Emblème du ministère de l’Enseignement supérieur et de la Recherche scientifiqueRépublique Algérienne Démocratique et Populaire · Ministère de l’Enseignement Supérieur et de la Recherche Scientifique

Immunotechnologie

Relier l’immunologie aux outils de diagnostic et aux biotechnologies.

DiplômeIngénieur d’État
DuréeSecond cycle · trois ans

L’immunotechnologie associe immunologie, biotechnologies et analyse de données. Elle forme à l’étude des mécanismes immunitaires et à leurs applications dans l’immunodiagnostic, la vaccinologie, les biothérapies et la bioproduction.

Immunotechnologie — illustration des anticorps et des interactions immunitaires
Immunotechnologie — illustration des anticorps et des interactions immunitaires
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Responsable de spécialité

Dr Imène Belhassena

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Département

Département du Second Cycle

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Objectifs de la formation

Comprendre le système immunitaire, de la molécule à l’organisme, et les réponses innée et adaptative. Relier ces bases à l’immunologie clinique et aux applications technologiques, aux biothérapies et à l’innovation biomédicale.

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Disciplines et enseignements

S1–S2 : immunologie fondamentale approfondie, biochimie métabolique, signalisation cellulaire, biologie moléculaire, immunogénétique et immuno-informatique. S3–S4 : immunotechnologie, culture cellulaire, immunophysiopathologie, génie génétique, génomique et protéomique. S5 : oncogenèse, neuro-immunologie, microbiome humain, biologie de synthèse, biostatistiques et atelier entrepreneurial. S6 : projet de fin d’études.

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Compétences développées

Analyser les interactions antigène–anticorps et les tests qui en découlent ; choisir une méthode immunologique adaptée à une question biologique ; interpréter les résultats. Développer autonomie, organisation, communication scientifique et conduite de projets dans les biotechnologies.

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Domaines d’application

Immunodiagnostic, vaccinologie, biothérapies et bioproduction.

07

Stages

Stages en laboratoire de recherche ou en entreprise.

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Projet de fin d’études

Projet mobilisant les acquis scientifiques et pratiques.

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Perspectives professionnelles

biotechnologies, industrie pharmaceutique, recherche, laboratoires d’analyse et développement de projets innovants.

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Doctorat et recherche

La formation prépare à la recherche et à une candidature en doctorat selon les conditions d’accès et les offres ouvertes. À l’ESSBO, les formations doctorales en Biotechnologie et Santé et en Biotechnologie Microbienne prolongent l’environnement scientifique des sciences biologiques.

Maquette pédagogique · 2026

Votre parcours, semestre par semestre

46 matières affichées

Semestre 19 matières
  1. Immunologie Fondamentale Approfondie 1
    5 créditsCoefficient 3Volume semestriel: 45h00
    Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 80h00

    Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %

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    S1
    Immunologie Fondamentale Approfondie 1

    Repères

    Connaissances préalables recommandées : Notions d’immunologie.

    Objectifs

    Objectif de l’enseignement : Dans ce module l’étudiant approfondi les connaissances de l’immunologie en concentrant sur l'immunité innée et la réaction inflammatoire.

    Programme

    Contenu de la matière :

    Cours

    Partie I : Introduction à l’immunologie

    Chapitre 1 : Concept de base en immunologie

    Vue d’ensemble du système immunitaire

    Notion d’antigène et structure de reconnaissance

    Soi, Non soi, sélection clonale

    Rôle et propriété du système immunitaire

    Chapitre 2 : Structure et organisation générale du système immunitaire

    Les organes lymphoïdes : localisation, structure et fonction

    Les différentes cellules immunitaires : morphologie, fonction, marqueurs de différentiation

    Partie II : Immunité innée et la réaction inflammatoire

    Chapitre 1 : Immunité innée

    Les cellules d’immunité innée et leurs récepteurs.

    Chapitre 2 : Le système du complément

    Les voies d'activation du complément

    Les voies effectrices du système du complément

    La régulation

    Les récepteurs du complément

    Complément et pathologies humaines

    Exploration du système du complément

    Chapitre 3 : Les lymphocytes NK (Natural Killer)

    Les caractéristiques générales des cellules NK

    L'origine et maturation des cellules NK

    Les fonctions des cellules

    Mécanisme de la reconnaissance de l’activation des cellules NK

    Récepteurs des cellules NK

    Implication dans l'immunité anti-tumorale

    Chapitre 4 :Les neutrophiles

    Introduction aux neutrophiles

    Origine et développement des neutrophiles : de la moelle osseuse au foyer inflammatoire

    Phénotypes et plasticité fonctionnelle des neutrophiles

    Fonctions effectrices des neutrophiles

    Chapitre 5 : Réactions inflammatoires

    Introduction

    Les différents éléments qui interviennent dans le processus inflammatoire.

    Les différentes phases de l'inflammation

    Les différents types de l'inflammation

    Les marqueurs biologiques de l’inflammation

    Traitement

    Travaux dirigés

    Série d’exercices surla réponse immunitaire innée et inflammation

    Série d’exercices surle système du complément

    Analyse d’articles scientifiques ou exposés

    Évaluation

    d) Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.

    Références

    e) Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.

    Les bases de l’immunologiefondamentale et clinique. Abul K. Abbas, Andrew H. Lichtman. Traduction de la 3e édition anglaise : Pierre L. Masson, 2008 ; 244 pages.

    Immunologie fondamentale et immunopathologie, 2e édition, de l'ASSIM : Collège des Enseignants d'Immunologie, Elsevier Masson SAS; 2018.

    Immunologie exercices QCM, questions de cours et problèmes résolus. Bruno Lemaître, Giovanna Clavarino, Bianca Petrignani, Ppur. 2020: 304 pages.

  2. Biochimie Métabolique et Régulation
    4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00
    Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 55h00

    Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %

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    S1
    Biochimie Métabolique et Régulation

    Repères

    Connaissances préalables recommandées : Biochimie structurale, enzymologie et biologie moléculaire.

    Objectifs

    Objectifs d'enseignement : Acquérir des connaissances approfondies du métabolisme des glucides, des lipides, des acides aminés et de ses régulations.

    Programme

    Contenu de la matière :

    Cours

    Partie I : Vue d’ensemble du métabolisme

    Chapitre 1 : Carrefours métaboliques

    Rappel des différentes voies métaboliques

    Chapitre 2 : Bioénergétique

    Rappels de thermodynamique

    Mécanisme moléculaire et le transfert d’électrons de la chaine respiratoire mitochondriale

    Chapitre 3 : Catalyse enzymatique

    Structure et propriétés des enzymes

    Nomenclature et Classification des enzymes

    Mécanisme de l’action enzymatique

    Cinétique enzymatique

    Activité catalytique

    Les enzymes allostériques

    Partie II : Métabolismes et processus de régulation

    Chapitre 1 : Régulation enzymatique et hormonale

    Régulation enzymatique

    Régulation hormonale et métabolique

    Chapitre 2 : Métabolisme des glucides et des glycoconjugués

    Métabolisme et régulation de la glycolyse

    Régulation et pathologies du métabolisme du Glycogène

    Transduction du signal et les transports membranaires

    Autres voies du métabolisme des glucides

    Chapitre 3 : Exploration du métabolisme des lipides

    Organisation du métabolisme des lipides

    Métabolisme des eicosanoides

    Métabolisme des vitamines liposolubles

    Régulation du métabolisme des lipides et des acides gras

    Chapitre 4 : Métabolisme des aminoacides

    Biosynthèse des acides aminés

    Catabolisme de l'azote et du squelette carboné des acides aminés

    Transformation des acides aminés en produits spécialisés

    Chapitre 5 : Biochimie intégrative de la cellule

    Radicaux libres et stress oxydatif

    La biochimie du vieillissement

    Métabolisme du tissu nerveux et régulation métabolique des synapses

    Évaluation

    d) Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.

    Références

    e) Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.

    Biochimie structurale et métabolique. Christian Moussard. 3e Édition. 2006 ; 352 pages.

    Biochimie et biologie moléculaire. Christian Moussard. ‎DE BOECK SUP. ‎2e Édition. 2020; ‎344 pages.

    Biochimie métabolique. Sabine Meyer-Rogge et Kai Meyer-Rogge, De Boeck, 2012.

  3. Signalisation Cellulaire et Moléculaire
    4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00
    Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 55h00

    Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %

    Explorer la matière
    S1
    Signalisation Cellulaire et Moléculaire

    Repères

    Connaissances préalables recommandées : L’étudiant devra avoir les bases en biochimie, immunologie et en biologie cellulaire.

    Objectifs

    Objectifs d'enseignement : Cette matière a pour objectif de donner les bases de la dynamique membranaire, la compartimentation intracellulaire et son intégration dans la fonction cellulaire ainsi que la transmission des signaux intracellulaires à partir de ligands hydrophiles. Notions de modules et d’interconnexions de réseaux de signaling. Initiation à la génomique biochimique.

    Programme

    Contenu de la matière :

    Chapitre I : Rappel sur l’organisation moléculaire des biomembranes

    1. Structure des biomembranes

    1.1. Asymétrie de composition et de répartition des lipides membranaires

    1.2. Répartition des protéines membranaires

    2. Fluidité membranaire

    3. Mécanismes d’adressage

    3.1. Trafic vésiculaire intracellulaire des protéines

    3.2. Modifications post-traductionnelles des protéines

    3.2.1. Lipidation

    3.2.2. Glycosylation

    Chapitre II : Récepteurs membranaires et molécules de signalisation intracellulaires

    Récepteurs membranaires et leurs ligands

    Caractéristiques des récepteurs

    Classification des récepteurs selon leur localisation

    1.2.1. Récepteurs nucléaires

    1.2.2. Récepteurs membranaires

    Types de récepteurs membranaires

    1.3.1. Récepteurs canaux ioniques

    1.3.2. Récepteurs couplés aux protéines G (GPCR)

    1.3.3. Récepteurs à activité enzymatique intrinsèque

    1.3.3.1. Récepteurs tyrosine kinase (RTK)

    1.3.3.2. Récepteurs à activité sérine/thréonine kinase

    1.3.4. Récepteurs à activité guanylatecyclase

    1.3.5. Récepteurs couplés à une tyrosine kinase

    1.3.6. Récepteurs couplés à une sérine/thréonine kinase

    Schéma général d’une voie de signalisation

    Réseau de molécules de signalisation intracellulaires

    Principales protéines adaptatrices

    Domaines d’interaction protéine-protéin

    3.1.1.1. Domaines SH (Src Homology Domain)

    3.1.1.2. Domaines PTB (PhosphoTyrosine Binding)

    3.1.2. Protéines adaptatrices à domaines SH2

    3.1.2.1. Protéine Grb2

    3.1.2.2. Protéine Shc

    Petites protéines G monomériques

    3.2.1. Superfamille des protéines Ras

    3.3. Protéines régulatrices associées aux petites protéines G

    3.3.1. Protéines d’échange GEP (GTP/GDP Exchange proteins)

    3.3.2. Protéine GAP (GTPase-ActivatingProteins)

    3.4. Enzymes et Seconds messagers intracellulaires

    3.4.1. Propriétés d’un second messager

    3.4.2. Réactions de synthèse des seconds messagers et enzymes

    3.4.2.1. AMPcyclique et adénylate cyclase

    3.4.2.2. Diacyl glycérol (DAG), inositol triphosphate (IP3) et phospholipases C

    3.4.2.3. Phosphatidyl inositol triphosphate (PIP2) et PI3-Kinase

    3.4.2.4. GMPcyclique et guanylatecyclase

    3.5. Protéines kinases

    3.5.1. Réactions de phosphorylation et les domaines kinases

    3.5.2. Principales protéines kinases

    3.5.2.1. Protéine kinase A (PKA)

    3.5.2.2. Protéine kinase C (PKC)

    3.5.2.3. Protéine kinase B (Akt)

    3.5.2.4. Mitogen-activated protein kinases (MAPK)

    Chapitre III : Bases moléculaires de signalisation par les récepteurs Tyrosine kinase

    Mécanismes d’activation des récepteurs Tyrosine kinase (RTK)

    Dimérisation des récepteurs

    Transphosphorylation des récepteurs

    Activation de la cascade des Mitogen-ActivatedProteins kinases (MAP Kinases)

    Facteurs de transcription activés par les MAP kinases : AP1 (Activator Protein-1)

    Activation de la voie de la phosphatidyIinositol-3-kinase (PI3K)

    Activité lipide kinase de la PI3K

    Classes de la PI3K

    Classe IA

    Classe IB

    Rôle des sous-unités de la PI3K

    Mécanismes d’activation de la PI3K par les RTK

    Activation directe

    Activation par la protéine adaptatrice IRS (insulinreceptorsubstrate 1)

    Activation par la protéine Ras

    Recrutement de la PDK (Phosphoinositide-dependent kinase 1)

    Activation de la protéine Akt (PKB)

    Chapitre IV : Voies de signalisation par les récepteurs couplés aux protéines G

    Protéines hétérotrimériques G

    Structure des protéines G (sous-unités , et )

    Les protéines G et sous-unités : s, i, q et12

    Cycle d’activation/inactivation de la protéine G

    Activation de l’adénylate cyclase par la sous-unité s de la protéine G

    Activation de la phospholipase C (PLC) par la sous-unité q de la protéine G

    4.1. Libération des seconds messagers : Diacylglycérol (DAG), inositol- triphosphate (IP3)

    4.2. DAG et activation de la Protéine kinase C (PKC)

    4.3. IP3 et mobilisation du calcium intracellulaire

    Implication de la sous-unité de la protéine G dans l’activation de la PI3-Kinase

    Facteurs de transcription CREB

    Chapitre VI : Facteurs de transcription dépendant du signal

    Classification simplifiée des facteurs de transcription

    Facteurs de transcription constitutivement actifs

    Facteurs de transcription régulés

    Facteurs de transcription régulés par un signal membranaire

    Facteurs à localisation nucléaire (C/EBP, AP1)

    Facteurs à localisation cytoplasmique

    STAT (Signal Transducer and Activator of Transcription)

    SMAD (Sma et Mad)

    NF-B (Nuclear Factor-B)

    Activation des facteurs de transcription STAT par la voie des cytokines

    Définition et classes de cytokines

    Récepteurs couplés à une tyrosine kinase cytoplasmique JAK (Janus kinase)

    Membres de la famille JAK

    Activation des récepteurs par les kinases JAK

    Transmission du signal par les STAT

    Membres de la famille des STAT

    Structure des protéines STAT

    Activation des STAT et translocation vers le noyau

    Activation de la voie JAK/STAT par l’IL-6

    Activation de la voie JAK/STAT par l’IFN-

    Activation des facteurs de transcription SMAD par le TGF-

    Membre de la famille des SMAD

    Structure des protéines SMAD

    Voie canonique d’activation des SMAD par les Récepteurs sérine/thréonine kinase

    Voie canonique d’activation du NF-B par l’IL-1 et le TNF-

    4.1. NF-B

    4.1.1. Membres de la famille du NF-B

    4.1.2. Caractéristiques structurales du NF-B

    4.1.3. Protéinesinhibitrices IB ( et )

    4.1.4. Kinase IKK (IB kinase)

    4.2. Activation du NF-B par l’IL-1

    4.2.1. Complexe du récepteur de l’IL-1

    4.2.2. Voie de signalisation de l’IL-1 MyD- dépendante

    4.3. Activation du NF-B par le TNF-

    4.3.1. Récepteurs du TNF-

    4.3.2. Voie de signalisation par le récepteur de type 1 du TNF-

    4.4. Gènes de réponse au NF-B

    Chapitre V : Apports de l’intelligence artificielle dans l’étude des voies de signalisation cellulaire

    Analyse des réseaux d’interactions protéiques avec STRING

    Fonctionnement de STRING : sources de données, scores de confiance

    Visualisation d’un réseau de signalisation (ex : voie MAPK)

    Interprétation des connexions : protéines centrales, hubs, complexe

    Enrichissement fonctionnel et exploration des voies avec ShinyGO

    Concept de Gene Ontology (GO) et de pathways (KEGG, Reactome)

    Analyse d’un jeu de données (liste de gènes/protéines)

    Identification des voies de signalisation significativement enrichies

    Prédiction de la structure 3D des protéines de signalisation avec AlphaFold

    De la séquence à la structure : principes de la prédiction

    Utilisation de la base AlphaFoldProtein Structure Database

    Identification des domaines fonctionnels (ex : domaines kinases, SH2, etc.)

