 1 : Historique du génie génétique
Chapitre 2 : Les outils enzymatiques du génie génétique
Les enzymes de restriction
Le phénomène de restriction
Les sites de reconnaissance
Isoschizomères
Le système de Restriction-Modification (RM)
Origine des enzymes de restriction
Nomenclature des enzymes de restriction
Types de coupures réalisées par les enzymes de restriction
Les classes d’enzymes de restriction
Méthylation des sites de restriction et inactivation des enzymes de restriction
Utilisations des enzymes de restriction
Les autres enzymes d’usage courant en génie génétique
Les polymérases
Les ligases
Les phosphatases alcalines (PA)
Les nucléases
Autres enzymes spécifiques
Chapitre 3 : L’hybridation moléculaire
Rappels sur le principe de la réaction d’hybridation
Notion de température de fusion de l’ADN
Facteurs influençant la température de fusion
Hybridation moléculaire
L’hybridation en phase liquide
L’hybridation sur support solide
L’hybridation in situ (HIS)
Les sondes
Principes de l’hybridation des acides nucléiques
Le concept de sonde
Quelques stratégies de marquage
Chapitre 4 : Les vecteurs
Généralités sur les vecteurs
Concept de vecteur etses propriétés
Principes généraux d’utilisation d’un vecteur
Les plasmides
L’utilisation d’un plasmide
Préparation des plasmides
Les différents types de plasmides
Origine de réplication
Les phages
Utilisation des phages
Préparation d’un phage
Les différents phages utilisés en biologie moléculaire
Les autres types de vecteurs
Les cosmides
Les chromosomes artificiels
Les vecteurs «navettes »
Les vecteurs viraux eucaryotes
Chapitre 5 : Le clonage et expression des protéines recombinantes
Le principe du clonage
Clonage basé sur la PCR (PCR Based Cloning)
Les banques d’ADN
Les banques d’ADN génomique
Les banques d’ADNc
Systèmes d’expression
Choix du Système d’Expression
Modifications post-traductionnelles
Système d’expression procaryote
Cassette génétique d’expression de protéines recombinantes
Caractéristiques d’E. coli
Récapitulatif de l’expression hétérologue d’une protéine chez E. coli
Expression des protéines recombinantes
Chapitre 6 : Les organismes génétiquement modifiés (OGM)
La transgénèse végétale
La transgénèse végétale et les méthodes d’amélioration classiques
Les techniques de la transgenèse végétale
Les techniques de transformation
La transgénèse animale
Définition
Méthodes de transfert génique chez les animaux
La construction d’un transgène
Autres techniques utilisées pour la création d’OGM
Les principales applications des OGM
Traçabilité et étiquetage des OGM
Chapitre 7 : Les nouvelles techniques de génie génétique et leurs applications
Édition génomique
Nucléases programmables
L'interférence à ARN
Nucléases à doigts de zinc
TALEN
CRISPR/Cas9
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Immunologie des Infections4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 55h00
Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %
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S4Immunologie des InfectionsRepères
Connaissances préalables recommandées : Microbiologie générale, microbiologie clinique, parasitologie, virologie, immunologie, interactions microbiennes avec l’hôte.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement : Connaitre les facteurs de virulence et de pathogénicité, comprendre les mécanismes de la réponse immunitaire face aux différents agents infectieux et les modes et d’échappement aux défenses de l’organisme. Etudier aussi l’immunopathologie liée aux infections ainsi que les applications thérapeutiques pour contourner cela.
Programme
Contenu de la matière
Chapitre 1 : Introduction à l’Immunologie des Infections
Définition et importance du système immunitaire dans les maladies infectieuses
Les différents agents pathogènes et classification des maladies infectieuses
Chapitre 2 : la pathogénèse microbienne
Les étapes du processus infectieux
L’envahissement de l’hôte et le contournement de ses défenses par les bactéries pathogènes
Les dommages causés à l’hôte par les bactéries pathogènes
Les propriétés pathogènes des virus
Les propriétés pathogènes des mycètes, des protozoaires, des helminthes et des algues.
Chapitre 3 : Les facteurs de pathogénicité et de virulence
Les facteurs d’adhésion et de colonisation (fimbriae, LPS, flagelle, système de sécrétion)
Les facteurs de d’invasion
Les facteurs de cytolyse
Les toxines et les super antigènes
Chapitre 4 : Supports génétiques de la virulence
Plasmide de virulence
Bactériophage
Ilots de pathogénicité
Chapitre 5 : Réponses immunitaires Selon le type d’infection
2.1. Immunité Contre les Infections Bactériennes
2.2. Immunité Contre les Infections Virales
2.3. Immunité Contre les Infections Fongiques
2.4. Immunité Contre les Infections Parasitaires
Chapitre 6 : Mécanismes d’évasion des pathogènes et résistance immunitaire
Modification antigénique
Inhibition de la réponse immunitaire
Latence et réactivation des infections chroniques
Chapitre 7 : Immunopathologies liées aux infections
Choc septique et tempête cytokinique
Maladies auto-immunes post-infectieuses
Hypersensibilité aux infections
Chapitre 8 : Applications thérapeutiques
Immunothérapie anti-infectieuse
Immunomodulation
Évaluation
Mode d'évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, articles récents, etc
- Atelier d’Immunotechnologie 2_Applications6 créditsCoefficient 3Volume semestriel: 60h00Cours / semaine: -TD / semaine: -TP / semaine: 04h30Autres heures: 85h00
Évaluation: contrôle continu 100 % · examen —
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S4Atelier d’Immunotechnologie 2 — ApplicationsRepères
Connaissances préalables recommandées : Notions de base en Microbiologie, connaissances théoriques acquises de la matière Immunotechnologie I, maîtrise des techniques d’analyses biochimiques acquises dans le semestre 1 et les notions de culture cellulaire.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement : Dans cet atelier l’étudiant devrait être en mesure d’employer les différentes techniques acquises au cours des ateliers précédents afin de réaliser de façon autonome un protocole expérimental qui consiste à mettre en place un procédé de production de molécules mitogènes telles que le lipopolysaccharide (LPS) ou encore des adjuvants.
Programme
Contenu de la matière :
Atelier 1 : Production de lipopolysaccharide (LPS) à partir de différentes souches bactériennes
Séance 1 : Préparation des cellules bactériennes et lyse cellulaire
Séance 2 : Élimination des contaminants protéiques et nucléiques et Extraction au phénol-eau chaude
Séance 3 : Précipitation du LPS
Séance 4 : Récupération et purification finale après dialyse
Séance 5 : Caractérisation des LPS par SDS-PAGE
Séance 6 : Evaluation de l’effet mitogène du LPS sur les cellules immunitaires telles que les monocytes
Séparation des cellules mononuclées du sang périphérique (PBMCs) par Ficoll
Culture des monocytes
Evaluation de la balance NO/Arginase
Atelier 2 : Production d’adjuvant à partir du LPS
Séance 7 : Libération et détoxification du lipide-A
Séance 8 : Purification du MonophosphorylLipid A, Dialyse et lyophilisation
Séance 9 : Formulation de l’adjuvant avec le protocole d'adsorption sur sels d'aluminium (Alum)
Séance 10 : Evaluation de la fonctionnalité de l’adjuvant MPLA sur sang total
Séparation des PBMCs par Ficoll
Culture des monocytes et différenciation en macrophages
Evaluation de la balance NO/Arginase
Séance 11 : étude statistique et interprétation des résultats finaux
Évaluation
Mode d’évaluation : 100 % Contrôle continu.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Atelier de Génie Génétique4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: -TD / semaine: -TP / semaine: 03h00Autres heures: 55h00
Évaluation: contrôle continu 100 % · examen —
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S4Atelier de Génie GénétiqueRepères
Connaissances préalables recommandées : Des connaissances préalables en microbiologie, en génétique, en génie génétique et en biologie moléculaire
Objectifs
Objectifs de l’enseignement : Cet atelier vise à fournir aux étudiants les connaissances nécessaires en matière de clonage et d’expression dans une bactérie hôte du gène d’une molécule d’intérêt technologique d’origine bactérienne.