    Cas pratique : visualisation d'une protéine clé dans PyMOL ou ChimeraX

    Étude de cas intégrée : Voie PI3K-AKT

    Reconstitution du réseau avec STRING

    Enrichissement des fonctions associées avec ShinyGO

    Visualisation de la structure d’AKT ou de PI3K via AlphaFold

    Discussion : apport combiné des outils pour comprendre la régulation cellulaire

    Limites, perspectives et ouverture vers la recherche

    Limites des données et interprétation des résultats

    Complémentarité avec les approches expérimentales

    Évaluation

    Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.

    Références

    Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.

    Communications et signalisations cellulaires, 4ème édition, Editeur lavoisier, ISBN : 978-2-7430-1508-4.

    L’essentiel de la biologie cellulaire B. Alberts, D. Bray, K. Hopkin, A. Johnson, J. Lewis, M. Raff, K. Roberts, P. Walter, 3e edition, 2012.

    Biologie moléculaire de la cellule B. Alberts, J. Wilson, 5e édition, 2011.

  4. Biologie Moléculaire 1
    4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00
    Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 55h00

    Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %

    Explorer la matière
    S1
    Biologie Moléculaire 1

    Repères

    Connaissances préalables recommandées

    En biologie cellulaire, en biochimie et en génétique.

    Objectifs

    Objectifs de l’enseignement

    Les étudiants devraient être capables d'acquérir des connaissances de base sur la structure et les propriétés des acides nucléiques et comprendre l’organisation des génomes et des gènes chez les procaryotes et les eucaryotes. L’objectif de cette matière est aussi d'apprendre les divers événements moléculaires impliqués dans la réplication et la transcription de l’ADN, ainsi que la traduction de l’ARN messager. Les mécanismes par lesquels l'ADN pourrait être endommagé et réparé y seront également détaillés.

    Les étudiants seront également sensibilisés à l’intégration de l’intelligence artificielle (IA) en biologie moléculaire, afin de développer des compétences en analyse de données biologiques et encourager une approche interdisciplinaire innovante.

    Programme

    Contenu de la matière :

    Introduction à la biologie moléculaire

    Définition

    Historique

    Dogme central de la biologie moléculaire

    Structure des acides nucléiques

    1. Les composants chimiques des acides nucléiques

    1.1. Les bases azotées

    1.2. Les pentoses

    1.3. Le groupement phosphate

    2. Nucléosides, nucléotides

    2.1. Liaison N-glycosidique et les différents nucléosides générés

    2.2. Liaison phosphoester

    2.3. Liaison pyrophosphate

    2.4. Nomenclature

    3. Polymérisation des nucléotides

    3.1. Liaison phosphodiester et formation des polymères nucléotidiques

    3.2. Conventions d’écriture

    4. L’acide désoxyribonucléique (ADN)

    4.1. Structure de l’ADN

    4.2. Caractéristiques de la double hélice

    4.3. Propriétés physico-chimiques de l’ADN

    4.4. Structure tridimensionnelle (compaction), suprastructure.

    5. Les acides ribonucléiques (ARN)

    5.1. Structure et caractéristiques acides ribonucléiques

    5.2. Les différents types d’acides ribonucléiques : synthèse et fonction

    6. Manipulation des acides nucléiques

    Exonucléases, endonucléases de restriction.

    Organisation des génomes et des gènes

    Définitions

    Organisation des génomes

    2. 1 Contenu des génomes

    2. 2 Variabilité des génomes

    2. 3 Ressemblance entre génomes

    2. 4 Génome des procaryotes

    ADN chromosomique

    ADN extrachromosomique : les plasmides

    2. 5 Génome des eucaryotes

    Hétérogénéité des séquences d’ADN

    ADN hautement répété

    ADN moyennement répété

    ADN non répété

    ADN mitochondrial

    2. 6 Plasticité des génomes et éléments transposables

    Organisation des gènes

    3. 1 Chez les procaryotes

    3. 2 Chez les eucaryotes

    3. 3 Différents types de gènes

    Gènes à copie unique ; gènes de structure, gènes de régulation, pseudogènes et gènes de ménage.

    Familles et superfamilles de gènes (homologues, paralogues, orthologues, xénologues)

    Réplication de l’ADN

    Généralités

    Lois fondamentales de la réplication

    2. 1. Réplication semi-conservative

    2. 2. Origine de réplication

    2. 3. Réplication bidirectionnelle

    2. 4. Polymérisation unidirectionnelle

    2. 5. Réplication semi-discontinue

    2. 6. Amorce d’ARN (primer)

    Les enzymes de la réplication

    3. 1. Les hélicases

    3. 2. Les topoisomérases

    3. 3. La primase

    3. 4. Les ADN polymérases

    3. 5. L’ADN ligase

    Les protéines de la réplication

    La réplication chez les procaryotes

    5. 1. Les différentes protéines mise en jeu

    5. 2. Origines et terminaisons chez E-Coli

    5. 3. Les étapes de la réplication procaryote

    5. 4. Régulation de la réplication chez E-Coli

    La réplication chez les eucaryotes

    6. 1. Les ADN polymérases eucaryotes

    6. 2. Les télomères et les télomérases

    Histones et réplication

    La réplication du matériel génétique des rétrovirus

    Variations et maintenance du matériel génétique

    Introduction

    Lésions de l’ADN

    Lésions endogènes

    Erreurs de réplication

    Tautomérisation

    Dépurinations et dépyrimidations

    Désaminations

    Erreurs de méthylations

    Lésions provoquées par des agents exogènes

    Les lésions dues à des mutagènes physiques

    Les lésions dues à des mutagènes chimiques

    Prévention

    Réponses cellulaires aux lésions de l’ADN

    Réparation de l’ADN

    Réparation immédiate

    Réparation durant la réplication

    Inversion directe photolyases

    Inversion directe par alkyl transférases

    Réparation secondaire

    Réparation par excision de base (BER)

    Réparation par excision de nucléotide (NER)

    Réparation des mésappariements

    Réparation des cassures par la recombinaison

    Système SOS chez E. coli

    Déficience de systèmes de réparation (quelques exemples)

    Variations génétiques

    Types de mutations ponctuelles

    Selon la nature de la mutation

    Mutation par substitution ; Mutation par délétion ; Mutation par addition

    Selon la conséquence de la mutation

    Mutation faux sens ; Mutation non-sens ; Mutation silencieuse ; Mutation Frameshift

    Transcription de l’ADN

    Généralités

    L’unité de transcription

    Notion de brin matrice et brin codant

    Transcription chez les procaryotes

    Initiation

    Elongation

    Terminaison

    Terminaison rho-dépendante

    Terminaison rho-indépendante

    Maturation des transcrits primaires

    Transcription chez les eucaryotes

    Différence dans la transcription eucaryote

    Les ARN-polymérases eucaryotes

    Complexe protéique nécessaire à la transcription

    Promoteurs eucaryotes

    Initiation

    Elongation

    Terminaison

    Maturation post-transcriptionnelle de l’ARNm chez les eucaryotes

    Le coiffage

    La poly-adénylation

    Epissage

    Traduction

    Le code génétique

    Les acteurs de la traduction

    2.1. Les ribosomes (synthèse, structure et fonction)

    2.2. Les ARNt (structure et rôle) et les aminoacyl-ARNt synthétases

    Structure des ARNt et ARNt iso-accepteur

    Chargement de l’acide aminé sur l’ARNt

    Les différentes étapes de la traduction procaryote

    3.1. Initiation

    3.2. Elongation

    a. Réaction de couplage

    b. Formation de la liaison peptidique et libération du premier ARNt

    c. Translocation

    3.3. Terminaison

    Les spécificités de la traduction eucaryote

    Modifications post-traductionnelles

    Définitions et exemples

    La phosphorylation

    L’acétylation et la méthylation des histones

    Acétylation de p53

    Introduction aux applications de l’intelligence artificielle (IA) en biologie moléculaire

    Définition de l’IA et concepts clés (algorithmes, machine learning, deep learning)

    Introduction aux bases de données biologiques (NCBI, Ensembl, UniProt)

    Introduction aux outils : BLAST, Clustal Omega, AlphaFold

    Introduction à l’utilisation de l’IA pour l’analyse des séquences ADN/ARN : alignement multiple, prédiction des structures secondaires

    Introduction aux outils informatiques et d’IA utilisés pour l’annotation automatique des génomes (ex. : DeepGene, GeneMark)

    IA pour la prédiction des promoteurs et d’épissage alternatif

    Modélisation des structures protéiques, prédiction des sites actifs, simulation de la traduction.

    Travaux dirigés :

    Fiche TD 01 : Structure des acides nucléiques

    Fiche TD 02 : Organisation des génomes et des gènes

    Fiche TD 03 : Réplication de l’ADN

    Fiche TD 04 : Variations et maintenance du matériel génétique

    Fiche TD 05 : Transcription de l’ADN

    Fiche TD 06 : Traduction de l’ARN messager

    Fiche TD 07 : Applications de l’IA en biologie moléculaire :

    Introduction aux bases de données biologiques, aux outils bioinformatiques et à l’IA (BLAST, Ensembl, AlphaFold)

    Classer des séquences par similarité

    Utiliser un outil simple d’alignement avec IA

    Démonstration de base d’un algorithme d’apprentissage supervisé (ex : arbre de décision pour classer des mutations comme bénignes ou pathogènes)

    Prédiction de structure d’ARN et de protéine avec outils IA accessibles en ligne

    Évaluation

    Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.

    Références

    Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
  5. Atelier de Biochimie
    5 créditsCoefficient 3Volume semestriel: 60h00
    Cours / semaine: -TD / semaine: -TP / semaine: 04h00Autres heures: 65h00

    Évaluation: contrôle continu 100 % · examen

    Explorer la matière
    S1
    Atelier de Biochimie

    Repères

    Connaissances préalables recommandées : Notions de base de chimie et de biochimie structurale

    Objectifs

    Objectifs de l’enseignement : Cet atelier permettra aux étudiants d’acquérir les principes des différentes techniques analytiques usuels en biochimie. Les notions de biosécurité sont abordées tout au long de l’atelier.

    Programme

    Contenu de la matière :
    Contenu de la matière

    Atelier 1 : Préparation des solutions :

    - Rappel sur l’expression des concentrations (notions de molarité, molalité, normalité, dilution…)

    - Les tampons (préparation, pKa, choix du tampon …ect)

    - Manipulations de base : verrerie, volumes et pipetage

    Atelier 2 : Méthodes de précipitation des protéines

    -Effet du pH (pI)

    - Précipitation par sels (salting-out)

    - Précipitation par solvants (éthanol)

    Atelier 3 : Dosage des protéines parméthodes spectrophotométriques

    - Méthode de Lowry

    - Méthode de Bradford

    Atelier 4 : Chromatographie d’exclusion de taille

    - Démonstration par séparation de molécules colorées (Bleu de dextran / Fluorescéine)

    - Application à la purification de protéines

    - Analyse des fractions collectées par spectrophotométrie

    Atelier 5 : Chromatographie échangeuse d’ions

    - Application à la purification de protéines du lactosérum

    - Analyse des fractions collectées par spectrophotométrie

    - Chromatographie d’affinité (IMAC : Enseignement théorique)

    Atelier 6 : Electrophorèses des protéines en condition dénaturante : SDS-PAGE

    -Tricine-SDS-PAGE (Electrophorèses des peptides : Enseignement théorique)

    Évaluation

    Mode d’évaluation : 100 % Contrôle continu.

    Références

    Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
  6. Atelier de Chimie Pharmaceutique
    4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00
    Cours / semaine: -TD / semaine: -TP / semaine: 03h00Autres heures: 55h00

    Évaluation: contrôle continu 100 % · examen

    Explorer la matière
    S1
    Atelier de Chimie Pharmaceutique

    Repères

    Connaissances préalables recommandées : Connaissances fondamentales en chimie organique et en chimie analytique.

    Objectifs

    Objectifs de l’enseignement : Cet atelier a pour objectifs d’initier les étudiants aux techniques fondamentales utilisées en chimie pharmaceutique (extraction liquide-liquide, distillation, recristallisation…) et de les familiariser avec les propriétés et les principales caractéristiques structurales des molécules organiques et ce par la mise en pratique des notions de bases acquises dans lors des enseignements théoriques de chimie en formation de base.

    Les notions de biosécurité sont abordées tout au long de l’atelier.

    Programme

    Contenu de la matière :

    Atelier 1 : Initiation aux travaux pratiques de la chimie pharmaceutique (mesure de sécurité, hygiène,…)

    Atelier 2 : Titrage du chlore actif-préparation de solutés aqueux, soluté d’hypochlorite de sodium, Préparation d’une solution antiseptique

    Atelier 3 : Obtention et identification de l’acide salicylique

    Atelier 4 : Synthèse et Identification de l’aspirine

    Atelier 5 : Extraction des huiles essentielles

    Atelier 6 : Initiation à la galénique : fabrication de médicaments en officine (Gélule, Sirop, Suppositoire et Pommade)

    Atelier 7 : Obtention et identification de l’acide hyaluronique

    Évaluation

    Mode d’évaluation : 100 % Contrôle continu.

    Références

    Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
  7. Expérimentation Animale
    2 créditsCoefficient 1Volume semestriel: 45h00
    Cours / semaine: 01h30TD / semaine: -TP / semaine: 01h30Autres heures: 05h00

    Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %

    Explorer la matière
    S1
    Expérimentation Animale

    Repères

    Connaissances préalables recommandées : Zoologie, Biologie animale, chimie.

    Objectifs

    Objectifs de l’enseignement : Donnez aux étudiants les bases pour raisonner l’expérimentation animale ou des méthodes alternatives que ce soit d’un point de vue scientifique, réglementaire et éthique.

    Les notions de bioéthique et de biosécurité sont abordées tout au long du semestre.

    Programme

    Contenu de la matière :

    Cours

    Chapitre 1 : Historique de l’expérimentation animale

    Historique de l’utilisation des animaux dans la recherche.

    Utilisation des animaux dans les différents domaines de la recherche.

    Chapitre 2 : Aspects règlementaires et éthiques

    Ethique de la recherche sur l’animal

    Chapitre 3 : Hygiène et contrôle sanitaire d’une animalerie

    Équipements et matériel d’animalerie : description, utilisation, entretien

    Prévention des risques liés aux manipulations du laboratoire

    Chapitre 4 : Les rongeurs (Rats et Souris)

    Anatomie

    Particularité des rongeurs

    Comportement social des rongeurs / adaptabilité

    Environnement : impact sur le bien être

    Reproduction

    Dominantes pathologies

    Chapitre 5 : Les lagomorphes

    Anatomie

    Comportement

    Elevage et reproduction

    Dominantes pathologies

    Chapitre 6 : Autres modèles animaux utilisés dans la recherche scientifique
    Chapitre 7 : Techniques expérimentales

    Contrôle des paramètres biologiques et de la validation des expériences

    Techniques, méthodologie et procédés à suivre au cours des différentes phases

    de l’expérimentation animale :

    Techniques utilisées pour l’administration de substances : injections (S.C., IM, IV, IP).

    Administration par voie orale (gavage).

    Choix de la technique, volumes et fréquence d’administration.

    Dissection

    Techniques utilisées pour la collecte de données physiologiques : collecte de sang, urine, matières fécales, organes et tissus : choix de la technique, volume et fréquence.

    La douleur chez l’animal au cours de l’expérimentation.

    Euthanasie.

    Chapitre 8 : Notion du modèle animal

    Choix du modèle animal en recherche scientifique

    Pertinence des modèles animaux et transgénèse

    Limites d’utilisation d’un modèle animal

    Méthodes alternatives : modèles cellulaires

    Travaux pratiques

    Séance 1 : Rats et souris ; Contention, gavage, injections,

    Séance 2 : Méthodes de prélèvement

    Séance 3 : Dissection, localisation et prélèvement des organes lymphoïdes

    Séance 4 : Chirurgie animale

    Séance 5 : Etapes de l’étude histologique (préparation des coupes histologiques et coloration).

    Évaluation

    Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.

    Références

    Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
  8. Techniques d’Analyse Biochimiques
    1 créditsCoefficient 1Volume semestriel: 22h30
    Cours / semaine: 01h30TD / semaine: -TP / semaine: -Autres heures: 02h30

    Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %

    Explorer la matière
    S1
    Techniques d’Analyse Biochimiques

    Repères

    Connaissances préalables recommandées : Notions de base de chimie, de biophysique et de biochimie.