Programme
Contenu de la matière :
Techniques
Dessin des amorces de clonage et simulation in-silico du clonage du gène de l’α-amylase à l’aide du logiciel SnapGene.
Extraction de l’ADN génomique de la souche d’intérêt.
PCR de clonage du gène d’intérêt à l’aide des amorces de clonage.
Purification du produit de PCR à l’aide d’un kit PCR Clean-up.
Digestion enzymatique de l’insert et du vecteur plasmidique (pET21/28 a+) avec le couple d’enzymes de restriction approprié.
Purification des produits de digestion à partir du gel d’agarose.
Ligation du gène avec le vecteur plasmidique.
Transformation de la bactérie hôte bibliothèque E. coli DH5α.
Extraction de la construction génétique et transformation de la souche hôte d’expression E. coli BL21 (DE3).
Criblage des clones transformés en présence d’antibiotique.
Tests d’expression de l’enzyme recombinante (SDS-PAGE)
Purification de l’enzyme recombinante par le biais d’une colonne de chromatographie d'affinité, HisTrap.
Séance 1 (05 heures) :
Préparation des solutions et milieux de culture.
Dessin des amorces de clonage.
Séance 2 (06 heures) :
Extraction de l’ADN génomique de la souche bactérienne Bacillus sp à l’aide d’un kit.
PCR de clonage du gène d’intérêt.
Simulation in-silico du clonage du gène de l’α-amylase à l’aide du logiciel SnapGene.
Tests qualitatifs et quantitatifs : électrophorèse sur gel d’agarose.
Séance 3 (06 heures) :
Purification du produit de PCR et dosage de l’ADN.
Digestion enzymatique de l’insert et du vecteur plasmidique (pET21/28 a+) avec le couple d’enzymes de restriction approprié.
Simulation du séquençage (vérification in-silico du produit de PCR séquencé)
Electrophores des produits de digestion suivie de leur purification à partir du gel d’agarose.
Séance 4 (06 heures) :
Préparation des cellules bactériennes compétentes (part 01).
Ligation du gène avec le vecteur plasmidique.
Séance 5 (06 heures) :
Préparation des cellules bactériennes compétentes (part 02).
Transformation de la bactérie hôte bibliothèque E. coli DH5α.
Séance 6 (08 heures) :
Criblage des clones transformés en présence d’antibiotique.
Conférence sur les enzymes recombinantes
Extraction de la construction génétique et transformation de la souche hôte d’expression E. coli BL21 (DE3).
Séance 7 (06 heures) :
Tests d’expression de l’enzyme recombinante (part 01) :
Préparation des différentes cultures avec les différentes conditions.
Séance 8 (06 heures) :
Tests d’expression de l’enzyme recombinante (part 02) :
SDS-PAGE.
Séance 9 (06 heures) :
Purification de l’enzyme recombinante His-taguée par le biais d’une colonne de chromatographie d'affinité, HisTrap.
Évaluation
Mode d’évaluation : 100 % Contrôle continu.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Lean Startup2 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: -TP / semaine: 01h30Autres heures: 10h00
Évaluation: contrôle continu 60 % · examen 40 %
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S4Lean StartupRepères
b) Prérequis recommandés
Les étudiants sont censés posséder des connaissances préalables dans les domaines suivants :
Fondamentaux de l’entrepreneuriat.
Bases de la gestion de projet.
Concepts d’innovation et de développement technologique.
Méthodologie générale de la recherche.
Objectifs
a) Objectifs du cours
Ce module est consacré à l’étude des concepts, méthodes et outils liés à la méthodologie Lean Startup. Il met l’accent sur les mécanismes de construction de projets innovants dans des environnements caractérisés par un fort degré d’incertitude, en s’appuyant sur l’expérimentation, l’apprentissage rapide et la validation continue des hypothèses.
À l’issue de ce module, les étudiants seront capables de :
Comprendre les principes fondamentaux et la philosophie de la méthodologie Lean Startup.
Transformer une idée innovante ou un résultat de recherche en un projet d’entreprise viable.
Formuler et tester les hypothèses clés sous-jacentes à un projet.
Concevoir et développer un Produit Minimum Viable (MVP).
Analyser les données du marché et prendre des décisions commerciales éclairées.
Aligner l’innovation et la recherche scientifique avec les besoins du marché et les attentes des clients.
Le module adopte des approches pédagogiques modernes, notamment :
Apprentissage par projet (PBL).
Apprentissage expérientiel.
Travail en équipe pluridisciplinaire.
Simulation de l’écosystème des startups.
Apprentissage fondé sur la résolution de problèmes.
Programme
c) Contenu du cours
I- Cours magistraux
Unité
Titre
Thèmes détaillés
1
L’université entrepreneuriale et l’Université 4.0
– Évolution des universités de la version 1.0 à 4.0 – Caractéristiques de l’Université 4.0 – Transformation numérique et intelligence artificielle dans l’enseignement supérieur – Le rôle des universités dans l’économie de la connaissance – Valorisation de la recherche scientifique – Transformation des résultats de recherche en startups – Les universités comme moteurs d’innovation et de développement économique – Exemples internationaux d’universités entrepreneuriales : MIT, Stanford, Cambridge, Tsinghua, NUS, TUM et PSL/Polytechnique.
2
Écosystème de l’entrepreneuriat et de l’innovation en Algérie et à l’université
– Définition de l’écosystème entrepreneurial – Acteurs clés de l’écosystème – Politique algérienne de soutien à l’innovation – Incubateurs et accélérateurs – Fonds d’investissement – Arrêté ministériel 1275 (Startups, micro-entreprises, brevets) – Incubateurs universitaires et centres d’appui technologique – Rôle de l’intelligence artificielle dans l’écosystème – Mise en relation des universités avec le tissu économique.
3
Introduction aux startups et à la méthodologie Lean Startup
– Différence entre entreprises traditionnelles et startups – Concept d’innovation – L’incertitude dans les projets entrepreneuriaux – Origines de l’approche Lean Startup – Principes fondamentaux de la méthodologie – Apprentissage validé – Réduction du gaspillage – Cycle Construire–Mesurer–Apprendre – Comptabilité de l’innovation – Différence entre comptabilité traditionnelle et comptabilité de l’innovation – Mesurer le progrès en situation d’incertitude – Indicateurs d’apprentissage plutôt que de profit.