    Objectifs

    Objectifs de l’enseignement : Ce module permettra aux étudiants d’acquérir théoriquement les principes des différentes techniques de fractionnement et les différentes méthodes de séparation chromatographiques et électrophorétiques ainsi que les différentes techniques spectroscopiques.

    Programme

    Contenu de la matière :
    Chapitre 1 : Techniques de séparation et de fractionnement

    Techniques de séparation et de concentration par les membranes.

    Techniques de fractionnement

    Techniques de précipitation

    Chapitre 2 : Techniques chromatographiques

    Définitions et principes généraux de la chromatographie.

    Classification des techniques chromatographiques

    Description générale d’une séparation chromatographique et mécanismes mis en jeu

    Autres types de chromatographie et le choix d’un système chromatographique.

    Chapitre 3 : Techniques électrophorétiques

    Electrophorèse (de zone)

    Isoélectrofocalisation

    Electrophorèse bidimensionnelle

    Electrophorèse capillaire

    Immuno-électrophorèse

    Techniques de transfert sur les membranes : hybridation moléculaire (Southern blot, Northen blot, Western blot ….).

    Chapitre 4 : Spectroscopie

    Introduction aux techniques spectroscopiques.

    Spectrophotométrie d’absorption moléculaire (UV-Visble)

    Spectrométrie d’émission atomique

    Spectrométrie d’absorption atomique

    Fluorimétrie

    Résonance magnétique nucléaire (RMN).

    Évaluation

    Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.

    Références

    Références : Livres et articles scientifiques, polycopiés, sites internet, etc

    Giddings, J. C., Gudzinowicz, B. J., Snyder, L. R., Kaiser, R., & DEKKER, M. (1965). Chromatographic Science. Dynamics of Chromatography Part I Principles and Theory.

    Glick, D. (1957). Methods of biochemical analysis, Volume V. Methods of biochemical analysis, Volume V.

    Scott, R. P. (1995). Techniques and practice of chromatography (Vol. 70). CRC Press.

    Heftmann, E. (Ed.). (2004). Chromatography: Fundamentals and applications of chromatography and related differential migration methods-Part B: Applications. Elsevier.

    Maarouf A. (2002). Analyse instrumentale à l’usage des biologist.2ème édition Dar El Gharb.

    Smith, I. (Ed.). (2013). Zone Electrophoresis: Chromatographic and Electrophoretic Techniques. Elsevier.

  9. Anglais pour les biologistes - Débutant
    1 créditsCoefficient 1Volume semestriel: 22h30
    Cours / semaine: 01h30TD / semaine: -TP / semaine: -Autres heures: 02h30

    Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %

    Explorer la matière
    S1
    Anglais pour les biologistes - Débutant

    Repères

    Connaissances préalables recommandées : Prior knowledge of basic English

    Objectifs

    Objectifs de l’enseignement : The objective of this course is to provide students with a solid foundation for communicating (both written and spoken) in English.

    Programme

    Contenu de la matière :

    Unit 1: Tell us about yourself

    Grammar: Tenses (present, past, future). Question forms (where, what, who, why, how much).

    Vocabulary: words with more than one meaning.

    Reading: Cell communication.

    Speaking: students of ESSBO and ESG2E talking about each other.

    Listening: Listening to a scientist speaking about his/her carrier.

    Writing: Informal letter.

    Unit 2: The way we live

    Grammar: Present tenses: present simple, present continuous.

    Vocabulary: At the laboratory.

    Reading: Living in Oran.

    Speaking: Share with us your experience about living on campus.

    Listening: Student life at MIT.

    Writing: Transition (linking words).

    Unit 3: Biologist from the past

    Grammar: Past tenses: past simple, past continuous.

    Vocabulary: Time expressions.

    Reading: The extraordinary history of Kitab al-Hayawan.

    Speaking: Telling stories.

    Listening: Rosalind Franklin and the discovery of DNA.

    Writing: write a short story about your favourite scientist.

    Unit 4: Let’s go shopping

    Grammar: Much/Many, Some/Any.

    Vocabulary: Grocery shop.

    Reading: Medina Jdida market.

    Speaking: Talking about shopping habits.

    Listening: Organic Food Market.

    Writing: Short essay writing about enzymes market.

    Unit 5: What do you want to do?

    Grammar: Verb patterns, Expressing intentions

    Vocabulary: Have, go, come..

    Reading: what a DNA polymerase can do

    Speaking: what are your plans?

    Listening: What does a biological engineer do?

    Writing: a nascent enzyme talking about its future plans

    Évaluation

    Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.

    Références

    Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.

    Immunologie Fondamentale Approfondie 2

    Structure et Synthèse des Macromolécules

    Immunogénétique

    Biologie Moléculaire 2

    Atelier de Biologie Moléculaire

    Atelier de Bio-informatique et Immuno-informatique

    UE découverte

    Ingénierie des Biomolécules

    Endocrinologie et Communication Cellulaire

    UE transversale

    Anglais pour les biologistes – Elémentaire

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Semestre 29 matières
  1. Immunologie Fondamentale Approfondie 2
    5 créditsCoefficient 3Volume semestriel: 45h00
    Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 80h00

    Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %

    Explorer la matière
    S2
    Immunologie Fondamentale Approfondie 2

    Repères

    Connaissances préalables recommandées : Immunologie et les notions de base en biologie moléculaire.

    Objectifs

    Objectifs d’enseignement : Cette unité d’enseignement (UE) a pour but d’approfondir la description des mécanismes cellulaires et moléculaires impliqués dans les réponses immunes adaptatives et l’immunité muqueuse.

    Programme

    Contenu de la matière :

    Cours

    Partie I : Immunité adaptative

    Chapitre 1 : La réponse immunitaire adaptative

    La dynamique de l'immunité adaptative

    Les réponses immunitaires cellulaires

    Les réponses immunitaires humorales

    Chapitre 2 : Les cellules dendritiques

    L'origine et les sous-types des cellules dendritiques

    Le recrutement des cellules dendritiques

    La reconnaissance et capture de l'antigène

    Maturation fonctionnelle et migration des cellules dendritiques

    L'activation des lymphocytes par les cellules dendritiques

    Ciblage thérapeutique

    Signalisation CD40 et activation des cDC1

    Chapitre 3 : Les macrophages

    Ontogénie et diversité des macrophages :

    Activation, polarisation et plasticité fonctionnelle des macrophages

    Rôles effecteurs et immunorégulateurs des macrophages

    Macrophages en pathologie et en thérapeutique

    Chapitre 4 : Les lymphocytes T

    Origine, différentiation et répertoire lymphocytaire T

    L'immunité adaptative : activation et polarisation des lymphocytes T

    L'immunité adaptative : lymphocytes T régulateurs et notion de tolérance.

    Lymphocytes T régulateurs et pathologies

    L'immunité adaptative : réponse T CD8+ cytotoxique

    Chapitre 5 : Les lymphocytes B

    Diversité et ontogenèse

    Les lymphocytes B : différentiation et activation

    Déficits immunitaires liés à l'activation des B et la production d'anticorps

    La mémoire immunitaire

    Chapitre 6 : Les immunoglobulines

    La structure générale d'une molécule d'immunoglobuline

    Les interactions antigène-anticorps

    Les fonctions effectrices des anticorps

    Chapitre 7 : Le complexe majeur d'histocompatibilité humain (HLA).

    Le complexe génique HLA

    Les deux classes de gènes HLA classiques et non classique

    La formation des complexes CMH-peptides

    La reconnaissance des molécules CMH à la surface de la cellule par les lymphocytes T

    Les autres molécules HLA et molécules apparentées

    HLA et maladies auto-immunes

    Chapitre 8 : L'immunité muqueuse.

    L'organisation du tissu muqueux MALT (Mucosae Associated Lymphoid Tissue)

    Les cellules immunes innées intestinales

    L'immunité adaptative intestinale

    Travaux dirigés

    Série d’exercices pour chaque chapitre.

    Analyse d’articles scientifiques ou exposés

    Évaluation

    Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.

    Références

    Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.

    Immunologie.. David Male, Jonathan Brostoff. David B. Roth. Ivan Roitt. 7e édition. Elsevier Masson. 2007.

  2. Structure et Synthèse des Macromolécules
    4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00
    Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 55h00

    Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %

    Explorer la matière
    S2
    Structure et Synthèse des Macromolécules

    Repères

    Connaissances préalables recommandées : Biochimie

    Objectifs

    Objectifs d'enseignement : Acquérir des connaissances approfondies sur la détermination chimique des structures des biopolymères et leurs synthèses chimiques.

    Programme

    Contenu de la matière :

    Cours

    Partie I : Peptides, protéines structures et principales propriétés

    Chapitre 1 : Les peptides

    Classification et nomenclature

    Propriétés physiques et chimiques

    Étude de quelques peptides ayant une importance biologique

    Chapitre 2:Protéines

    Conformation tridimensionnelle : Structure secondaire, tertiaire et quaternaire

    Dénaturation des protéines

    Déterminisme de la conformation tridimensionnelle

    Chapitre 3:Principales propriétés des protéines

    Solubilité et masse moléculaire

    Caractère amphotère et pression osmotique

    Isolement, fractionnement et purification des protéines

    Chapitre 4: Classification des protéines

    Classification en fonction de la forme des molécules

    Classification en fonction de la solubilité

    Classification en fonction de la composition

    Chapitre 5: Dynamique et évolution structurale des protéines

    Repliements des protéines

    Conception de la structure des protéines

    Dynamique des protéines et ingénierie

    Partie II : polysaccharides et glycoprotéines

    Chapitre 1 : Les polysaccharides

    Polyholosides

    Hétérosides

    Chapitre 2 : Les glycoprotéines

    Les constituants monosaccharidiques

    Les protéoglycannes

    Les peptidoglycannes

    Les glycoprotéines

    Chapitre 3 : Biosynthèse des glycoprotéines

    Importance des glycoprotéines

    Rôle des groupements glycanniques

    Glycotechnologies

    Partie III : Lipides et membranes

    Chapitre 1 : Les lipides

    Classifications des lipides membranaires

    Propriétés des agrégats lipidiques

    Chapitre 2 : Les membranes biologiques

    Membrane biologique et dynamique structurale

    Assemblage des membranes

    Chapitre 3 : Les hormones lipophiles

    Généralités sur les hormones

    Structures, biosynthèses et rôles des hormones lipophiles

    Superfamille des récepteurs nucléaires

    Mécanismes d’action

    Partie IV : Nucléotides et acides nucléiques

    Chapitre 1 : Nucléotides

    Pentoses

    Bases azotés

    Nucléosides ; mono di et triphosphates

    Chapitre 2 : Acides nucléiques

    Structure primaire

    Détermination des séquences nucléotidiques

    L'ADN en double hélice

    Structure secondaire des ARN

    Propriétés physico-chimiques des acides nucléiques

    Chapitre 3 : Synthèse des acides nucléiques

    Synthèse des ribonucléotides puriques

    Synthèse des ribonucléotides pyrimidiques

    Formation des désoxyribonucléotides

    Dégradation des nucléotides

    Biosynthèse des coenzymes nucléotidiques

    Évaluation

    Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.

    Références

    Références : Livres et polycopiés, sites internet,
  3. Immunogénétique
    4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00
    Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 55h00

    Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %

    Explorer la matière
    S2
    Immunogénétique

    Repères

    Connaissances préalables recommandées : La finalité de ce module est d’apporter, à travers les cours, des connaissances sur la génétique de l’immunologie normale et pathologique, et à travers les travaux dirigés, des connaissances sur les outils technologiques associés.

    Objectifs

    Objectifs d’enseignement : L’objectif du cours est de s’approfondir dans la compréhension des mécanismes moléculaires de la réponse immunitaire, et des gènes en amont de ces mécanismes. Il vient en prolongement des cours d’immunologie fondamentale normale et pathologique, et s’appuie sur des connaissances complémentaires en signalisation cellulaire, en génétique et biologie moléculaires, et en expérimentation animale.

    Programme

    Contenu de la matière :

    Cours

    Chapitre 1 : Introduction à l’immunogénétique : concepts et applications multiples
    Chapitre 2 : Immunogénétique normale

    Génétique de l’immunité innée (ex. PRR, KIR)

    HLA et gènes

    Génétique de la présentation antigénique

    TCR et gènes

    BCR et gènes

    Crosstalk entre immunité et ADN (ex. réparation d’ADN, Nétose, mtDNA)

    Chapitre 3 : Immunogénétique pathologique

    Immunogénétique de la transplantation

    Immunogénétique des déficits immunitaires

    Immunogénétique des maladies infectieuses

    Immunogénétique de la réponse anti-tumorale

    Immunogénétique des maladies auto-immunes

    Immunogénétique des maladies neurologiques et psychiatriques

    Chapitre 4 : Aboutissements de l’immunogénétique : l’immunothérapie,Veni , vidi , vici

    Travaux dirigés

    Inflammasomes et leur régulation

    Complément et complosome

    ISGs à l’état normal et pathologique

    Abécédaire du typage HLA

    Régulation épigénétique de la différentiation des LT CD4+

    Immunothérapie et variabilité de réponse : la part de la génétique

    Évaluation

    Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.

    Références

    Références : Livres et polycopiés, sites internet,
  4. Biologie Moléculaire 2
    4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00
    Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 55h00

    Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %

    Explorer la matière
    S2
    Biologie Moléculaire 2

    Repères

    Connaissances préalables recommandées

    Génétique, Expression des gènes, signalisation et communication cellulaire, biodiversité.

    Objectifs

    Objectifs de l’enseignement

    Cette unité d’enseignement porte trois parties. L’objectif de la première partie est d’expliquer les mécanismes de synthèse et de l’action des ARN interférents et mettre le point sur leurs intérêts et applications. Le but de la deuxième partie est d’expliquer les différents mécanismes de régulation de l’expression des gènes. La troisième partie vise à décrire les différents outils de la biologie moléculaire utilisés pour étudier la diversité génétique des espèces.

    Les étudiants seront également initiés à l’apport de l’intelligence artificielle (IA) dans l’analyse des différents mécanismes détaillés dans les premières parties du programme(mécanismes de synthèse et de l’action des ARN interférents, mécanismes de régulation de l’expression des gènes et l’étude la diversité génétique des espèces) favorisant ainsi une lecture approfondie et innovante des mécanismes moléculaires et une initiation à l’exploitation de données massives (Big Data) en biologie.

    Programme

    Contenu de la matière

    Partie 1/ Interférence ARN

    I/ Historique et mécanismes fondamentaux de l’interférence ARN

    1. Historique de l’interférence ARN

    2. Mécanismes fondamentaux de l’interférence ARN

    2.1. siARN

    2.1.1. Biosynthèse

    2.1.2. Mécanisme d’action

    2.2. miARN

    2.2.1. Biosynthèse

    2.2.2. Mécanisme d’action

    2.3. piARN

    2.3.1. Biosynthèse

    2.3.2. Mécanisme d’action

    II/ Conséquences pratiques pour la conception d’un siARN

    1. Influence des propriétés intrinsèques du siARN

    2. Limites imposées par le transcrit cible

    III / intérêts de l’interférence ARN

    1. Un outil pour la compréhension de la fonction des gènes

    2. Un outil pour de nombreuses applications en thérapeutique

    IV/ Contraintes associées à la transfection de courtes séquences d’acidesnucléiques

    1. La stabilité des ARN interférents

    2. La biodistribution

    Partie 2/ Régulation de l’expression des gènes

    Régulation de la transcription

    Régulation de la transcription chez les procaryotes

    Qu’est-ce qu’un opéron ?