4
Compréhension du marché et découverte client
– Étapes de la création d’une startup : idée, équipe, prototype, investissement – Méthodologie de Steve Blank – Customer Development : comprendre le marché et le comportement des clients – Identification du problème – Analyse des besoins clients – Entretiens entrepreneuriaux – Construction d’hypothèses – Adéquation problème–solution (Problem–Solution Fit).
5
Business Model Canvas
– Concept du Business Model Canvas – Proposition de valeur – Segments de clientèle – Canaux – Flux de revenus – Structure financière / Structure de coûts.
6
Produit Minimum Viable — MVP
– Concept de MVP – Types de MVP : numérique, expérimental, service, fausse porte (fake-door) – Test des hypothèses – Prototypage rapide – Outils de développement de prototypes – MVP digitaux et industriels – Comment mesurer l’échec le plus rapidement possible.
7
Intelligence artificielle et TRIZ pour l’innovation
– L’intelligence artificielle dans l’entrepreneuriat – Génération d’idées – Analyse de marché – Développement de MVP – Marketing intelligent – Méthodologie TRIZ – Contradictions techniques – Résultat final idéal – Combinaison de l’IA et de TRIZ – Startups de Deep Tech.
8
Mesure, analyse et gestion de l’échec
– KPI — Indicateurs clés de performance – Gestion d’une startup – Pilotage des équipes d’innovation – Concepts de mesure de la croissance dans les startups – Métriques AARRR : méthode de mesure du développement d’une startup en cinq étapes : - Acquisition : Comment atteindre et attirer les clients ? - Activation : L’utilisateur essaie-t-il le produit pour la première fois ? - Rétention : Les utilisateurs reviennent-ils l’utiliser ? - Revenu : Le projet génère-t-il des revenus/profits ? - Recommandation (Referral) : Les utilisateurs recommandent-ils le produit à d’autres ?
9
Pivoter ou persévérer
– Concept de Pivot : changement stratégique partiel ou complet – Concept de Persévérance : poursuivre la direction actuelle – Quand changer de direction ? – Types de Pivot – Indicateurs de décision.
10
Financement, croissance et passage à l’échelle
– Financement initial – Autofinancement / bootstrapping – Investisseurs – Business angels – Capital-risque – Financement participatif (crowdfunding) – Étapes de financement – Growth Hacking – Moteurs de croissance.
II- Travaux pratiques
Séance
Titre
Contenu
1
Étude de cas : Le MIT et l’université entrepreneuriale
Analyser pourquoi le MIT a réussi à créer des milliers de startups ; identifier la relation entre recherche et innovation ; expliquer le rôle des incubateurs et accélérateurs ; comparer le MIT aux universités algériennes ; proposer un plan pour transformer une université algérienne en Université 4.0.
1
Atelier : Concevoir une Université 4.0 algérienne
Travailler en équipe pour concevoir un centre d’innovation, un incubateur d’entreprises, un accélérateur d’entreprises, un centre d’appui technologique et d’innovation, une filiale et un fonds d’investissement universitaire ; présenter une feuille de route organisationnelle intégrée pour un modèle d’Université 4.0.
2
Étude de cas : Parcours d’une startup algérienne
Sélectionner une startup algérienne ayant obtenu le label startup ; analyser les acteurs qui l’ont soutenue ; identifier ses sources de financement ; cartographier son écosystème ; proposer des mécanismes pour accélérer sa croissance.
2
Atelier : Cartographie de l’écosystème entrepreneurial
Utiliser Miro ou Canvas pour cartographier les acteurs de l’écosystème entrepreneurial algérien : universités, centres de recherche, incubateurs, accélérateurs, investisseurs, banques, entreprises, agences publiques, startups et innovateurs ; montrer les relations entre acteurs et présenter des propositions d’amélioration.
3
Étude de cas : Échec d’une startup technologique
Analyser une startup qui a dépensé des ressources avant de valider le besoin du marché ; identifier les erreurs et les sources de gaspillage ; proposer comment le Lean Startup aurait pu réduire le risque ; concevoir un cycle Construire–Mesurer–Apprendre alternatif.
3
Atelier : Dropbox et validation Lean
Analyser comment Dropbox a validé la demande avant de développer le produit complet ; identifier les hypothèses testées ; comparer le coût de l’expérience au coût du développement complet ; expliquer la valeur d’une validation précoce.
4
Étude de cas : Une plateforme d’intelligence artificielle pour les étudiants
Les étudiants analysent un projet de plateforme d’assistance académique basée sur l’IA. Ils formulent 10 hypothèses, préparent un guide d’entretien, conduisent 20 entretiens sur le terrain et extraient les problèmes réels rencontrés par les étudiants. Le livrable attendu est un énoncé de problème validé, étayé par des preuves d’entretien.
4
Atelier : Entretiens entrepreneuriaux
Les étudiants simulent des entretiens entrepreneuriaux en jouant les rôles d’entrepreneur, de client potentiel et d’investisseur. Ils s’exercent à poser des questions, recueillir des retours et analyser les résultats. Le livrable est un court rapport montrant les hypothèses validées, rejetées et les principaux enseignements clients.
5
Atelier Business Model Canvas
Construire un Business Model Canvas complet pour un projet choisi ; définir la proposition de valeur, les clients, les canaux, les flux de revenus, les partenaires et les coûts ; défendre le modèle devant la classe ou un comité d’évaluation.
6
Étude de cas : Une application de livraison intelligente
Les étudiants analysent un projet d’application de livraison intelligente avec un budget d’équipe limité. Ils conçoivent le MVP au coût le plus bas, identifient les hypothèses critiques à tester, choisissent le type de MVP le plus approprié et définissent des indicateurs clairs de succès et d’échec. Le livrable est un plan de conception de MVP avec des hypothèses testables et des critères d’évaluation.
6
Atelier : Construire un véritable MVP
Les étudiants construisent un premier MVP ou prototype à l’aide d’outils comme Figma, Glide, Bubble ou Canva. Le prototype peut être développé pendant la séance ou à la maison. Le livrable est un prototype fonctionnel ou visuel simple pouvant être utilisé pour des tests clients.
7
Étude de cas : Une startup d’agriculture intelligente
Les étudiants analysent une startup d’agriculture intelligente visant à augmenter la production tout en réduisant la consommation d’eau. Ils identifient la contradiction technique, appliquent les principes TRIZ, utilisent des assistants d’IA générative pour générer des solutions et évaluent les solutions proposées. Le livrable est un ensemble de solutions d’innovation justifiées basées sur l’idéation assistée par IA et le raisonnement TRIZ.
7
Atelier : Sprint d’innovation IA
Un sprint de 90 minutes. Les étudiants utilisent uniquement des outils d’IA pour générer une idée innovante, définir un MVP et construire un modèle d’affaires préliminaire. Le livrable est un court concept d’innovation incluant le problème, la solution proposée, le MVP et la structure du modèle d’affaires.
8
Étude de cas : Une plateforme d’e-learning
Les étudiants analysent une plateforme d’e-learning à l’aide de données de base : 10 000 visites, 1 000 inscriptions, 400 utilisateurs actifs et 40 clients payants. Ils calculent les indicateurs AARRR, identifient le principal goulot d’étranglement, suggèrent des actions d’amélioration et décident si le projet progresse vers l’adéquation produit–marché (Product–Market Fit). Le livrable est un court rapport analytique basé sur les métriques startup.
8
Atelier : Tableau de bord startup
Les étudiants construisent un tableau de bord startup incluant Acquisition, Activation, Rétention, Revenu, Recommandation et Taux de consommation (Burn Rate). Ils interprètent les résultats et expliquent comment le tableau de bord peut guider les décisions. Le livrable est un tableau de bord visuel simple accompagné de commentaires sur la performance, les faiblesses et les actions recommandées.
9
Étude de cas : Instagram — De Burbn à Instagram
Les étudiants analysent la transition de Burbn à Instagram comme un exemple de Pivot. Ils identifient la raison du Pivot, les données qui ont soutenu la décision, les résultats obtenus et les choix stratégiques alternatifs possibles. Le livrable est une courte analyse de cas expliquant pourquoi le Pivot était justifié.
9
Atelier : Simulation de conseil d’administration
Les étudiants analysent un dossier de startup incluant indicateurs de performance, retours clients et données financières. Ils simulent une réunion du conseil d’administration et prennent une décision collective : Pivoter, Persévérer ou Arrêter le projet. Le livrable est une décision stratégique justifiée, étayée par des statistiques, des preuves et des chiffres.
10
Projet semestriel de Startup Lab
Les étudiants développent un projet de startup tout au long du semestre. Le projet comprend : sélection d’un problème réel, conduite de la Découverte Client, préparation d’un Business Model Canvas, conception d’un MVP, utilisation d’outils d’IA et de TRIZ, mesure et analyse des résultats, prise de décision Pivoter/Persévérer, préparation d’un plan de financement et de croissance, et présentation d’un pitch final. Le livrable est un dossier complet de projet startup et une présentation pitch finale.
Évaluation
d) Mode d’évaluation
Composante
Description
Pondération
Contrôle continu
60%
Projet de groupe
Travail continu en équipe tout au long du module. Les étudiants développent progressivement leur projet à travers l’identification du problème, la découverte client, le test des hypothèses, la conception du modèle d’affaires, le développement du MVP et l’affinement du projet.
40 %
Travaux dirigés et pratiques
Participation aux TD, ateliers, exercices pratiques, discussions, séances de feedback et activités intermédiaires liées à la méthodologie Lean Startup.
20%
Examen final
40%
Rapport écrit
Rapport écrit présentant le développement, la validation, le modèle d’affaires, le MVP, les décisions stratégiques et les perspectives de croissance du projet startup.
20%
Présentation orale
Présentation orale du projet d’équipe, suivie d’une discussion et d’une évaluation de la clarté, de la cohérence, de la pertinence entrepreneuriale et de la qualité de la communication.
20%
Références
e) Références (ouvrages, polycopiés et sites web, etc.)
Livres sur le Lean Startup et la méthodologie entrepreneuriale
The Lean Startup, 2011, Eric Ries .
The Startup Owner’s Manual, 2012, Steve Blank, Bob Dorf .
Running Lean, 2012, Ash Maurya .
Modèle d’affaires et conception de la valeur
Business Model Generation, 2010, Alexander Osterwalder, -
Yves Pigneur
Value Proposition Design, 2014, Alexander Osterwalder, .
Yves Pigneur, Gregory Bernarda, Alan Smith
Croissance et stratégies des startups
Traction: How Any Startup Can Achieve Explosive Customer .
Growth, 2015, Gabriel Weinberg, Justin Mares
Hooked: How to Build Habit-Forming Products, 2014, Nir .
Eyal
Mesure, analyse et gestion de la performance
Lean Analytics, 2013, Alistair Croll, Benjamin Yoskovitz .
Measure What Matters, 2017, John Doerr .
Management et leadership dans les startups
High Output Management, 1983, Andrew S. Grove .
The Hard Thing About Hard Things, 2014, Ben Horowitz .
Intelligence artificielle et entrepreneuriat
Prediction Machines: The Simple Economics of Artificial .
Intelligence, 2018, Ajay Agrawal, Joshua Gans, Avi Goldfarb
Competing in the Age of Al, 2020, Marco lansiti, KarimR. .
Lakhani
Innovation et méthodologie TRIZ
The Innovation Algorithm: TRIZ, Systematic Innovation and .
Technical Creativity, 1999, Genrich Altshuller
20
TRIZ: The Theory of Inventive Problem Solving, 2003, Sergei .
Ikovenko
Articles scientifiques essentiels
Why the Lean Start-Up Changes Everything, 2013, Steve .
Blank
Do Things That Don’t Scale, 2013, Paul Graham .
Rapports et livres blancs
Startup Playbook, 2018, Y Combinator .
The State of Al in Business, 2023, McKinsey Global Institute .
Artificial Intelligence Index Report, 2024, Stanford .
University
OECD Entrepreneurship and Innovation Policy Frameworks, .
2022, OECD
- Bio-programmation 21 créditsCoefficient 1Volume semestriel: 22h30Cours / semaine: 01h30TD / semaine: -TP / semaine: -Autres heures: 02h30
Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %
Explorer la matière
S4Bio-programmation 2Repères
Connaissances préalables
Maîtrise des concepts de base de Python niveau 1
Familiarité avec un environnement de développement (IDE comme PyCharm ou Jupyter)
Objectifs
Objectifs de l’enseignement
Réactiver les bases de Python (variables, boucles, fonctions, fichiers).
Comprendre l’utilité des bibliothèques scientifiques (NumPy, Pandas, Matplotlib) en biologie.
Savoir installer/importer des bibliothèques via Anaconda.
Travailler avec des outils bio-informatiques
Réaliser un projet d’analyse ou de simulation
Programme
Contenu de la matière
1. Manipulation de données avec NumPy
Utiliser des tableaux NumPy pour représenter des données biologiques (séquences, matrices).
Appliquer des opérations vectorielles et le slicing pour l’analyse de données.
2. Analyse de données biologiques avec Pandas
Lire et manipuler des fichiers CSV (ex : résultats PCR, dosages enzymatiques).
Trier, filtrer et regrouper des données pour l’analyse expérimentale.
3. Visualisation des données avec Matplotlib
Créer des graphiques (courbes, histogrammes) pour présenter des résultats biologiques.
Personnaliser des visualisations (titres, légendes, étiquettes).
4. Programmation Orientée Objet (POO)
Concepts fondamentaux (Comprendre les classes, objets, attributs et méthodes. Implémenter une classe simple
Héritage et méthodes spéciales.
5. Introduction à Biopython
Lire et analyser des fichiers FASTA.
Extraire des informations de séquences ADN (longueur, contenu).
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Anglais pour les biologistes - Intermédiaire1 créditsCoefficient 1Volume semestriel: 22h30Cours / semaine: 01h30TD / semaine: -TP / semaine: -Autres heures: 02h30
Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %
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S4Anglais pour les biologistes - IntermédiaireRepères
Connaissances préalables recommandées : Prior knowledge of basic English
Objectifs
Objectifs de l’enseignement : The objective of this course is to provide students with a solid foundation for communicating (both written and spoken) in English.