    Opéron catabolique inductible négativement et positivement régulé (exemple : l’opéron lactose chez E. coli)

    Opéron anabolique répressible (exemple : l’opéron Tryptophane chez E. coli)

    Régulation par transformation d’un répresseur en activateur (exemple : l’opéron Arabinose (araBAD) chez E. coli)

    Autres exemples d’opéron

    Régulation de la formation du complexe ouvert

    Régulation du passage à la phase d’élongation

    Régulation de la transcription chez les eucaryotes

    Régulation au niveau chromatinien

    Acétylation, méthylation des histones

    Méthylation de l’ADN

    Eléments de régulation transcriptionnelle

    Les classes de régulateurs transcriptionnels

    Fonctionnement des protéines activatrices de transcription

    Répresseurs transcriptionnels

    Séquences régulatrices enhancers et les silencers

    Extinction de gènes et régulation épigénétique

    Régulation post-transcriptionnelle chez les eucaryotes

    L’épissage alternatif

    Régulation par des petits ARN

    Régulation de la stabilité des ARNm chez les eubactéries

    Les acteurs de la dégradation

    Les exoribonucléases

    Les endoribonucléases

    L’ARN pyrophosphohydrolase (RppH)

    Les mécanismes de dégradation des ARNm

    La voie directe d’accès

    La voie dépendante de l’extrémité5’

    La voie exoribonucléolytique en 3’

    Les mécanismes régulant la stabilité des ARNm

    Régulation de l’activité et de la concentration des RNases

    Les effets de la traduction

    L’interférence par les ARNs

    L’influence de la séquence des ARNm

    Régulation de la stabilité des ARNm chez les eucaryotes

    Les acteurs de la dégradation

    Les exoribonucléases agissant en 3’ de l’ARNm

    Les exoribonucléases agissant en 5’ de l’ARNm

    Les endoribonucléases

    Les mécanismes de la dégradation

    Voie majoritaire

    Voies alternatives

    Les mécanismes régulant la stabilité des ARNm

    Le complexe Lsm1-7

    La régulation de la déadénylation

    La régulation du complexe d’élimination de la coiffe

    Les ARN interférents :miARN, siARN et piARN

    Régulation de la traduction

    Introduction

    Régulation de l’initiation de la traduction chez les eubactéries

    Régulation de l’accès au RBS

    Régulation via les structures secondaires de l’ARNm

    Régulation de l’initiation de la traduction chez les eucaryotes

    Régulation via les facteurs d’initiation de la traduction

    Hosphorylation du facteur d’initiation eIF2

    Phosphorylation des protéines 4E-BP et disponibilité du facteur d’initiatione IF4E

    Inhibition de l’initiation par les miARN

    Régulation via les régions 5’-et 3’-UTR chez les eucaryotes

    Régulation via les régions 5’-UTR

    Interaction régions 3’- et 5’-UTR

    Régulation via 3’-UTR

    Les voies alternatives d’initiation

    uORF

    Initiation par une séquence IRES

    Régulation au cours de l’élongation ou de la terminaison chez les eubactéries

    Régulation au cours de l’élongation ou de la terminaison chez les eucaryotes

    Régulation post-traductionnelle : la dégradation des protéines intracellulaires

    Introduction

    Les protéines chaperonnes (chaperonines)

    Les enzymes protéolytiques

    Ubiquitination des protéines

    Protéasome

    Dégradation lysosomale

    Autophagie

    Partie 3/ Apport de la biologie moléculaire à l’étude de la diversité génétique

    Quelques notions

    Biodiversité

    Diversité génétique

    Mesure de la diversité génétique

    Marqueurs morphologiques

    Marqueurs protéiques (biochimiques)

    Marqueurs ADN (moléculaires)

    RFLP

    AFLP

    Minisatellites

    Microsatellites

    SNP

    Marqueurs d’ADNmt

    Exemples d’applications

    Partie 4/ Intelligence Artificielle et Biotechnologie Moléculaire

    Introduction aux modèles d’intelligence artificielle et à la conception de siARN et d’amorces. Étude des outils siDirect et RNAxs ; critères de conception des siARN et accessibilité du site cible.

    Introduction aux modèles d’intelligence artificielle appliqués à la régulation génique. Étude de DeepSEA pour la prédiction des caractéristiques de la chromatine et des effets des variants non codants ; distinction avec la prédiction directe de l’expression génique.

    Diagnostic moléculaire assisté par IA.

    Applications de l’IA dans la phylogénie, le clustering génétique, et la détection des variants (SNP).

    Perspectives éthiques et limites de l’IA en biologie moléculaire.

    Travaux dirigés :

    Fiche TD 1 : Régulation de l’expression des gènes chez les procaryotes (1) : cas de l’opéron tryptophane et l’opéron lactose

    Fiche TD 2 : Régulation de l’expression des gènes chez les procaryotes (2) : cas de l’opéron arabinose et l’opéron histidine

    Fiche TD 3 : Régulation l’expression des gènes chez les eucaryotes (1) : Etude de la structure, de l’expression et de la fonction du gène bdnf

    Fiche TD 4 : Régulation l’expression des gènes chez les eucaryotes (2) : Etude de la régulation de l’expression et de la fonction du gène c-myc

    Fiche TD 5 : Analyse de séquences biologiques par IA (Prédiction de l’efficacité de séquences siARN par IA,extraction de motifs, reconnaissance de promoteurs)

    Fiche TD 6 : Utilisation de notebooks (Google Colab) pour des exemples simples de machine learning en biologie (classifications de séquences, clustering de variants)

    Évaluation

    Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.

    Références

    Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
  5. Atelier de Biologie Moléculaire
    5 créditsCoefficient 3Volume semestriel: 60h00
    Cours / semaine: -TD / semaine: -TP / semaine: 04h00Autres heures: 65h00

    Évaluation: contrôle continu 100 % · examen

    Explorer la matière
    S2
    Atelier de Biologie Moléculaire

    Repères

    Connaissances préalables recommandées : Notions de base en biologie moléculaire, génétique, biochimie.

    Objectifs

    Objectifs de l’enseignement : Cet atelier vise à aborder la démarche expérimentale de l’extraction et de l’amplification d’un fragment d’ADN génomique des procaryotes par réaction de polymérisation en chaine (PCR).

    Les notions de bioéthique et de biosécurité si nécessaires sont abordées tout au long de l’atelier.

    Programme

    Contenu de la matière :

    Atelier 1 : Préparation des solutions

    Atelier 2 : Extraction de l’ADN génomique

    Atelier 3 : Tests de qualité des ADN extraits

    Atelier 4 : Amplification du gène ARNr 16S et du gène d’intérêt de la souche bactérienne

    Atelier 5 : Identification de la souche bactérienne à l’échelle de l’espèce et construction de l’arbre phylogénétique

    Atelier 6 : PCR-RFLP

    Évaluation

    Mode d’évaluation : 100 % Contrôle continu.

    Références

    Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
  6. Atelier Bio-informatique et immun-informatique
    4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00
    Cours / semaine: -TD / semaine: -TP / semaine: 03h00Autres heures: 55h00

    Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %

    Explorer la matière
    S2
    Atelier Bio-informatique et immun-informatique

    Repères

    Connaissances préalables recommandées : Connaissances fondamentales en biologie moléculaire et en immunologie. Maitrise de l’outil informatique.

    Objectifs

    Objectifs de l’enseignement : Cet atelier se propose de fournir des bases solides sur l’usage des outils et des bases de données de la bioinformatique et de l’immunoinformatique en vue de leurs applications dans différentes analyses immunologiques citons à titre d’exemple : la prédiction et l’analyse de l’immunogénicité des anticorps thérapeutiques.

    Programme

    Contenu de la matière :

    Atelier 1 : Bases de données de la biologie moléculaire

    Atelier 2 : Outils d’analyse de séquences

    Alignements par pair et alignement multiples des séquences biologique

    Détection des motifs dans séquences biologiques par des outils de bioinformatiques

    Reconstruction des arbres phylogénétiques

    Atelier 3 : Introduction à l’immunoinformatique et à l’IMGT® (international ImMunoGeneTics information system)

    Atelier 4 : Connaissance des Bases de Données relatives aux séquences et structures des anticorps

    Atelier 5 : Bases de données d'épitopes de lymphocyte B et de lymphocyte T

    Atelier 6 : Bases de données de prédiction des allergies

    Atelier 7: Base des données des anticorps monoclonaux thérapeutiques et différents projets lies à celle-ci

    Évaluation

    Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.

    Références

    Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
  7. Ingénierie des Biomolécules
    2 créditsCoefficient 1Volume semestriel: 45h00
    Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 05h00

    Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %

    Explorer la matière
    S2
    Ingénierie des Biomolécules

    Repères

    Connaissances préalables recommandées : Notions en microbiologie et, particulièrement, en biochimie microbienne et génétique bactérienne.

    Objectifs

    Objectifs de l’enseignement : L’enseignement de cette matière permettra à l’étudiant en premier lieu d’acquérir des connaissances sur la production et la biosynthèse des molécules bioactives. En outre, l’étudiant connaîtra que la biosynthèse de ces molécules bioactives est essentiellement génétique comparativement aux eucaryotes où elles dérivent principalement du métabolisme secondaire. En deuxième lieu de maitriser les modes d’actions des différentes substances bioactives et l’intérêt de leur utilisation.

    Programme

    Contenu de la matière :
    Chapitre 1 : Cellule Procaryote : Structure et Métabolisme

    Introduction.

    Voies Métaboliques.

    Voies carrefours du métabolisme central et secondaire.

    Phase de production des métabolites secondaires.

    Chapitre 2 : Les microorganismes d’intérêt :

    Les bactéries.

    Les levures.

    Les moisissures.

    Chapitre 3 : Les enzymes

    Introduction.

    Origine des enzymes.

    Synthèse.

    Applications.

    Chapitre 4 : Les bactériocines et les substances antimicrobiennes

    Historique.

    Classification et nomenclature.

    Mécanismes de biosynthèse et sa régulation.

    Méthodes de détection, de quantification et de purification.

    Mécanismes d'action.

    Applications

    Chapitre 5 : Les toxines bactériennes et les mycotoxines

    Généralités.

    Production et voie de biosynthèse.

    Applications.

    Chapitre 6 : Les exopolysaccharides

    Généralités.

    Production.

    Application.

    Chapitre 7 : Les vitamines

    Généralités.

    Production et voie de biosynthèse.

    Application.

    Chapitre 8 : Autres molécules bioactives

    Molécules bioactives d’origine végétale.

    Molécules bioactives d’origine animale.

    Application.

    Chapitre 9 : Caractérisation préliminaire des substances bioactives

    Effet de pH

    Effet de température

    Effet des enzymes

    Effet des solvants organiques

    Effet du stockage

    Évaluation

    Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.

    Références

    Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
  8. Endocrinologie et Communication Cellulaire
    1 créditsCoefficient 1Volume semestriel: 22h30
    Cours / semaine: 01h30TD / semaine: -TP / semaine: -Autres heures: 02h30

    Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %

    Explorer la matière
    S2
    Endocrinologie et Communication Cellulaire

    Repères

    Connaissances préalables recommandées : Notions de base en biologie cellulaire, en physiologie des grandes fonctions et en immunologie fondamentale.

    Objectifs

    Objectif de l’enseignement ; Les étudiants devraient être capables d'acquérir des connaissances de base sur la structure et les propriétés des hormones et comprendre l’organisation des différentes composantes du système endocrinien. L’objectif de cette matière est aussi d'apprendre les divers événements moléculaires impliqués dans la communication intercellulaire. Les mécanismes de défense immunitaires impliqués en relation avec le système endocrinien seront également détaillés.

    Programme

    Contenu de la matière
    Chapitre 1 : Introduction à l'endocrinologie

    Les 3 grands systèmes intégrateurs et l’homéostasie générale de l’organisme

    Les systèmes de communications cellulaires

    Les 4 grandes classes des hormones : Nature chimique et synthèse

    Mécanisme d'action des hormones

    Chapitre 2 : L’axe hypothalamohypophysaire

    - Le système limbique et les transducteurs neuro-endocriniens

    L’hypophyse et ses rapports avec l’hypothalamus

    Les hormones hypothalamiques

    Les hormones antéhypophysaires

    L’hypophyse postérieure et ses relations avec l’hypothalamus

    Chapitre 3 : Les hormones thyroïdiennes et leurs effets métaboliques

    Anatomie fonctionnelle

    Biosynthèse et sécrétion hormonale

    Régulation de la sécrétion hormonale

    Rôle physiologique des hormones thyroïdiennes

    Physiopathologie

    Chapitre 4 : Pancréas endocrine

    Anatomie et histologie

    L’insuline : Physiologie

    Régulation du métabolisme par l’insuline

    Le Glucagon : sécrétion, mécanisme d’action et régulation du métabolisme

    Le diabète sucré

    Chapitre 5 : Les glandes surrénales

    Cortex surrénalien : structure et fonction

    Hormones cortico-surrénaliennes : physiologie et rôle dans la régulation du métabolisme

    Médullosurrénale : physiologie des hormones médullosurrénaliennes et rôle dans la régulation du métabolisme

    Chapitre 6 : Hormones calciotropes et homéostasie phosphocalcique

    Mouvements du calcium et des phosphates

    Hormone parathyroïdienne

    Calcitonine

    Vitamine D3, cholécalciférol

    Chapitre 7 : L'épiphyse

    Localisation

    Structure

    Rôles

    Mélatonine (structure chimique et biosynthèse)

    Autres sécrétions

    Chapitre 8 : Endocrinologie du tissu adipeux

    Notion de tissu adipeux blanc et de tissu adipeux brun

    Les hormones du tissu adipeux blanc : mécanisme d’action et rôle dans la régulation du métabolisme

    Chapitre 9 : Immuno-endocrinologie

    Les récepteurs hormonaux et leur interaction avec les cellules immunitaires : Modulation de la réponse immunitaire.

    Évaluation

    Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.

    Références

    Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
  9. Anglais pour les biologistes – Elémentaire
    1 créditsCoefficient 1Volume semestriel: 22h30
    Cours / semaine: 01h30TD / semaine: -TP / semaine: -Autres heures: 02h30

    Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %

    Explorer la matière
    S2
    Anglais pour les biologistes – Elémentaire

    Repères

    Connaissances préalables recommandées :Prior knowledge of basic English.

    Objectifs

    Objectifs de l’enseignement : The objective of this course is to provide students with a solid foundation for communicating (both written and spoken) in English.

    Programme

    Contenu de la matière :

    Unit 1: Tell me what’s it like

    Grammar: What it's like to? Comparative and superlative adjectives in biology.

    Vocabulary: Talking about modern life.

    Reading: “A story of two bacteria belonging to the same genus” - beneficial/pathogenic bacteria.

    Speaking: Comparing cellulases from different sources.

    Listening: Brenda Lee, Tell me what it's like.

    Writing: Describing a wetland.

    Unit 2: Asking scientific questions

    Grammar: Present perfect and past simple in scientific writing.

    Vocabulary: Adverbs in experimental protocols (slowly, carefully…).

    Reading: scientist interview.

    Speaking: questionnaire for research.

    Listening: an interview with an eminent biologist.

    Writing: writing a research protocol.

    Unit 3: Do and don’t in the science Lab

    Grammar: Have to, got to, should, must.

    Vocabulary: Science laboratory safety symbols and hazard signs.

    Reading: What can biologist do to help protect our environment?

    Speaking: Do I need to be good at math to excel in biology? One question, many answers.

    Listening: Fire safety in the Lab.

    Writing: Should biologists have good math skills? (Argument essay).

    Unit 4: Inventions that changed the world

    Grammar: Passive voice.

    Vocabulary: past participle verbs used in scientific writing (grown, produced, cultivated, shown, made…).

    Reading: Agriculture, an invention that changed the world.

    Speaking: Passive voice battleship.

    Listening: The molecular biology.

    Writing: Writing a documentary film review.

    Évaluation

    Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.

    Références

    Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc

    Immunotechnologie 1

    Culture Cellulaire

    Immuno-physiopathologie

    Génomique et Protéomique

    Atelier d’Immunotechnologie 1 _ Approche générale

    Atelier Technologie des Molécules Bioactives _ Synthèse

    UE découverte

    Pharmacologie Moléculaire

    UE transversale

    Bio-programmation 1

    Anglais pour les biologistes – Pré-Intermédiaire

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Semestre 39 matières
  1. Immunotechnologie 1
    4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00
    Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 55h00

    Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %

    Explorer la matière
    S3
    Immunotechnologie 1

    Repères

    Connaissances préalables recommandées : Notions en immunologie fondamentale approfondie et en biochimie.

    Objectifs

    Objectifs de l'enseignement : Cette unité d'enseignement est de donner aux étudiants l’essentiel des techniques utilisées en immunologie. Ce qui permettra à l’apprenant de maîtriser l’outils d’immunoanalyse nécessaire à l’élaboration d’un choix dans un but diagnostique ou même dans tout protocole de recherche scientifique abordant une pathologie immunologique ou autre.

    Programme

    Contenu de la matière :
    Chapitre 1 : Rappels sur la réaction antigène-anticorps et ses applications
    Chapitre 2 : Les techniques sans traceurs

    Précipitation en milieu liquide (immuno-précipitation)

    Précipitation en milieu gélifié (immunodiffusion)

    Immuno-chromatographie

    Mesure d’affinité par résonance plasmolique de surface

    Réaction d’agglutination

    Mise à profit des capacités cytotoxique du complément

    Chapitre 3 : Les techniques avec traceurs

    Type de traceurs

    Technique d’immunodosage

    Dosage immunoenzymatique (ELISA)

    Dosage immunofluorescent (FLISA)

    Dosage radioimmunologique

    Immuno-dosage multiplex sur billes

    Immuno-empreinte/Western-blot

    Immuno-fixation

    Puce à protéines/Protein Arrays

    Cytométrie en flux

    Immunocytologie et immunohistologie

    Puce tissulaire (tissue micro-array)

    ELISpot

    Chapitre 4 : Techniques de biologie moléculaire utilisées en immunologie

    Techniques d’amplification

    Diagnostic de clonalité et analyse du répertoire

    Puces à ADN (DNA microarrays)

    Tests cellulaires

    Etude cytologique des cellules immunitaires

    Immunophénotypage

    Prolifération cellulaire

    Chapitre 5 : Exemples d’application

    Exploration du complément

    Exploration des immunoglobulines

    Détection/dosage des cytokines et leurs récepteurs

    Exploration de HLA

    Hypermutations somatiques et translocations chromosomiques

    Immuno-hématologique

    Évaluation

    Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.

    Références

    Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc
  2. Culture Cellulaire
    4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00
    Cours / semaine: 01h30TD / semaine: -TP / semaine: 01h30Autres heures: 55h00

    Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %

    Explorer la matière
    S3
    Culture Cellulaire

    Repères

    Connaissances préalables recommandées : Avoir des connaissances de la structure et de la physiologie des cellules eucaryotes. Module généralités sur la physiologie cellulaire.

    Objectifs

    Objectifs de l'enseignement : S’initier aux techniques de culture cellulaire et de l’environnement nécessaire à sa réalisation. Connaître les bases techniques de la culture de cellules in vitro, que ce soit à des fins de recherche fondamentale ou appliquée ou pour des objectifs de production biotechnologique.

    Programme

    Contenu de la matière :

    Cours

    Partie I : Biologie et environnement des cellules en culture

    Chapitre 1 : Introduction

    Origine de la culture de cellules

    Les modalités d’obtention des cellules

    Chapitre 2 : Adhésion cellulaire

    Méthodes d'étude de l'adhésion cellulaire

    Régulation de l’adhésion cellulaire

    Contrôle du détachement des cellules adhérentes

    Comment l’adhésion à un substrat peut-elle modifier le comportement cellulaire ?

    Chapitre 3 : Variabilité non génétique dans les cultures cellulaires

    Cellule unique et population cellulaire

    Fluctuations d’origine interne

    Fluctuations d’origine externe

    Chapitre 4 : Dynamique du micro environnement cellulaire

    De la matrice extracellulaire au microenvironnement

    Le microenvironnement évolue avec le dialogue cellules/matrice

    Une dynamique particulière : le microenvironnement tumoral

    Chapitre 5 : Défis de la culture de cellules animales en bioréacteur

    Principaux réacteurs en mode agité

    Influence de l’environnement cellulaire

    Culture des cellules sur microporteurs

    Analyses et régulations en ligne sur le bioréacteur

    Chapitre 6 : Bonnes pratiques de culture cellulaire

    Matières premières

    Matériels

    Milieu : le laboratoire de culture cellulaire

    Chapitre 7 : Cryopréservation des cellules

    Aspects physicochimiques de la formation des cristaux

    Effets biophysiques de la formation de glace

    Effets biologiques de la formation de glace

    Conditions de congélation

    Partie II : Méthodologie en culture cellulaire

    Les systèmes cellulaires : La culture primaire - Les lignées cellulaires - Les cellules souches

    La prolifération cellulaire : Courbe de croissance en culture

    La transformation cellulaire : l’immortalisation et la transformation tumorale

    Le milieu de culture et les conditions de culture : Les systèmes de culture cellulaire.

    Etude de Protocoles : Conservation des lignées cellulaires - Introduction : les 5 grandes catégories de lignées cellulaires - Obtenir une lignée cellulaire - Les banques de référence-Acheter une lignée Fabriquer

    Cryo-conservation des lignées cellulaires : l’azote et sécurité – Congélation Décongélation

    Les contaminations en culture de lignées cellulaires :

    Les principales contaminations

    La détection des contaminations

    Prévention des contaminations

    Utilisation et entretien du matériel : Procédures et bonnes pratiques

    Chapitre 1 : Viabilité, cytotoxicité, génotoxicité

    Méthodes d’étude de la viabilité cellulaire

    Quantification des cellules mortes par la perte d’intégrité de la membrane plasmique

    Détection couplée des cellules mortes et des cellules vivantes

    Cytotoxicité : étude spécifique des différentes voies de mort cellulaire

    Méthodes d’étude de la prolifération cellulaire

    Chapitre 2 : Apport de la cytométrie en flux à la culture cellulaire

    Principe de la cytométrie en flux

    Différents types de marquages

    Interprétation des résultats

    Applications

    Partie III : Systèmes intégrés et cultures spécialisées

    Chapitre 1 : Les systèmes cellulaires

    Culture primaire

    Lignées cellulaires et hybridomes

    Cellules souches

    Banques de cellules

    Chapitre 2 : Les systèmes de culture

    Culture d’organes et d’explants

    Culture de cellules

    Culture organotypique

    Chapitre 3 : La culture de cellules

    La culture des cellules en suspension

    La culture des cellules adhérentes

    La culture en monocouche et en trois dimensions

    Chapitre 4 : Cultures spécialisées

    Les conditions de culture

    Les milieux de culture

    La culture à l’échelle industrielle.

    Travaux pratiques

    Initiation à la culture cellulaire (bonne pratique d’hygiène et de manipulation)

    Séparation des PBMCs sous gradient de densité et comptage

    Culture des cellules adhérentes (monocytes) et détachement des plaques par trypsine et accutase

    Culture des HUVEC humains

    Les notions de bioéthique et de biosécurité sont abordées tout au long des travaux pratiques.

    Évaluation

    Mode d'évaluation : 100 % Contrôle continu.

    Références

    Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc

    Culture de cellules animales (3° éd.) De BARLOVATZ-MEIMON Georgia, RONOT Xavier. Lavoisier Tec & Doc, ISBN : 978-2-7430-1989-1.

    Culture de cellules animales, Georgia Barlovatz-Meimon Monique Adolphe Christiane Guillouzo Xavier Ronot Méthodologies, applications Paru le 1 janvier 1988 Etude (broché). Inserm, ISBN 2855983339.

    Technologie de culture cellulaire animale. Principes et applications Principes et applications, Rajasekhar PINNAMANENI. Editions Universitaires Europeennes04/2020. ISBN : 9786139534265

  3. Immuno-physiopathologie
    4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00
    Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 55h00

    Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %

    Explorer la matière
    S3
    Immuno-physiopathologie

    Repères

    Connaissances préalables recommandées : Notions d’immunologie de base abordant le fonctionnement normal du système immunitaire.

    Objectifs

    Objectifs de l'enseignement : Apporter des connaissances générales sur les mécanismes physiopathologiques des maladies du système immunitaire (hypersensibilités, déficits immunitaires, syndromes immuno prolifératifs et auto immunité). L'implication des éléments de l’immunologie dans la réponse antitumorale ainsi que l’immunité des transplantations seront également abordés.

    Programme

    Contenu de la matière :

    Cours

    Rappel sur la physiologie du système immunitaire

    Chapitre 1 : Physiopathologie de l’hypersensibilité

    Généralités sur les allergènes

    Hypersensibilité de type I

    Hypersensibilité de type II

    Hypersensibilité de type III

    Hypersensibilité de type IV

    Hypersensibilité V

    Hypersensibilité VI

    Hypersensibilité VII

    Chapitre 2 : Mécanismes physiopathologiques de l’auto-immunité

    Introduction

    Le concept de la tolérance immunologique

    La base génétique de l’auto-immunité

    Les facteurs déclenchants environnementaux

    Les mécanismes hypothétiques de déclenchements de l’auto-immunité

    Les mécanismes lésionnels des effecteurs auto-immuns

    Chapitre 3 : Mécanismes physiopathologiques des anomalies de prolifération lymphocytaire

    Les maladies lymphoprolifératives : notion de clonalité

    Les mécanismes physiopathologiques des maladies lymphoprolifératives

    Quelques données sur trois prototypes de maladies lymphoprolifératives

    Chapitre 4 : Mécanismes de l’immunosurveillance anti-tumorale

    Introduction

    Immunoedition du cancer

    Chapitre 5 : Mécanismes généraux des déficits immunitaires primitifs

    Origine des déficits immunitaires primitifs

    Mécanismes physiopathologiques des déficits immunitaires primitifs

    Déficits du complément

    Déficits du système de phagocytose

    Déficits immunitaires combinés sévères

    Déficits des lymphocytes B

    Déficits des lymphoctes T

    Chapitre 6 : Mécanismes de l’alloréactivité et des rejets de greffe

    Définition

    L’allo-antigène

    La réponse allogénique

    Mécanisme d’action et cibles moléculaires des principaux immunosuppresseurs

    Chapitre 7 : L’immunologie de la grossesse

    Introduction

    Les interfaces materno-fœtales

    La réponse immunitaire maternelle et les étapes de la grossesse

    Les mécanismes de protection développés au niveau du placenta

    Chapitre 8 : La sénescence cellulaire

    Définition

    Arrêt du cycle cellulaire

    Sénescence moteur du vieillissement

    Mécanismes à l’origine de la sénescence cellulaire

    Caractéristiques des cellules sénescentes

    Travaux dirigés

    Analyse d’articles récents

    Évaluation

    Mode d'évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.

    Références

    Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc

    Immunologie fondamentale et immunopathologie, 2 edition Collège des Enseignants d'Immunologie, Editeur Elsevier Masson, ISBN : 9782294756580.

    Les bases de l'immunologie fondamentale et clinique Abul K. Abbas (Auteur) Andrew H. Lichtman (Auteur) Shiv Pillai (Auteur) 5ème édition . Elsevier Masson. ISBN 2294752422.

  4. Génomique et Protéomique
    4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00
    Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 55h00

    Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %

    Explorer la matière
    S3
    Génomique et Protéomique

    Repères

    Connaissances préalables recommandées

    Des connaissances en biologie moléculaire et en génétique.

    Objectifs

    Objectifs de l’enseignement

    Les progrès des technologies et de l'informatique utilisées pour générer et traiter de grands ensembles de données biologiques (donnéesomiques) favorisent un changement critique dans l'étude des sciences biologiques et biotechnologiques.Les objectifs de cette matière sont de fournir des connaissances introductives concernant la génomique, la transcriptomique, la protéomique et les approches de l’IA appliquées à l’interprétation des profils omiques, en mettant l’accent sur la détection de signatures moléculaires, la prédiction fonctionnelle des gènes, et l’exploration des réseaux biologiques complexes. Cela favorise une approche intégrative et innovante des grandes bases de données issues des sciences omiques.

    Programme

    Contenu de la matière

    1. Bases de la génomique et de la protéomique

    1.1. Aperçu de l'organisation du génome procaryote et eucaryote ;

    1.2. ADN extra-chromosomique : plasmides bactériens, mitochondries et chloroplastes.

    2. Cartographie du génome

    2.1. Cartes génétiques et physiques

    2.2. Marqueurs pour la cartographie génétique

    2.3. Méthodes et techniques utilisées pour la cartographie génétique

    2.4. La cartographie physique

    2.5. L'analyse de liaison

    2.6. Les techniques cytogénétiques

    2.7. Technique de cartographie génétique FISH

    2.8. Hybridation de cellules somatiques

    2.9. Cartes de radiation hybrides

    2.10. Hybridation in situ

    2.11. Cartographie génétique comparative

    3. Projets de séquençage de génomes

    3.1. Human Génome Project

    3.2. Projets de séquençages de génomes de microbes, plantes et animaux

    3.3. Accéder et récupérer des informations sur les projets de génomes à partir du WEB

    4. Génomique comparative

    4.1. Identification et classification des organismes à l'aide de marqueurs moléculaires (ARNr 16S typage/séquençage, SNP)

    4.2. Utilisation des génomes pour comprendre l'évolution des eucaryotes

    4.3. Suivie des maladies émergentes et conception de nouveaux médicaments

    4.4. Détermination de l'emplacement du gène dans la séquence du génome

    5. Transcriptomique

    5.1. Introduction

    5.2. Acquisition des données

    5.2.1. Next Generation Sequencing (NGS) ( RNAseq, sRNAseq)

    5.2.2. Microarrays

    5.2.3. qPCR, RT-PCR, qRT-PCR

    5.3. Description des données

    5.4. Transformation, normalisation et filtrage

    5.5. Analyse des données de transcriptome

    5.5.1. Gènes différentiellement exprimés

    5.5.2. Gènes co-exprimés

    5.6. Interprétation

    5.7. Caractérisation d’un ensemble de gènes

    6. Protéomique

    6.1. Objectifs

    6.2. Stratégies et défis en protéomique

    6.3. Technologies protéomiques : 2D-PAGE, focalisation isoélectrique, spectrométrie de masse, MALDI-TOF, système levure 2-hybride

    6.4. Bases de données protéomiques

    7. Génomique fonctionnelle et protéomique

    7.1. Analyse du transcriptome pour l'identification et l'annotation fonctionnelle du gène,

    7.2. Assemblage Contig

    7.3. Marche du chromosome (chromosomwalking) et caractérisation des chromosomes

    7.4. Identification de gènes fonctionnelles dans le génome

    7.5. Fonction des gènes

    7.6. Génétique directe et inverse

    7.7. Interactions protéine-protéine et protéine-ADN

    7.8. Puces à protéines et protéomique fonctionnelle

    7.9. Les applications biomédicales et cliniques de la protéomique

    7.10. Introduction à la métabolomique, à la lipidomique, métagénomique et biologie des systèmes

    8. Intelligence Artificielle appliquée aux données omiques

    8.1. Introduction à l’intelligence artificielle aux données omiques

    Concepts de base : machine learning, deeplearning, réseaux neuronaux

    Applications générales en sciences biologiques

    8.2. IA en génomique

    Prédiction de gènes et d’éléments fonctionnels dans le génome

    Annotation automatique et classification des séquences

    Analyse comparative de génomes à grande échelle

    8.3. IA en transcriptomique

    Identification des gènes différentiellement exprimés par modèles prédictifs

    Regroupement de profils d’expression par clustering non supervisé

    Détection de signatures transcriptomiques associées à des conditions biologiques (maladies, stress, etc.)

    8.4. IA en protéomique

    Analyse des spectres de masse avec réseaux neuronaux

    Prédiction de la structure et de la fonction des protéines

    Reconnaissance de motifs et d’interactions protéiques

    Travaux dirigés :

    TD 1 : Applications des approches omiques

    Type : Travail collaboratif – Carte conceptuelle

    Article :How ‘omics technologies can drive plant engineering, ecosystem surveillance, human and animal health

    Objectif : Introduire les approches omiques à travers un travail visuel de synthèse

    Outil/Activité : Création d’une carte conceptuelle + recherche documentaire

    TD 2 : Cartographie génomique

    Article :A physical map of the papaya genome with integrated genetic map and genome sequence – Qingyi Yu et al., 2009

    Objectif : Comprendre les bases de la cartographie génétique et physique

    Outil/Activité : Fiche TD guide existante intégrée (questions guidées + interprétation des résultats)

    TD 3 : Analyse transcriptomique et lncRNA

    Article : Genome-wide differential expression profiling of mRNAs and lncRNAs associated with prolificacy in Hu sheep – Xu Feng et al., 2018

    Objectif : Introduction à la transcriptomique fonctionnelle et aux lncRNA

    Outil/Activité : Fiche TD guide existante intégrée (questions guidées + interprétation des résultats)

    TD 4 : Analyse fonctionnelle avec ShinyGO& STRING

    Article : Functional annotation and network analysis of differentially expressed genes in a model organism or tissue

    Objectif :

    - Analyser un ensemble de gènes exprimés à l’aide de ShinyGO (enrichissement GO/KEGG)

    - Explorer les interactions protéiques avec STRING

    Outil/Activité : Fiche TD guide existante intégrée (questions guidées + interprétation des résultats)

    TD 5 : Pipeline multi-omique simplifié (étude de cas intégrée)

    Article : Données simulées ou article réel fourni : (ex : réponse à un stress chez une plante ou animal)

    Objectif :

    - Combiner RNA-Seq + ShinyGO + STRING + AlphaFold + InterPro

    - Élaborer une interprétation biologique cohérente

    Outil/Activité : Fiche TD guide existante intégrée (questions guidées + interprétation des résultats)

    TD 6 : IA et apprentissage automatique pour l’analyse omique

    Article : AI-assisted prediction of gene-disease associations

    Objectif :

    - Introduction à l’IA (clustering, réseau de gènes, Deep Learning)

    - Utilisation de plateformes comme Orange ou DeepGO

    Outil/Activité : Fiche TD guide existante intégrée (questions guidées + interprétation des résultats)

    Évaluation

    Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.