Programme
Contenu de la matière
Unit 1: The World of work
Grammar: Present perfect
Vocabulary: Work and employment vocabulary.
Reading: Dream jobs.
Speaking: What is your dream job?
Listening: Types of Biotech Companies.
Writing: Writing application letters.
Unit 2: Microalgae: the green gold of the future?
Grammar: Conditionals.
Everyday English: making suggestions.
Reading: High-added value products from microalgae.
Speaking: If you have funding, what would you do?
Listening: Biofuel from microalgae.
Writing: If the microalgae...
Unit 3: Food Biotechnology
Grammar: Reported speech.
Vocabulary: Vocabulary for biotechnology
Reading: Applications of enzymes in the Food Industry
Speaking: Is it safe to use enzymes in food?
Listening: Enzymes in milk & cheese.
Writing: Scientific text using reported speech.
Unit 4: Biofuel cell
Grammar: Expressions of quantity.
Vocabulary: Biofuel cells vocabulary.
Reading: Biofuel Cells, enzymes and microbes for energy production.
Speaking: Why don’t we have functional biofuel yet?
Listening: The future of bioenergy.
Writing: From excel to text, expressions of quantities.
Unit 5: Bioentrepreneurship
Grammar: Relative clauses.
Vocabulary: Entrepreneurship.
Reading: The three pillars of bioentrepreneurship.
Speaking: Biotechnology and economic development.
Listening: Biotechnology is the future of manufacturing.
Writing: scientific text using relative clauses.
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
Mécanisme de l’Oncogenèse
Microbiome Humain
Biostatistiques
Biologie de Synthèse
Atelier de modélisation en immunotechnologie
Atelier de Production de Vaccins
UE découverte
Pharmacognosie
UE transversale
Reverse Engineering
Anglais pour les biologistes - Avancé
Semestre 59 matières
- Mécanisme de l’Oncogenèse4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 55h00
Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %
Explorer la matière
S5Mécanisme de l’OncogenèseRepères
Connaissances préalables recommandées : Notions de base en physiologie cellulaire, signalisation et communication cellulaire et biologie moléculaire.
Objectifs
Objectif de l’enseignement : Cette matière a pour objectif de donner les bases des altérations structurales du génome (mutations, variations du nombre de copiesdes gènes, réarrangements simples ou complexes), des altérations génomiques et épigénomiques des cellules cancéreuses, de la cellule cancéreuse au cancer et des altérations moléculaires rencontrées dans les principaux cancers.
Programme
Contenu de la matière :
Partie I Introduction générale à l'oncogenèse
Chapitre 1 : Vue d’ensemble de l’oncogenèse
Mécanismes de l’oncogenèse
Oncogènes et gènes suppresseurs de tumeurs
Signification des mutations présentes dans les cancers et Régulation de l’expression des gènes
Chapitre 2 : La transformation maligne
Des altérations de l’ADN peuvent induire une transformation maligne
La découverte des oncogènes
La progression cancéreuse : un processus en plusieurs étapes
Partie II Immunité anti-tumorale
Chapitre 1 : Réaction immunitaire antitumorale : concepts et principaux acteurs
Antigènes de tumeurs
Modélisation du déclenchement de la réponse immunitaire antitumorale
Chapitre 2 : Régulation de l’activation lymphocytaire T
Ontogénie et différenciation des lymphocytes T
Mécanismes d’activation et Fonctions biologiques des lymphocytes T
Régulation de la réponse T
Chapitre 3 : Rôle des lymphocytes B à l’immunothérapie antitumorale
Les lymphocytes B, un acteur de choix dans la réponse adaptative
Le rôle des LB infiltrant les tumeurs
Utilisation des propriétés des LB pour le développement des stratégies de biothérapies
Chapitre 4 : Rôles des cellules dendritiques
Activation des cellules dendritiques et induction de la réponse immunitaire
Cellules dendritiques en contexte physiopathologique
Immunothérapies ciblant ou utilisant les cellules dendritiques
Partie III Altérations génomiques et épigénomiques des cellules cancéreuses
Chapitre 1 : Voies ubiquitaires de prolifération cellulaire
Récepteurs à activité tyrosine kinase
Voie des MAP kinases
Voie de la PI3 kinase
Chapitre 2 : Voies de prolifération spécialisées
Voies des cytokines et voies impliquant des G-protein–coupled receptors (GPCR)
Voies Hippo ou YAP/TAZ, Purinergiques et Wnt–β-caténine
Voies Notch et Hedgehog et voies conduisant au NFκB et Récepteurs nucléaires
Chapitre 3 : Multiplication et mort cellulaires
Contrôle du cycle cellulaire
Contrôle de l’apoptose
Chapitre 4 : Adhésion et motilité
Adhésion cellulaire
Motilité cellulaire
Chapitre 5 : Voies de la migration cellulaire
Voie des chimiokines, des intégrines et des sémaphorines
Voie du transforming growth factor beta (TGFβ) et voies des éphrines
Chapitre 6 : Régulations transcriptionnelles
Méthylation de l’ADN et Modifications post-traductionnelles des histones
Remodelage de la chromatine, Épissage alternatif et Facteurs de transcription
Micro-ARN et Longs ARN non codants
Chapitre 7 : Métabolisme et régulations intracytoplasmiques
Biosynthèse des protéines
Stress du réticulum endoplasmique et Autophagie
Ubiquitinylation des protéines et protéasome
Partie IV De la cellule cancéreuse au cancer
Chapitre 1 : Instabilité génomique
Erreurs réplicatives et réparation des mésappariements
Processus oxydatifs endogènes et réparation par excision de base
Cassures simple brin et réparation par excision de nucléotides : deux sujets à distinguer ; ce rapprochement dans le programme ne signifie pas que cette voie répare toutes les cassures simple brin.
Coupures double-brin et réparation par recombinaison de l’ADN.
Chapitre 2 : Immortalité des lignées cellulaires
Télomères
Télomérase
Mécanisme alternatif d’allongement des télomères (ALT)
Chapitre 3 : Dissémination métastatique
Physiopathologie de la métastase
Génome et épigénome de la métastase
Transition épithélio-mésenchymateuse
Colonisation des organes cibles
Chapitre 4 : Angiogenèse
Étapes de l’angiogenèse
Mise en jeu de l’hypoxie
Signalisation de l’angiogenèse
Chapitre 5 : Cancers épithéliaux et non épithéliaux
Cancers du sein et colorectaux
Cancers du pancréas et Hépatocarcinomes
Cancers de la vessie et des voies urinaires et de la prostate
Cancers de l’ovaire, du col de l’utérus et de l’endomètre
Cancers de la peau et de la thyroïde
Glioblastomes et Sarcomes des tissus mous
Mélanomes cutanés
Leucémies et Lymphomes malins
Chapitre 6 : L’immunothérapie des cancers
Les anticorps monoclonaux
Utilisation des cytokines
Utilisation des lymphocytes T spécifiques de tumeurs amplifiés in vitro
La manipulation des molécules de costimulation
Travaux dirigés
Analyses de documents et réalisation d’exposés dans les domaines couverts par les cours.
Évaluation
Mode d'évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc
Oncogenèse et progression des cancers Bases biologiques de la cancérologie. Jacques Robert. éditions Lavoisier Médecine Sciences, 2020. ISBN : 978-2-257-20754-8.