    Références

    Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
  5. Atelier d’Immunotechnologie 1_Approche générale
    6 créditsCoefficient 3Volume semestriel: 60h00
    Cours / semaine: -TD / semaine: -TP / semaine: 04h30Autres heures: 85h00

    Évaluation: contrôle continu 100 % · examen

    Explorer la matière
    S3
    Atelier d’Immunotechnologie 1 — Approche générale

    Repères

    Connaissances préalables recommandées : Connaissances théoriques acquises la matière immunotechnologie I

    Objectifs

    Objectifs de l’enseignement : Dans cet atelier l’étudiant apprendra les différentes techniques utilisées en analyses immunologiques telles que ELISA, Western-Blot et la microscopie à fluorescence. L’étudiant développera des compétences pratiques en détection d’antigènes, analyse protéique, phénotypage des cellules immunitaires et observation des réponses immunitaires.

    Programme

    Contenu de la matière

    Atelier 1 : Dosage immuno-enzymatique (ELISA)

    Atelier 2 : Western-Blot

    Atelier 3 : Phénotypage des monocytes et interprétation des résultats par ImageJ

    Atelier 4 : Observation des Macrophage extracellular traps (METs) et interprétation des résultats

    Évaluation

    Mode d’évaluation : 100 % Contrôle continu.

    Références

    Références (Livres et polycopiés, sites internet, etc)
  6. Atelier Technologie des Molécules Bioactives _ Synthèse
    4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00
    Cours / semaine: -TD / semaine: -TP / semaine: 03h00Autres heures: 55h00

    Évaluation: contrôle continu 100 % · examen

    Explorer la matière
    S3
    Atelier Technologie des Molécules Bioactives — Synthèse

    Repères

    Connaissances préalables recommandées : Connaissances théoriques acquises dans l’enseignement du semestre 2 de la matière Ingénierie des biomolécules. Maitrise des techniques d’extraction et de séparations utilisées en biochimie.

    Objectifs

    Objectifs de l’enseignement : Cet atelier dispense des connaissances intégrées et des compétences techniques sur l’extraction, l’analyse, l’identification et la production de molécules bioactives d’origines : végétale, animale ou microbienne ainsi que leurs utilisations dans différents secteurs tels que l’industrie, la recherche scientifique…. (Exemple d’application).

    Programme

    Contenu de la matière :

    Atelier 1 : Extraction et purification des métabolites secondaires à partir de plantes médicinales

    Atelier 2 : Extraction et purification de la chlorophylle

    Atelier 3 : Synthèse et caractérisation de nanoparticules à partir d’un support microbien.

    Atelier 4 : Extraction et purification d'une substance antimicrobienne à partir d'un organisme eucaryote.

    Atelier 5 : Extraction et purification des exo-polysaccharides à partir d’un microorganisme.

    Atelier 6 : Extraction et purification de molécules bioactives à partir de microalgues.

    Évaluation

    Mode d’évaluation : 100 % Contrôle continu.

    Références

    Références (Livres et polycopiés, sites internet, etc)
  7. Pharmacologie Moléculaire
    2 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00
    Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 10h00

    Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %

    Explorer la matière
    S3
    Pharmacologie Moléculaire

    Repères

    Connaissances préalables recommandées : Notions de base en biochimie métabolique et régulation, structure et synthèse des macromolécules, signalisation cellulaire et moléculaire, interactions hôte-pathogène.

    Objectifs

    Objectif de l’enseignement : Acquérir les bases indispensables, de la pharmacologie et les cibles potentielles des agents pharmacologiques, du métabolisme des substances pharmacologiques et actions thérapeutiques et les connaissances comme le substrat essentiel à la conception des médicaments, des notions de pharmacocinétique, les interactions ligands récepteurs et quelques exemples d’actions de médicaments.

    Programme

    Contenu de la matière :

    Cours

    Partie I : Données fondamentales en pharmacologie

    Chapitre 1 : Pharmacodynamie

    - Différentes cibles moléculaires

    - Différentes familles des récepteurs

    - Interaction avec les systèmes de régulation

    Chapitre 2 : Pharmacocinétique

    - Définitions

    - Etapes pharmacocinétiques

    - Paramètres pharmacocinétiques

    Partie II : Concepts de base en pharmacologie moléculaire

    Chapitre 1 : Neurotransmetteurs

    - Principes de base de la neurotransmission

    - Les systèmes de neurotransmission

    Chapitre 2 : Prostaglandines et dérivés apparentés

    - Structure

    - Biosynthèse et biotransformations

    Chapitre 3 : Thérapies biologiques et anti-cytokines

    - Cytokines

    - Agents biologiques pour le traitement des maladies auto-immunes

    - Efficacité, tolérance

    Partie III : Métabolisme des xénobiotiques

    Chapitre 1 : Induction enzymatique

    - Les enzymes et agents inductibles

    - Mécanismes de l’induction enzymatique

    Chapitre 2 : Inhibition enzymatique

    - Bases

    - Inhibition du transport

    Partie IV : Toxicologie

    Chapitre 1 : Toxicité cellulaire

    Cibles moléculaires

    Cibles cellulaires

    Chapitre 2 : Génotoxicité

    Immunotoxicité des Xénobiotiques

    Manifestations par organes ou systémiques

    Partie V : Pharmacogénétique, pharmacogénomique et thérapie personnalisée

    Chapitre 1 : Généralités sur la médecine personnalisée

    Recherche clinique et pharmacogénomique

    Tests génétiques et phénotypages

    Progrès de la pharmacogénomique

    Chapitre 2 : Nouvelles approches de la thérapie personnalisée et domaines d’applications

    Travaux dirigés : Pharmacologie expérimentale

    Méthodes d’études en pharmacologie

    Modèles expérimentaux

    Cibles potentielles des agents pharmacologiques

    Implications de certains concepts moléculaires

    Métabolisme des substances pharmacologiques et actions thérapeutiques

    Développement d’un médicament : Interactions ligands récepteurs

    Polymorphismes génétiques

    Place des Biomarqueurs dans différents domaines et en cancérologie

    Évaluation

    Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.

    Références

    Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
  8. Bio-programmation 1
    1 créditsCoefficient 1Volume semestriel: 22h30
    Cours / semaine: 01h30TD / semaine: -TP / semaine: -Autres heures: 02h30

    Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %

    Explorer la matière
    S3
    Bio-programmation 1

    Repères

    b) Connaissances préalables recommandées : Notions élémentaires d’algorithmique (facultatif), savoir utiliser un ordinateur et naviguer dans un système de fichiers, des connaissances en informatique, bio-informatique, biologie moléculaire et en génétique.

    Objectifs

    a) Objectif d’enseignement : Initier les étudiants en biologie aux bases de la programmation en Python niveau 1, dans le but de les rendre capables de structurer un code simple, manipuler des données et automatiser des tâches basiques en lien avec leur domaine scientifique.

    Programme

    c) Contenu de la matière
    Chapitre 1 : Introduction à la programmation

    - Qu’est-ce qu’un programme ? - Langages de programmation

    - Pourquoi choisir Python en biologie ?

    - Exemples d'applications en science

    Chapitre 2 : Installation et prise en main

    - Installation d’Anaconda

    - Premier script Python

    - Exécution de cellules, sauvegarde, commentaires

    Chapitre 3. Variables et types de données

    - Types primitifs : int, float, str, bool

    - Les tuples, les ensembles, les listes, les dictionnaires

    - Opérateurs mathématiques et logiques

    - Expression & les instructions de bases (lecture, écriture, affectation)

    Chapitre 4 : Structures de contrôle

    - Instructions conditionnelles : if, elif, else

    - Opérateurs de comparaison

    Chapitre 5 : Structures répétitives

    - Boucles for et while

    - Instructions break et continue

    - Parcours de listes

    Chapitre 6 : Fonctions

    a. Définir une fonction avec def

    b. Paramètres et valeurs de retour

    Chapitre 7 : Fichiers

    - Lire et écrire des fichiers .txt et .csv

    - Méthodes open(), read(), write()

    Évaluation

    d) Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.

    Références

    Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
  9. Anglais pour les biologistes – Pré-Intermédiaire
    1 créditsCoefficient 1Volume semestriel: 22h30
    Cours / semaine: 01h30TD / semaine: -TP / semaine: -Autres heures: 02h30

    Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %

    Explorer la matière
    S3
    Anglais pour les biologistes – Pré-Intermédiaire

    Repères

    Connaissances préalables recommandées : Prior knowledge of basic English

    Objectifs

    Objectifs de l’enseignement; The objective of this course is to provide students with a solid foundation for communicating (both written and spoken) in English.

    Programme

    Contenu de la matière

    Unit 1: The Wonder World

    Grammar: auxiliary verbs (do, be, have), naming the tenses, questions and negatives, short answers.

    Vocabulary: social expressions.

    Reading: wonders of biology.

    Speaking: Biology Quiz (using auxiliary verbs, questions and negatives and short answers).

    Listening: Ten craziest things cells do.

    Writing: Find the mistake and correct it.

    Unit 2: Bioethics and biosecurity

    Grammar: Present tense.

    Vocabulary: Numbers in science.

    Reading: Bioethics.

    Speaking: Debate on ethics in bioengineering.

    Listening: Biosecurity.

    Writing: writing a paragraph to describe scientific facts using present tense and numbers.

    Unit 3: Telling science stories

    Grammar: Past tense.

    Vocabulary: graphical representations.

    Reading: Agro-industrial residues valorisation.

    Speaking: Debate on environmental impacts of biomass.

    Listening: Agro-industrial wastes valorisation.

    Writing: writing a paragraph to describe methods and results.

    Unit 4: Enzyme engineering

    Grammar: Modal verbs.

    Vocabulary: Enzyme engineering vocabulary

    Reading: Can crop residues provide fuel for future transport?

    Speaking: Promoting critical thinking with English modal verbs.

    Listening: Can enzymes be reused?

    Writing: writing a paragraph about the perspectives of enzymes applications using modal verbs.

    Unit 5: The future of enzyme technology.

    Grammar: future forms

    Vocabulary: genetic engineering vocabulary

    Reading: Future trends of biotechnology.

    Speaking: What role do you think industrial biotechnology will play in the future?

    Listening: The future of energy.

    Writing: Write an email to your internship supervisor to explain what will your plan on arrival.

    Évaluation

    Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.

    Références

    Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc

    Immunotechnologie 2

    Nano-immunotechnologies

    Génie Génétique

    Immunologie des Infections

    Atelier d’Immunotechnologie 2 _ Applications

    Atelier de Génie Génétique

    UE découverte

    Lean Startup

    UE transversale

    Bio-programmation 2

    Anglais pour les biologistes - Intermédiaire

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Semestre 49 matières
  1. Immunotechnologie 2
    4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00
    Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 55h00

    Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %

    Explorer la matière
    S4
    Immunotechnologie 2

    Repères

    Connaissances préalables recommandées : Notions en immunologie fondamentale approfondie, signalisation cellulaire et moléculaire, biologie moléculaire et en pharmacologie moléculaire.

    Objectifs

    Objectif de l’enseignement : Les thèmes abordés dans cette unité d'enseignement concernent les recherches et développements actuels de technologies innovantes en immunologie (exemple des anticorps et leurs dérivés, des outils d’analyse, de diagnostic et de thérapeutique, mécanismes de suivi de la réponse immunitaire...), ainsi que les processus de valorisation de ces innovations tels que la thérapie génique et cellulaire et l'immunothérapie.

    Programme

    Contenu de la matière :

    Cours

    Chapitre 1 : Le mécanisme d’action des vaccins, le rôle de l’adjuvant

    L’histoire de la vaccination

    La réponse immunitaire post-vaccinale classique : les anticorps neutralisants

    Les types de vaccins

    Les voies d’administration

    La notion d’adjuvants

    Les protections individuelle et collective

    Les challenges actuels de la vaccination

    Chapitre 2 : Le mécanisme d’action des phages

    Historique et découverte des bactériophages

    Les principes de la phagothérapie

    Chapitre 3 : Le mécanisme d’action des immunoglobulines polyvalentes

    Les mécanismes immuno-régulateurs des immunoglobulines polyvalentes

    Chapitre 4 : Les mécanismes d’action de l’immunothérapie spécifique de l’allergie ou de la désensibilisation allergénique

    Les principes et modalités de l’immunothérapie spécifique de l’allergène

    Les mécanismes de l’immunothérapie spécifiques de l’allergène

    Chapitre 5 : les rôles et mécanismes d’action des anticorps thérapeutiques et protéines de fusion à portion Fc

    L’immunogénicité des anticorps thérapeutiques

    Les anticorps thérapeutiques neutralisant des cibles solubles

    Les anticorps thérapeutiques antagonistes

    Les anticorps thérapeutiques cytolytiques

    Les biomédicaments anti-TNF

    Chapitre 6 : Les cibles et mécanismes d’action des traitements par cytokines

    Les interférons

    Les interleukines

    Chapitre 7 : Les cibles et mécanismes d’action des immunosuppresseurs

    L’implication des immunosuppresseurs dans la réponse immunitaire

    La classification des immunosuppresseurs

    Les stratégies thérapeutiques en transplantation d’organe

    Chapitre 8 : Les mécanismes d’action et cibles immunologiques des glucocorticoïdes

    Le mécanisme d’action principal

    Les modes d’action non génomiques

    Les cibles thérapeutiques

    Chapitre 9 : Les cibles et mécanismes d’action des approches d’immunothérapie cellulaire

    L’immunothérapie cellulaire adoptive associée à la greffe allogénique hématopoïétique

    L’immunothérapie cellulaire adoptive autologue

    L’immunothérapie cellulaire adoptive des pathologies auto-immunes

    L’immunothérapie cellulaire active : les cellules dendritiques comme vaccin cellulaire

    Chapitre 10 : Les aspects immunologiques de la thérapie génique

    La thérapie génique

    Les réponses immunitaires

    Travaux dirigés

    Thérapie génique et Cellulaire. Production de vaccins, Immunothérapie et Sérothérapie.

    Production des cytokines. Études systématiques d'expression et d'interactions.

    Évaluation

    Mode d'évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.

    Références

    Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc
  2. Nano-immunotechnologies
    4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00
    Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 55h00

    Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %

    Explorer la matière
    S4
    Nano-immunotechnologies

    Repères

    Connaissances préalables recommandées : Connaissances de base en immunologie, biologie moléculaire, ainsi qu’en biologie cellulaire.

    Objectifs

    Objectifs de l’enseignement : Ce cours vise à introduire les bases de la Nano-immunotechnologie, en expliquant comment les nanotechnologies peuvent interagir avec le système immunitaire pour améliorer les diagnostics, les vaccins et les traitements ciblés. L’objectif est aussi de sensibiliser aux applications biomédicales innovantes.
    Objectif : Initier à la conception d’un vecteur pour ARN ciblant un gène immunitaire.

    TP 2 : Production de nanoparticules d’argent par biosynthèse biologique

    Objectif : Produire des nanoparticules d’argent via un extrait bactérien ou végétal.

    Programme

    Contenu de la matière
    CHAPITRE 1 : Interaction nanomatériaux – système immunitaire

    - Propriétés des nanomatériaux à visée biomédicale

    Classification des nanomatériaux : organiques (liposomes, polymères), inorganiques (or, silice, carbone)

    Propriétés physicochimiques : taille, charge, forme, surface

    Influence sur l’absorption, distribution, métabolisme, excrétion (ADME)

    - Immunotoxicité et reconnaissance immunitaire des nano-objets

    Protéinocouronne : adsorption, reconnaissance par PRRs

    Activation du complément, relargage de cytokines

    Exemples : toxicité des nanoparticules d’argent, dioxyde de titane

    - Ingénierie de surface et immunomodulation

    Fonctionnalisation des nanomatériaux : PEGylation, anticorps, ligands ciblants

    Réduction de l’immunogénicité, ciblage spécifique (cellules dendritiques, macrophages)

    Nanoparticules furtives vs visibles

    CHAPITRE 2 : Nanotechnologies appliquées à l’immunothérapie

    - Systèmes d’administration ciblée de médicaments immunomodulateurs

    Encapsulation de molécules immunoactives : interleukines, anticorps, immunosuppresseurs

    Nanoparticules stimuli-sensibles (pH, enzymes, température)

    Exemples : curcumine nanoformulée, dexaméthasone liposomale

    - Nanovaccins et adjuvants nanoparticulaires

    Nanoparticules comme plateformes vaccinales (ARNm, ADN, protéines recombinantes)

    Exemples : LNP (lipid nanoparticles) dans les vaccins COVID-19 (Pfizer/BioNTech, Moderna)

    Adjuvants à base d’alumine, silice, polymères

    - Ciblage tumoral et modulation de la réponse immunitaire

    Nanoparticules pour délivrance d’inhibiteurs de checkpoints immunitaires (PD-1/PD-L1)

    Immunothérapie CAR-T et nanosupports

    Théranostique : combinaison thérapie + imagerie

    CHAPITRE 3 : ARN, épigénétique et nanoimmunologie

    - ARN non codants dans la régulation immunitaire

    MicroARN : rôle dans la polarisation des macrophages, l’activation lymphocytaire, tolérance

    Longs ARN non codants (lncRNA) : régulation transcriptionnelle, interactions avec chromatine

    Exemples : miR-155 (activateur pro-inflammatoire), lncRNA NEAT1 (régulation des inflammasomes)

    - Épigénétique et plasticité du système immunitaire

    Mécanismes épigénétiques : méthylation de l’ADN, modifications des histones, remodelage chromatinien

    Cellules myéloïdes : reprogrammation épigénétique par pathogènes/nanomolécules

    Mémoire innée (trained immunity) via modifications durables du génome

    - Nanovecteurs pour la modulation épigénétique et l’administration d’ARN

    Nanoparticules pour délivrance ciblée de siRNA/miRNA/lncRNA

    Outils de réécriture épigénétique (ex : CRISPR/dCas9 fusionné à des enzymes épigénétiques)

    Thérapies émergentes : Cancer (délivrance ciblée de miRNA oncosuppresseurs), Maladies auto-immunes (inhibition de miRNA pro-inflammatoires via nanoparticules)

    CHAPITRE 4 : Réglementation, bioéthique et tendances émergentes

    - Sécurité, éthique et réglementation des nanomatériaux immunoactifs

    Normes ISO, tests in vitro/in vivo

    Évaluation

    Évaluation des risques : biodistribution, immunotoxicité à long terme

    Acceptabilité sociale, enjeux de transparence

    - Nanoimmunologie et médecine de demain

    Immuno-nanodiagnostic : biosenseurs, nanoparticules magnétiques

    Médecine personnalisée : bioinformatique, prédiction des réponses immunes

    Perspectives : vaccin contre le cancer, immunoédition, nanothérapies combinées

    Travaux pratiques :

    TP 1 : Modélisation d’un vecteur nanoparticulaire pour ARNm ou siRNA

    Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.

    Références

    Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
  3. Génie génétique
    4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00
    Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 55h00

    Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %

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    S4
    Génie génétique

    Repères

    Connaissances préalables recommandées : Des connaissances en génétique, en biologie moléculaire et en microbiologie sont indispensables.

    Objectifs

    Objectifs de l’enseignement : Les objectifs de ce cours sont d'enseigner aux étudiants différentes approches du génie génétique et de leurs applications dans la recherche biologique ainsi que dans les industries de la biotechnologie.

    Compte tenu de l'impact du génie génétique dans la société moderne, les étudiants devraient être dotés d'une solide connaissance théorique de cette technologie. En conjonction avec les travaux pratiques en biologie moléculaire et en génie enzymatique, les étudiants devraient être en mesure d'entreprendre des recherches biologiques ainsi que des stages dans l'industrie biotechnologique pertinente.

    Programme

    Contenu de la matière
    Chapitre 1 : Historique du génie génétique
    Chapitre 2 : Les outils enzymatiques du génie génétique

    Les enzymes de restriction

    Le phénomène de restriction

    Les sites de reconnaissance

    Isoschizomères

    Le système de Restriction-Modification (RM)

    Origine des enzymes de restriction

    Nomenclature des enzymes de restriction

    Types de coupures réalisées par les enzymes de restriction

    Les classes d’enzymes de restriction

    Méthylation des sites de restriction et inactivation des enzymes de restriction

    Utilisations des enzymes de restriction

    Les autres enzymes d’usage courant en génie génétique

    Les polymérases

    Les ligases

    Les phosphatases alcalines (PA)

    Les nucléases

    Autres enzymes spécifiques

    Chapitre 3 : L’hybridation moléculaire

    Rappels sur le principe de la réaction d’hybridation

    Notion de température de fusion de l’ADN

    Facteurs influençant la température de fusion

    Hybridation moléculaire

    L’hybridation en phase liquide

    L’hybridation sur support solide

    L’hybridation in situ (HIS)

    Les sondes

    Principes de l’hybridation des acides nucléiques

    Le concept de sonde

    Quelques stratégies de marquage

    Chapitre 4 : Les vecteurs

    Généralités sur les vecteurs

    Concept de vecteur etses propriétés

    Principes généraux d’utilisation d’un vecteur

    Les plasmides

    L’utilisation d’un plasmide

    Préparation des plasmides

    Les différents types de plasmides

    Origine de réplication

    Les phages

    Utilisation des phages

    Préparation d’un phage

    Les différents phages utilisés en biologie moléculaire

    Les autres types de vecteurs

    Les cosmides

    Les chromosomes artificiels

    Les vecteurs «navettes »

    Les vecteurs viraux eucaryotes

    Chapitre 5 : Le clonage et expression des protéines recombinantes

    Le principe du clonage

    Clonage basé sur la PCR (PCR Based Cloning)

    Les banques d’ADN

    Les banques d’ADN génomique

    Les banques d’ADNc

    Systèmes d’expression

    Choix du Système d’Expression

    Modifications post-traductionnelles

    Système d’expression procaryote

    Cassette génétique d’expression de protéines recombinantes

    Caractéristiques d’E. coli

    Récapitulatif de l’expression hétérologue d’une protéine chez E. coli

    Expression des protéines recombinantes

    Chapitre 6 : Les organismes génétiquement modifiés (OGM)

    La transgénèse végétale

    La transgénèse végétale et les méthodes d’amélioration classiques

    Les techniques de la transgenèse végétale

    Les techniques de transformation

    La transgénèse animale

    Définition

    Méthodes de transfert génique chez les animaux

    La construction d’un transgène

    Autres techniques utilisées pour la création d’OGM

    Les principales applications des OGM

    Traçabilité et étiquetage des OGM

    Chapitre 7 : Les nouvelles techniques de génie génétique et leurs applications

    Édition génomique

    Nucléases programmables

    L'interférence à ARN

    Nucléases à doigts de zinc

    TALEN

    CRISPR/Cas9

    Évaluation

    Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.

    Références

    Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
  4. Immunologie des Infections
    4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00
    Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 55h00

    Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %

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    S4
    Immunologie des Infections

    Repères

    Connaissances préalables recommandées : Microbiologie générale, microbiologie clinique, parasitologie, virologie, immunologie, interactions microbiennes avec l’hôte.

    Objectifs

    Objectifs de l’enseignement : Connaitre les facteurs de virulence et de pathogénicité, comprendre les mécanismes de la réponse immunitaire face aux différents agents infectieux et les modes et d’échappement aux défenses de l’organisme. Etudier aussi l’immunopathologie liée aux infections ainsi que les applications thérapeutiques pour contourner cela.

    Programme

    Contenu de la matière
    Chapitre 1 : Introduction à l’Immunologie des Infections

    Définition et importance du système immunitaire dans les maladies infectieuses

    Les différents agents pathogènes et classification des maladies infectieuses

    Chapitre 2 : la pathogénèse microbienne

    Les étapes du processus infectieux

    L’envahissement de l’hôte et le contournement de ses défenses par les bactéries pathogènes

    Les dommages causés à l’hôte par les bactéries pathogènes

    Les propriétés pathogènes des virus

    Les propriétés pathogènes des mycètes, des protozoaires, des helminthes et des algues.

    Chapitre 3 : Les facteurs de pathogénicité et de virulence

    Les facteurs d’adhésion et de colonisation (fimbriae, LPS, flagelle, système de sécrétion)

    Les facteurs de d’invasion

    Les facteurs de cytolyse

    Les toxines et les super antigènes

    Chapitre 4 : Supports génétiques de la virulence

    Plasmide de virulence

    Bactériophage

    Ilots de pathogénicité

    Chapitre 5 : Réponses immunitaires Selon le type d’infection

    2.1. Immunité Contre les Infections Bactériennes

    2.2. Immunité Contre les Infections Virales

    2.3. Immunité Contre les Infections Fongiques

    2.4. Immunité Contre les Infections Parasitaires

    Chapitre 6 : Mécanismes d’évasion des pathogènes et résistance immunitaire

    Modification antigénique

    Inhibition de la réponse immunitaire

    Latence et réactivation des infections chroniques

    Chapitre 7 : Immunopathologies liées aux infections

    Choc septique et tempête cytokinique

    Maladies auto-immunes post-infectieuses

    Hypersensibilité aux infections

    Chapitre 8 : Applications thérapeutiques

    Immunothérapie anti-infectieuse

    Immunomodulation

    Évaluation

    Mode d'évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.

    Références

    Références : Livres et polycopiés, articles récents, etc
  5. Atelier d’Immunotechnologie 2_Applications
    6 créditsCoefficient 3Volume semestriel: 60h00
    Cours / semaine: -TD / semaine: -TP / semaine: 04h30Autres heures: 85h00

    Évaluation: contrôle continu 100 % · examen

    Explorer la matière
    S4
    Atelier d’Immunotechnologie 2 — Applications

    Repères

    Connaissances préalables recommandées : Notions de base en Microbiologie, connaissances théoriques acquises de la matière Immunotechnologie I, maîtrise des techniques d’analyses biochimiques acquises dans le semestre 1 et les notions de culture cellulaire.

    Objectifs

    Objectifs de l’enseignement : Dans cet atelier l’étudiant devrait être en mesure d’employer les différentes techniques acquises au cours des ateliers précédents afin de réaliser de façon autonome un protocole expérimental qui consiste à mettre en place un procédé de production de molécules mitogènes telles que le lipopolysaccharide (LPS) ou encore des adjuvants.

    Programme

    Contenu de la matière :

    Atelier 1 : Production de lipopolysaccharide (LPS) à partir de différentes souches bactériennes

    Séance 1 : Préparation des cellules bactériennes et lyse cellulaire

    Séance 2 : Élimination des contaminants protéiques et nucléiques et Extraction au phénol-eau chaude

    Séance 3 : Précipitation du LPS

    Séance 4 : Récupération et purification finale après dialyse

    Séance 5 : Caractérisation des LPS par SDS-PAGE

    Séance 6 : Evaluation de l’effet mitogène du LPS sur les cellules immunitaires telles que les monocytes

    Séparation des cellules mononuclées du sang périphérique (PBMCs) par Ficoll

    Culture des monocytes

    Evaluation de la balance NO/Arginase

    Atelier 2 : Production d’adjuvant à partir du LPS

    Séance 7 : Libération et détoxification du lipide-A

    Séance 8 : Purification du MonophosphorylLipid A, Dialyse et lyophilisation

    Séance 9 : Formulation de l’adjuvant avec le protocole d'adsorption sur sels d'aluminium (Alum)

    Séance 10 : Evaluation de la fonctionnalité de l’adjuvant MPLA sur sang total

    Séparation des PBMCs par Ficoll

    Culture des monocytes et différenciation en macrophages

    Evaluation de la balance NO/Arginase

    Séance 11 : étude statistique et interprétation des résultats finaux

    Évaluation

    Mode d’évaluation : 100 % Contrôle continu.

    Références

    Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
  6. Atelier de Génie Génétique
    4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00
    Cours / semaine: -TD / semaine: -TP / semaine: 03h00Autres heures: 55h00

    Évaluation: contrôle continu 100 % · examen

    Explorer la matière
    S4
    Atelier de Génie Génétique

    Repères

    Connaissances préalables recommandées : Des connaissances préalables en microbiologie, en génétique, en génie génétique et en biologie moléculaire

    Objectifs

    Objectifs de l’enseignement : Cet atelier vise à fournir aux étudiants les connaissances nécessaires en matière de clonage et d’expression dans une bactérie hôte du gène d’une molécule d’intérêt technologique d’origine bactérienne.

    Programme

    Contenu de la matière :

    Techniques

    Dessin des amorces de clonage et simulation in-silico du clonage du gène de l’α-amylase à l’aide du logiciel SnapGene.

    Extraction de l’ADN génomique de la souche d’intérêt.

    PCR de clonage du gène d’intérêt à l’aide des amorces de clonage.

    Purification du produit de PCR à l’aide d’un kit PCR Clean-up.

    Digestion enzymatique de l’insert et du vecteur plasmidique (pET21/28 a+) avec le couple d’enzymes de restriction approprié.

    Purification des produits de digestion à partir du gel d’agarose.

    Ligation du gène avec le vecteur plasmidique.

    Transformation de la bactérie hôte bibliothèque E. coli DH5α.

    Extraction de la construction génétique et transformation de la souche hôte d’expression E. coli BL21 (DE3).

    Criblage des clones transformés en présence d’antibiotique.

    Tests d’expression de l’enzyme recombinante (SDS-PAGE)

    Purification de l’enzyme recombinante par le biais d’une colonne de chromatographie d'affinité, HisTrap.

    Séance 1 (05 heures) :

    Préparation des solutions et milieux de culture.

    Dessin des amorces de clonage.

    Séance 2 (06 heures) :

    Extraction de l’ADN génomique de la souche bactérienne Bacillus sp à l’aide d’un kit.

    PCR de clonage du gène d’intérêt.

    Simulation in-silico du clonage du gène de l’α-amylase à l’aide du logiciel SnapGene.

    Tests qualitatifs et quantitatifs : électrophorèse sur gel d’agarose.

    Séance 3 (06 heures) :

    Purification du produit de PCR et dosage de l’ADN.

    Digestion enzymatique de l’insert et du vecteur plasmidique (pET21/28 a+) avec le couple d’enzymes de restriction approprié.

    Simulation du séquençage (vérification in-silico du produit de PCR séquencé)

    Electrophores des produits de digestion suivie de leur purification à partir du gel d’agarose.

    Séance 4 (06 heures) :

    Préparation des cellules bactériennes compétentes (part 01).

    Ligation du gène avec le vecteur plasmidique.

    Séance 5 (06 heures) :

    Préparation des cellules bactériennes compétentes (part 02).

    Transformation de la bactérie hôte bibliothèque E. coli DH5α.

    Séance 6 (08 heures) :

    Criblage des clones transformés en présence d’antibiotique.

    Conférence sur les enzymes recombinantes

    Extraction de la construction génétique et transformation de la souche hôte d’expression E. coli BL21 (DE3).

    Séance 7 (06 heures) :

    Tests d’expression de l’enzyme recombinante (part 01) :

    Préparation des différentes cultures avec les différentes conditions.

    Séance 8 (06 heures) :

    Tests d’expression de l’enzyme recombinante (part 02) :

    SDS-PAGE.

    Séance 9 (06 heures) :

    Purification de l’enzyme recombinante His-taguée par le biais d’une colonne de chromatographie d'affinité, HisTrap.

    Évaluation

    Mode d’évaluation : 100 % Contrôle continu.

    Références

    Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
  7. Lean Startup
    2 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00
    Cours / semaine: 01h30TD / semaine: -TP / semaine: 01h30Autres heures: 10h00

    Évaluation: contrôle continu 60 % · examen 40 %

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    S4
    Lean Startup

    Repères

    b) Prérequis recommandés

    Les étudiants sont censés posséder des connaissances préalables dans les domaines suivants :

    Fondamentaux de l’entrepreneuriat.

    Bases de la gestion de projet.

    Concepts d’innovation et de développement technologique.

    Méthodologie générale de la recherche.

    Objectifs

    a) Objectifs du cours

    Ce module est consacré à l’étude des concepts, méthodes et outils liés à la méthodologie Lean Startup. Il met l’accent sur les mécanismes de construction de projets innovants dans des environnements caractérisés par un fort degré d’incertitude, en s’appuyant sur l’expérimentation, l’apprentissage rapide et la validation continue des hypothèses.