Immunité anti-tumorale; Bases biologiques de la cancérologie. Karen Leroy, Diane Damotte. éditions Lavoisier Médecine Sciences, 2019. ISBN : 978-2-257-20716-6.
- Microbiome Humain4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 55h00
Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %
Explorer la matière
S5Microbiome HumainRepères
Connaissances préalables recommandées : Connaissances préalables en Microbiologie générale, Physiologie cellulaire, Systématique et écologie microbienne et Biochimie microbienne.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement : Connaissance de la microflore humaine, leur origine, et les facteurs influençant leur développement ainsi que leur rôle. Comprendre le lien entre la composition du microbiote et les maladies métaboliques, hépatiques et inflammatoires. Les nouvelles approches thérapeutiques.
Programme
Contenu de la matière
Partie I : Le microbiote normal : (à l’équilibre)
Chapitre 1 : Analyse et composition
Techniques d’identification et d’exploration du microbiote.
Composition du microbiote intestinal.
Etablissement et évolution du microbiote.
Facteur modulant la composition du microbiote intestinal.
Chapitre 2 : Microbiote intestinal et fonctions de l’organisme
Dialogue hôte microbiote.
Microbiote et effet de barrière.
Microbiote intestinal et système immunitaire.
Microbiote intestinal et capacité métabolique.
Partie II : Le microbiote pathologique : la dysbiose
Chapitre 1 : Microbiote et maladies du tractus digestif
Diarrhées infectieuses et diarrhées dues aux antibiotiques.
Microbiote et troubles fonctionnels intestinaux.
Microbiote et maladie cœliaque.
Maladies inflammatoires chroniques de l’intestin.
Rôle du microbiote intestinal dans le syndrome du grêle court.
Entérocolite ulcéro-nécrosante.
Microbiote et cancers digestifs.
Chapitre 2 : Microbiote et maladie métaboliques et hépatiques
Microbiote et obésité / apports alimentaires / chirurgie bariatrique.
Syndrome métabolique / diabète.
Microbiote et foie : maladies hépatiques métaboliques et nutritionnelles.
Microbiote et nutrition entérale.
Microbiote et malnutrition infantile
Chapitre 3 : Microbiote et autres maladies
Microbiote et santé cardiovasculaire.
Microbiote et réactions allergiques.
Microbiote intestinal et maladies psychiatriques et neurodégénératives.
Microbiote et rhumatologie / médecine interne.
Microbiote intestinal et dermatologie.
Microbiote intestinal et gynécologie / urologie.
Microbiote et iatrogénie.
Partie III : Modulation du microbiote intestinal
Chapitre 1 : Modulation nutritionnelle
Régulation précoce
Régulation à court et à long terme
Chapitre 2 : Probiotiques, Prébiotiques et Symbiotiques
Définition.
Réglementation.
Classifications et propriétés.
Utilisations actuelles des probiotiques.
Mécanisme d’action.
Chapitre 3 : La transplantation de microbiote fécal
Définition et contexte
Réglementation
La transplantation
La transplantation fécale dans l’obésité.
La transplantation fécale dans les allergies
Chapitre 4 : Autres approches de modulation
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc
- Biostatistiques4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 55h00
Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %
Explorer la matière
S5BiostatistiquesRepères
Connaissances préalables recommandées : En mathématique, en informatique et en biostatistique
Objectifs
Objectifs de l’enseignement : L'objectif de cette matière est d'initier les étudiants aux méthodes statistiques et de comprendre les principes sous-jacents, ainsi que des directives pratiques de « comment le faire » et « comment l'interpréter » des données statistiques en particulier pour les biosystèmes.
A l'issue de ce cours, les étudiants doivent être capables de :
Comprendre comment résumer des données statistiques ;
Appliquer des tests statistiques appropriés basés sur une compréhension de la question de l'étude, du type d'étude et du type de données ;
Interpréter les résultats des tests statistiques et leur application dans les systèmes biologiques.
Programme
Contenu de la matière :
Introduction : Bienvenu à l’univers R
- Installation du logiciel
- Principes de base de l'utilisation de R
Calcul de la moyenne et des écart-types
Analyse de la corrélation et de la régression
Représentations graphiques
Analyse de la variance (un facteur et deux facteurs) et de la covariance
Tests statistiques
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc
- Biologie de Synthèse4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 55h00
Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %
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S5Biologie de SynthèseRepères
Connaissances préalables recommandées : Des connaissances en biologie moléculaire et en génétique.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement : Au terme du cours, l'étudiant maîtrisera les concepts de base de la biologie synthétique. Il sera capable de synthétiser virtuellement ainsi que dans E. coli de simples systèmes synthétiques.
Programme
Contenu de la matière
Introduction en biologie de synthèse
Repères historiques
Définitions et but de la biologie de synthèses :
Les trois grandes stratégies en biologie de synthèse (Button-up, top-down et protocell)
Les Biobriques :
Séquençages ADN
Fabrication d'ADN (« briques élémentaires »)
Les châssis : naturelle et synthétique
Chimie, biochimie et néocodage du vivant
Les outils pour le contrôle de l’expression génique :
Outils et approches de la biologie synthétique
Ingénierie du vivant et ingénierie métabolique :
Synthia
Synthèse de l’artémisimine
Systèmes bactériens utilisés comme capteur environnementaux et pour diagnostique biomédicale
Génomes artificiels et notion de xénobiologie
Applications
Aspect règlementaire et bio sûreté :
Sécurité, aspects sociaux et éthiques
Travaux dirigés
Analyses de documents et réalisation d’exposés dans les domaines couverts par les cours.
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Atelier de Production de Vaccins6 créditsCoefficient 3Volume semestriel: 60h00Cours / semaine: -TD / semaine: -TP / semaine: 04h30Autres heures: 85h00
Évaluation: contrôle continu 100 % · examen —
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S5Atelier de Production de VaccinsRepères
Connaissances préalables recommandées
Ensembles des contenus de la formation.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement :
Cet atelier vise à doter les étudiants des compétences pratiques nécessaires à la production d’un vaccin inactivé à base de bactéries entières (E. coli), incluant l’encapsulation des antigènes dans des microparticules de PLGA, la formulation avec adjuvant, et l’évaluation de l’efficacité vaccinale sur modèle animal. Les notions de Biosécurité et Bioéthique sont abordées tout le long de l’atelier.
Programme
Contenu de la matière
Séance 1 : Culture bactérienne
Séance 2 : Inactivation thermique
Contrôle de stérilité
Séance 3 : Préparation des microparticules de PLGA
Séance 4 : Encapsuler les bactéries inactivées dans les microparticules de PLGA
Séance 5 : Caractérisation des microparticules
Analyse de la taille et de la morphologie des microparticules.
Dosage des protéines encapsulées.
Séance 6 : Formulation avec adjuvant
Séance 7 : Immunisation des modèles animaux
Sélection et préparation des souris.
Injection de la formulation par voie sous-cutanée ou intramusculaire.
Séance 8 : Suivi de la réponse immunitaire
Prélèvement d'échantillons de sang.
Dosage des anticorps spécifiques par ELISA.
Séance 9 : Test de challenge
Exposition des animaux immunisés à la souche bactérienne virulente.
Surveillance des signes cliniques et de la mortalité.
Séance 10 : Analyse finale et conservation
Compilation et analyse des données immunologiques et de protection.
Évaluation
Évaluation de la stabilité du vaccin à différentes températures.
Mode d’évaluation : 100 % Contrôle continu.
Référence :
1. Arshadi, N., Mousavi, S. L., Amani, J., & Nazarian, S. (2020). Immunogenic potency of formalin and heat inactivated E. coli O157:H7 in mouse model administered by different routes. Avicenna Journal of Medical Biotechnology, 12(3), 194–200.
2. Pace, J. L., Rossi, H. A., Esposito, V. M., Frey, S. M., Tucker, K. D., & Walker, R. I. (1998). Inactivated whole-cell bacterial vaccines: Current status and novel strategies. Vaccine, 16(16), 1563–1574. https://doi.org/10.1016/S0264-410X(98)00046-2
3. Kawser, Z., &Shamsuzzaman, S. M. (2021). Intradermal immunization with heat-killed Klebsiella pneumoniae leading to the production of protective immunoglobulin G in BALB/c mice. International Journal of Applied and Basic MedicalResearch, 11(3), 160–165.
- Atelier de Modélisation en Immunotechnologie4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: -TD / semaine: -TP / semaine: 03h00Autres heures: 55h00
Évaluation: contrôle continu 100 % · examen —
Explorer la matière
S5Atelier de Modélisation en ImmunotechnologieRepères
Connaissances préalables recommandées : Notions de bases en bioinformatique et en immunoinformatique ainsi que les connaissances fondamentales de l’immunologie et de l’immunotechnologie.
Objectifs
Objectifs de l’enseignement : Cet enseignement vise à fournir à l’étudiant les notions de base du docking moléculaire ainsi que les simulations des réponses immunitaires et ce dans le but de les mettre en œuvre dans la modélisation et l’optimisation des procédés de fabrication d’anticorps monoclonaux ou de médicaments
Programme
Contenu de la matière :
Partie I. Docking moléculaire
Chapitre 1 : Interaction Protéine-ligand :
Protéine- enzyme
Protéine-Peptide
Protéine-Protéine
Chapitre 2 : Détermination des sites actifs
Chapitre 3 : Design de peptides
Chapitre 4 : Exemples d’applications
Partie II. Dynamique moléculaire
Évaluation
Mode d’évaluation : 100 % contrôle continu.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Pharmacognosie2 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 10h00
Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %
Explorer la matière
S5PharmacognosieRepères
Connaissances préalables recommandées : Notions acquises en pharmacologie moléculaire
Objectifs
Objectif de l’enseignement : Connaître l’obtention et les intérêts des substances naturelles en thérapeutique: production de métabolites d'intérêt par des sources végétales ; nature, définition et rôles des métabolites secondaires ; principales voies de biogénèse des 3 classes de métabolites secondaires (alcaloïdes, terpènes, polyphénols) ; exemples de propriétés pharmacologiques et emplois des drogues ; méthodes d’obtention (extraction / purification) et de caractérisation des principales classes de métabolites secondaires ; définition d’une drogue végétale, circuit des drogues végétales et contrôles qualités.
Programme
Contenu de la matière :
Chapitre 1 : Introduction à la Pharmacognosie
Importance des substances naturelles en thérapeutique
Introduction aux métabolites primaires et secondaires
Chapitre 2 : Composés du métabolisme primaire et secondaires
Définition des 2 types de métabolisme
Rôles des métabolites primaires et secondaires (ex. des végétaux)
Diversité structurale des métabolites secondaires
Utilisations/Applications des métabolites primaires et secondaires
Chapitre 3 : Terpènes et stéroïdes
Huiles essentielles
Résines, oléorésines, gomme-résine, baumes
Iridoïdes
Saponosides
Matières premières pour l’industrie des stéroïdes
Hétérosides cardiotoniques
Chapitre 4 : Les Composés phénoliques
Composés phénoliques
Phénols et acides phénols
Coumarines
Lignanes
Flavonoïdes
Anthocyanes
Tannins
Dérivés hydroxyanthracéniques
Orcinols et phloroglucinols « chanvre indien »
Chapitre 5 : les alcaloïdes
Généralités sur les alcaloïdes
Alcaloïdes tropanique « belladone, datura, jusquiame, coca »
Alcaloïdes quinolizidiniques « genet à balai »
Alcaloïdes indoliques « ergot de seigle, rauwolfia, pervenches, ochrosias »
Alcaloïdes quinoléine « quinquinas »
Les alcaloïdes iso quinoléines « pavot somnifère »
Alcaloïdes tropolones « colchique »
Alcaloïdes à noyau imidazole « jaborandi »
Alcaloïdes diterpéniques « aconit »
Bases puriques « café, thé, cola, cacao »
Chapitre 6 : Notions galénique
Principales formes galéniques en phytothérapie
Mise en pratique : préparations magistrales
Critères de choix de la forme galénique
Chapitre 7 : Phytothérapies et pathologie
Toxicité intrinsèque des plantes
Risques d’interactions entre plantes médicinales et médicaments
Contres indication et précautions d’emploi des plantes médicinales
Chapitre 8 : Monographie
Différentes plantes médicinales
Indications des plantes médicinales selon leurs propriétés en phytothérapie clinique intégrative
Chapitre 9 : Place de l’évaluation clinique et biologique dans le choix d’un traitement à base de plantes médicinales et le suivi de ses effets
Phytopharmacologie
Etude des cas cliniques
Travaux dirigés
Principes fondamentaux des la phytothérapie, homéopathie, aromathérapie.
Formes galéniques des préparations végétales.
Phytovigilance et sécurité du consommateur.
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Reverse Engineering1 créditsCoefficient 1Volume semestriel: 22h30Cours / semaine: 01h30TD / semaine: -TP / semaine: -Autres heures: 02h30
Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %
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S5Reverse EngineeringObjectifs
Objectifs de l’enseignement :
Comprendre les notions de base de Reverse Engineering appliquée à l’immunotechnologie.
Se familiariser avec les logiciels libres pour une autonomie numérique à usage immunotechnologique.
Comprendre les principes et les étapes du reverse engineering appliquée aux dispositifs et protocoles immunotechnologiques.
Analyser et déconstruire des produits ou procédés existants (kits ELISA, dispositifs de diagnostic rapide, immunocapteurs, vaccins, etc.).
Rétro-concevoir un protocole expérimental ou un dispositif biomédical à partir de son observation ou de sa documentation.
Identifier les possibilités d’amélioration ou d’optimisation.
Compétences visées :
Connaitre les concepts de base du Reverse Engineering et ses applications industrielles.
Analyser structurellement et fonctionnellement un produit immunotechnologique existant.
Décrire les composants et les mécanismes d’action.
Réaliser un schéma fonctionnel du système déconstruit.
Proposer des pistes d’amélioration ou de réingénierie.
Programme
Contenu de la matière
Partie 1 :
Concepts fondamentaux du Reverse Engineering
Définition et historique
Origine du concept en ingénierie mécanique, électronique, puis adaptation aux sciences du vivant.
Importance du RE dans la biologie moderne : comprendre, améliorer, reproduire.
Différences entre Reverse Engineering et Forward Engineering
Forward Engineering : processus de conception linéaire (de l'idée au produit).
Reverse Engineering : partir d'un produit existant pour en déduire la conception.
Applications industrielles
Maintenance et amélioration d'appareillages biologiques (PCR, séquenceurs).
Innovation compétitive : bio-impression, création d'outils diagnostics alternatifs.
Interopérabilité : compatibilité entre instruments, logiciels et bases de données.
Échelle TRL (Technology Readiness Level)
Présentation des 9 niveaux TRL
TRL 1 : Observation scientifique de base.
TRL 5 : Validation technologique en environnement pertinent.
TRL 9 : Système validé en environnement opérationnel.
Positionnement d’un projet biologique selon les TRL
Exemples : développement d’un test PCR rapide, production de vaccins expérimentaux.
Les moyens nécessaires pour franchir les TRL
Ressources humaines, matérielles, financières.
Planification des essais pilotes et pré-industriels.
Cadre juridique et propriété intellectuelle
Le droit à l’ingénierie inverse face aux brevets
Principe du fair use, DMCA, directives européennes.
Analyse comparative internationale
Gestion des risques juridiques
Rédaction de contrats clairs, clauses spécifiques RE, protections anti-contournement.
Limites légales
RE autorisé pour analyse et interopérabilité ; interdit pour copie/revente non autorisée.
Partie 2 : En sciences Biologiques :
1. Reverse Engineering des Systèmes Biologiques
Approche de déconstruction biologique
Décomposition de réseaux métaboliques et voies de signalisation.
Reconstruction fonctionnelle à partir de données expérimentales.
Exemples concrets
Réseaux de réponse au stress oxydatif.
Mécanismes moléculaires de l'apoptose.
2. Bioinformatique et Logiciels Libres en Sciences Biologiques
Introduction aux logiciels open-source
Biopython, RStudio, Galaxy pour bioanalyse.
Ateliers pratiques
Annotation génomique libre avec GenomeTools.
Analyse de séquences de gènes cibles avec FastQC et Clustal Omega.
3. Modélisation et Simulation en Biologie
Outils de simulation libre
COPASI pour la dynamique des systèmes biochimiques.
CellDesigner pour modéliser les réseaux de signalisation.
Mini-projets
Simulation de la dynamique d'un réseau d'inflammation.
Optimisation d’une voie métabolique via un modèle dynamique.
Partie 3 : En Immunotechnologie : Cette partie permet aux étudiants l’identification de cas concrets de reverse engineering, l’utilisation d'outils open-source adaptés (ImageJ, Packtage R/Bioconductor , FreeCAD …) et La réflexion sur les impacts éthiques et juridiques.
Reverse Engineering des anticorps et immunodiagnostics
Extraction et modélisation de la structure 3D d’anticorps (RosettaAntibody, PyMOL).
Atelier
Reconstitution d'un test rapide antigénique basé sur les anticorps open-source.
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
- Anglais pour les biologistes - Avancé1 créditsCoefficient 1Volume semestriel: 22h30Cours / semaine: 01h30TD / semaine: -TP / semaine: -Autres heures: 02h30
Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %
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S5Anglais pour les biologistes - AvancéRepères
Connaissances préalables recommandées: Connaissances de base en anglais
Objectifs
Objectifs de l’enseignement: Cette matière développe les compétences des étudiants en communication écrite et orale en anglais.
Programme
Contenu de la matière
Unité 1 : Règles fondamentales de rédaction des manuscrits scientifiques
- Vue d’ensemble de la langue des manuscrits scientifiques
- Temps verbaux
- Grammaire
- Phrases
- Paragraphes
Unité 2 : Erreurs fréquentes à éviter dans la rédaction d’un manuscrit
Unité 3 : Soutenance de thèse
- Qu’est-ce qu’une soutenance de thèse ?
- Comment commencer sa présentation ?
- Formuler la problématique et les objectifs de recherche
- Décrire les méthodes
- Décrire et discuter les résultats
- Conclusion et perspectives
- Travailler les transitions
- Comment conclure sa présentation ?
Unité 4 : Après le diplôme, quelle suite ?
- Définir ses objectifs professionnels
- Préparer un entretien d’embauche
- Rédiger son CV
- Rédiger une lettre de motivation
- Présenter une candidature à une bourse
Évaluation
Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.
Références
Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
Projet de fin d’études
Semestre 61 matière
- Projet de Fin d’Etudes30 créditsCoefficient 17Volume semestriel: 750Cours / semaine: 75TD / semaine: 225TP / semaine: 450Autres heures: -
Évaluation: contrôle continu 50 % · examen 50 %
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S6Projet de Fin d’EtudesObjectifs
Objectifs de l’enseignement
Les objectifs du projet de fin d’études sont de préparer les étudiants à s'adapter à l'environnement de la recherche et à comprendre comment les projets sont exécutés dans un laboratoire. Il permettra également aux étudiants d'apprendre les aspects pratiques de la Biologie Moléculaire et de former les étudiants à l'art de l'analyse et de la rédaction de thèses.
Résultats d'apprentissage des étudiants :
Les étudiants devraient être capables d'apprendre comment sélectionner et défendre un sujet de leur recherche, comment planifier, exécuter, évaluer et discuter efficacement leurs expériences. Les étudiants devraient être en mesure de démontrer une amélioration considérable dans les domaines suivants :
Connaissance approfondie du domaine de recherche choisi.
Capacité à intégrer de manière critique et systématique les connaissances pour identifier les problèmes qui doivent être traités dans le cadre d'une thèse spécifique.
Compétence dans la conception et la planification de la recherche.
Capacité à créer, analyser et évaluer de manière critique différentes solutions techniques.
Capacité à mener des recherches de manière indépendante.
Aptitude à appliquer des techniques analytiques/méthodes expérimentales.
Compétences en gestion de projet.
Compétences en rédaction de rapports.
Des talents pour la résolution des problèmes.
Compétences en communication et relations interpersonnelles.
Programme
Contenu de la matière
Planification et réalisation d'expériences
Sur la base de la proposition de projet soumise au semestre précédent, les étudiants devraient être capables de, planifier et de s'engager dans une enquête critique indépendante, un projet de fin d’études en Biotechnologie. Ils devraient être en mesure d'identifier systématiquement la théorie et les concepts pertinents, de les relier aux méthodologies et aux preuves appropriées, d'appliquer les techniques appropriées et de tirer les conclusions appropriées. Les étudiants doivent être en mesure de travailler de manière indépendante et soient capables de comprendre le but de chaque expérience qu'ils réalisent. Ils devraient également être en mesure de comprendre les résultats possibles de chaque expérience.
Rédaction du manuscrit
À la fin de leur projet, une thèse doit être écrite donnant tous les détails tels que l'objectif, la méthodologie, les résultats, la discussion et les travaux futurs liés à leur projet. Les étudiants peuvent viser à faire publier leurs résultats de recherche dans une revue à comité de lecture. Si les résultats de la recherche ont des résultats orientés vers l'application, les étudiants peuvent déposer une demande de brevet.
Évaluation
Mode d’évaluation :
Manuscrit : 50 % ; Soutenance : 50 %.