    À l’issue de ce module, les étudiants seront capables de :

    Comprendre les principes fondamentaux et la philosophie de la méthodologie Lean Startup.

    Transformer une idée innovante ou un résultat de recherche en un projet d’entreprise viable.

    Formuler et tester les hypothèses clés sous-jacentes à un projet.

    Concevoir et développer un Produit Minimum Viable (MVP).

    Analyser les données du marché et prendre des décisions commerciales éclairées.

    Aligner l’innovation et la recherche scientifique avec les besoins du marché et les attentes des clients.

    Le module adopte des approches pédagogiques modernes, notamment :

    Apprentissage par projet (PBL).

    Apprentissage expérientiel.

    Travail en équipe pluridisciplinaire.

    Simulation de l’écosystème des startups.

    Apprentissage fondé sur la résolution de problèmes.

    Programme

    c) Contenu du cours

    I- Cours magistraux

    Unité

    Titre

    Thèmes détaillés

    1

    L’université entrepreneuriale et l’Université 4.0

    – Évolution des universités de la version 1.0 à 4.0 – Caractéristiques de l’Université 4.0 – Transformation numérique et intelligence artificielle dans l’enseignement supérieur – Le rôle des universités dans l’économie de la connaissance – Valorisation de la recherche scientifique – Transformation des résultats de recherche en startups – Les universités comme moteurs d’innovation et de développement économique – Exemples internationaux d’universités entrepreneuriales : MIT, Stanford, Cambridge, Tsinghua, NUS, TUM et PSL/Polytechnique.

    2

    Écosystème de l’entrepreneuriat et de l’innovation en Algérie et à l’université

    – Définition de l’écosystème entrepreneurial – Acteurs clés de l’écosystème – Politique algérienne de soutien à l’innovation – Incubateurs et accélérateurs – Fonds d’investissement – Arrêté ministériel 1275 (Startups, micro-entreprises, brevets) – Incubateurs universitaires et centres d’appui technologique – Rôle de l’intelligence artificielle dans l’écosystème – Mise en relation des universités avec le tissu économique.

    3

    Introduction aux startups et à la méthodologie Lean Startup

    – Différence entre entreprises traditionnelles et startups – Concept d’innovation – L’incertitude dans les projets entrepreneuriaux – Origines de l’approche Lean Startup – Principes fondamentaux de la méthodologie – Apprentissage validé – Réduction du gaspillage – Cycle Construire–Mesurer–Apprendre – Comptabilité de l’innovation – Différence entre comptabilité traditionnelle et comptabilité de l’innovation – Mesurer le progrès en situation d’incertitude – Indicateurs d’apprentissage plutôt que de profit.

    4

    Compréhension du marché et découverte client

    – Étapes de la création d’une startup : idée, équipe, prototype, investissement – Méthodologie de Steve Blank – Customer Development : comprendre le marché et le comportement des clients – Identification du problème – Analyse des besoins clients – Entretiens entrepreneuriaux – Construction d’hypothèses – Adéquation problème–solution (Problem–Solution Fit).

    5

    Business Model Canvas

    – Concept du Business Model Canvas – Proposition de valeur – Segments de clientèle – Canaux – Flux de revenus – Structure financière / Structure de coûts.

    6

    Produit Minimum Viable — MVP

    – Concept de MVP – Types de MVP : numérique, expérimental, service, fausse porte (fake-door) – Test des hypothèses – Prototypage rapide – Outils de développement de prototypes – MVP digitaux et industriels – Comment mesurer l’échec le plus rapidement possible.

    7

    Intelligence artificielle et TRIZ pour l’innovation

    – L’intelligence artificielle dans l’entrepreneuriat – Génération d’idées – Analyse de marché – Développement de MVP – Marketing intelligent – Méthodologie TRIZ – Contradictions techniques – Résultat final idéal – Combinaison de l’IA et de TRIZ – Startups de Deep Tech.

    8

    Mesure, analyse et gestion de l’échec

    – KPI — Indicateurs clés de performance – Gestion d’une startup – Pilotage des équipes d’innovation – Concepts de mesure de la croissance dans les startups – Métriques AARRR : méthode de mesure du développement d’une startup en cinq étapes : - Acquisition : Comment atteindre et attirer les clients ? - Activation : L’utilisateur essaie-t-il le produit pour la première fois ? - Rétention : Les utilisateurs reviennent-ils l’utiliser ? - Revenu : Le projet génère-t-il des revenus/profits ? - Recommandation (Referral) : Les utilisateurs recommandent-ils le produit à d’autres ?

    9

    Pivoter ou persévérer

    – Concept de Pivot : changement stratégique partiel ou complet – Concept de Persévérance : poursuivre la direction actuelle – Quand changer de direction ? – Types de Pivot – Indicateurs de décision.

    10

    Financement, croissance et passage à l’échelle

    – Financement initial – Autofinancement / bootstrapping – Investisseurs – Business angels – Capital-risque – Financement participatif (crowdfunding) – Étapes de financement – Growth Hacking – Moteurs de croissance.

    II- Travaux pratiques

    Séance

    Titre

    Contenu

    1

    Étude de cas : Le MIT et l’université entrepreneuriale

    Analyser pourquoi le MIT a réussi à créer des milliers de startups ; identifier la relation entre recherche et innovation ; expliquer le rôle des incubateurs et accélérateurs ; comparer le MIT aux universités algériennes ; proposer un plan pour transformer une université algérienne en Université 4.0.

    1

    Atelier : Concevoir une Université 4.0 algérienne

    Travailler en équipe pour concevoir un centre d’innovation, un incubateur d’entreprises, un accélérateur d’entreprises, un centre d’appui technologique et d’innovation, une filiale et un fonds d’investissement universitaire ; présenter une feuille de route organisationnelle intégrée pour un modèle d’Université 4.0.

    2

    Étude de cas : Parcours d’une startup algérienne

    Sélectionner une startup algérienne ayant obtenu le label startup ; analyser les acteurs qui l’ont soutenue ; identifier ses sources de financement ; cartographier son écosystème ; proposer des mécanismes pour accélérer sa croissance.

    2

    Atelier : Cartographie de l’écosystème entrepreneurial

    Utiliser Miro ou Canvas pour cartographier les acteurs de l’écosystème entrepreneurial algérien : universités, centres de recherche, incubateurs, accélérateurs, investisseurs, banques, entreprises, agences publiques, startups et innovateurs ; montrer les relations entre acteurs et présenter des propositions d’amélioration.

    3

    Étude de cas : Échec d’une startup technologique

    Analyser une startup qui a dépensé des ressources avant de valider le besoin du marché ; identifier les erreurs et les sources de gaspillage ; proposer comment le Lean Startup aurait pu réduire le risque ; concevoir un cycle Construire–Mesurer–Apprendre alternatif.

    3

    Atelier : Dropbox et validation Lean

    Analyser comment Dropbox a validé la demande avant de développer le produit complet ; identifier les hypothèses testées ; comparer le coût de l’expérience au coût du développement complet ; expliquer la valeur d’une validation précoce.

    4

    Étude de cas : Une plateforme d’intelligence artificielle pour les étudiants

    Les étudiants analysent un projet de plateforme d’assistance académique basée sur l’IA. Ils formulent 10 hypothèses, préparent un guide d’entretien, conduisent 20 entretiens sur le terrain et extraient les problèmes réels rencontrés par les étudiants. Le livrable attendu est un énoncé de problème validé, étayé par des preuves d’entretien.

    4

    Atelier : Entretiens entrepreneuriaux

    Les étudiants simulent des entretiens entrepreneuriaux en jouant les rôles d’entrepreneur, de client potentiel et d’investisseur. Ils s’exercent à poser des questions, recueillir des retours et analyser les résultats. Le livrable est un court rapport montrant les hypothèses validées, rejetées et les principaux enseignements clients.

    5

    Atelier Business Model Canvas

    Construire un Business Model Canvas complet pour un projet choisi ; définir la proposition de valeur, les clients, les canaux, les flux de revenus, les partenaires et les coûts ; défendre le modèle devant la classe ou un comité d’évaluation.

    6

    Étude de cas : Une application de livraison intelligente

    Les étudiants analysent un projet d’application de livraison intelligente avec un budget d’équipe limité. Ils conçoivent le MVP au coût le plus bas, identifient les hypothèses critiques à tester, choisissent le type de MVP le plus approprié et définissent des indicateurs clairs de succès et d’échec. Le livrable est un plan de conception de MVP avec des hypothèses testables et des critères d’évaluation.

    6

    Atelier : Construire un véritable MVP

    Les étudiants construisent un premier MVP ou prototype à l’aide d’outils comme Figma, Glide, Bubble ou Canva. Le prototype peut être développé pendant la séance ou à la maison. Le livrable est un prototype fonctionnel ou visuel simple pouvant être utilisé pour des tests clients.

    7

    Étude de cas : Une startup d’agriculture intelligente

    Les étudiants analysent une startup d’agriculture intelligente visant à augmenter la production tout en réduisant la consommation d’eau. Ils identifient la contradiction technique, appliquent les principes TRIZ, utilisent des assistants d’IA générative pour générer des solutions et évaluent les solutions proposées. Le livrable est un ensemble de solutions d’innovation justifiées basées sur l’idéation assistée par IA et le raisonnement TRIZ.

    7

    Atelier : Sprint d’innovation IA

    Un sprint de 90 minutes. Les étudiants utilisent uniquement des outils d’IA pour générer une idée innovante, définir un MVP et construire un modèle d’affaires préliminaire. Le livrable est un court concept d’innovation incluant le problème, la solution proposée, le MVP et la structure du modèle d’affaires.

    8

    Étude de cas : Une plateforme d’e-learning

    Les étudiants analysent une plateforme d’e-learning à l’aide de données de base : 10 000 visites, 1 000 inscriptions, 400 utilisateurs actifs et 40 clients payants. Ils calculent les indicateurs AARRR, identifient le principal goulot d’étranglement, suggèrent des actions d’amélioration et décident si le projet progresse vers l’adéquation produit–marché (Product–Market Fit). Le livrable est un court rapport analytique basé sur les métriques startup.

    8

    Atelier : Tableau de bord startup

    Les étudiants construisent un tableau de bord startup incluant Acquisition, Activation, Rétention, Revenu, Recommandation et Taux de consommation (Burn Rate). Ils interprètent les résultats et expliquent comment le tableau de bord peut guider les décisions. Le livrable est un tableau de bord visuel simple accompagné de commentaires sur la performance, les faiblesses et les actions recommandées.

    9

    Étude de cas : Instagram — De Burbn à Instagram

    Les étudiants analysent la transition de Burbn à Instagram comme un exemple de Pivot. Ils identifient la raison du Pivot, les données qui ont soutenu la décision, les résultats obtenus et les choix stratégiques alternatifs possibles. Le livrable est une courte analyse de cas expliquant pourquoi le Pivot était justifié.

    9

    Atelier : Simulation de conseil d’administration

    Les étudiants analysent un dossier de startup incluant indicateurs de performance, retours clients et données financières. Ils simulent une réunion du conseil d’administration et prennent une décision collective : Pivoter, Persévérer ou Arrêter le projet. Le livrable est une décision stratégique justifiée, étayée par des statistiques, des preuves et des chiffres.

    10

    Projet semestriel de Startup Lab

    Les étudiants développent un projet de startup tout au long du semestre. Le projet comprend : sélection d’un problème réel, conduite de la Découverte Client, préparation d’un Business Model Canvas, conception d’un MVP, utilisation d’outils d’IA et de TRIZ, mesure et analyse des résultats, prise de décision Pivoter/Persévérer, préparation d’un plan de financement et de croissance, et présentation d’un pitch final. Le livrable est un dossier complet de projet startup et une présentation pitch finale.

    Évaluation

    d) Mode d’évaluation

    Composante

    Description

    Pondération

    Contrôle continu

    60%

    Projet de groupe

    Travail continu en équipe tout au long du module. Les étudiants développent progressivement leur projet à travers l’identification du problème, la découverte client, le test des hypothèses, la conception du modèle d’affaires, le développement du MVP et l’affinement du projet.

    40 %

    Travaux dirigés et pratiques

    Participation aux TD, ateliers, exercices pratiques, discussions, séances de feedback et activités intermédiaires liées à la méthodologie Lean Startup.

    20%

    Examen final

    40%

    Rapport écrit

    Rapport écrit présentant le développement, la validation, le modèle d’affaires, le MVP, les décisions stratégiques et les perspectives de croissance du projet startup.

    20%

    Présentation orale

    Présentation orale du projet d’équipe, suivie d’une discussion et d’une évaluation de la clarté, de la cohérence, de la pertinence entrepreneuriale et de la qualité de la communication.

    20%

    Références

    e) Références (ouvrages, polycopiés et sites web, etc.)

    Livres sur le Lean Startup et la méthodologie entrepreneuriale

    The Lean Startup, 2011, Eric Ries .

    The Startup Owner’s Manual, 2012, Steve Blank, Bob Dorf .

    Running Lean, 2012, Ash Maurya .

    Modèle d’affaires et conception de la valeur

    Business Model Generation, 2010, Alexander Osterwalder, -

    Yves Pigneur

    Value Proposition Design, 2014, Alexander Osterwalder, .

    Yves Pigneur, Gregory Bernarda, Alan Smith

    Croissance et stratégies des startups

    Traction: How Any Startup Can Achieve Explosive Customer .

    Growth, 2015, Gabriel Weinberg, Justin Mares

    Hooked: How to Build Habit-Forming Products, 2014, Nir .

    Eyal

    Mesure, analyse et gestion de la performance

    Lean Analytics, 2013, Alistair Croll, Benjamin Yoskovitz .

    Measure What Matters, 2017, John Doerr .

    Management et leadership dans les startups

    High Output Management, 1983, Andrew S. Grove .

    The Hard Thing About Hard Things, 2014, Ben Horowitz .

    Intelligence artificielle et entrepreneuriat

    Prediction Machines: The Simple Economics of Artificial .

    Intelligence, 2018, Ajay Agrawal, Joshua Gans, Avi Goldfarb

    Competing in the Age of Al, 2020, Marco lansiti, KarimR. .

    Lakhani

    Innovation et méthodologie TRIZ

    The Innovation Algorithm: TRIZ, Systematic Innovation and .

    Technical Creativity, 1999, Genrich Altshuller

    20

    TRIZ: The Theory of Inventive Problem Solving, 2003, Sergei .

    Ikovenko

    Articles scientifiques essentiels

    Why the Lean Start-Up Changes Everything, 2013, Steve .

    Blank

    Do Things That Don’t Scale, 2013, Paul Graham .

    Rapports et livres blancs

    Startup Playbook, 2018, Y Combinator .

    The State of Al in Business, 2023, McKinsey Global Institute .

    Artificial Intelligence Index Report, 2024, Stanford .

    University

    OECD Entrepreneurship and Innovation Policy Frameworks, .

    2022, OECD

  8. Bio-programmation 2
    1 créditsCoefficient 1Volume semestriel: 22h30
    Cours / semaine: 01h30TD / semaine: -TP / semaine: -Autres heures: 02h30

    Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %

    Explorer la matière
    S4
    Bio-programmation 2

    Repères

    Connaissances préalables

    Maîtrise des concepts de base de Python niveau 1

    Familiarité avec un environnement de développement (IDE comme PyCharm ou Jupyter)

    Objectifs

    Objectifs de l’enseignement

    Réactiver les bases de Python (variables, boucles, fonctions, fichiers).

    Comprendre l’utilité des bibliothèques scientifiques (NumPy, Pandas, Matplotlib) en biologie.

    Savoir installer/importer des bibliothèques via Anaconda.

    Travailler avec des outils bio-informatiques

    Réaliser un projet d’analyse ou de simulation

    Programme

    Contenu de la matière

    1. Manipulation de données avec NumPy

    Utiliser des tableaux NumPy pour représenter des données biologiques (séquences, matrices).

    Appliquer des opérations vectorielles et le slicing pour l’analyse de données.

    2. Analyse de données biologiques avec Pandas

    Lire et manipuler des fichiers CSV (ex : résultats PCR, dosages enzymatiques).

    Trier, filtrer et regrouper des données pour l’analyse expérimentale.

    3. Visualisation des données avec Matplotlib

    Créer des graphiques (courbes, histogrammes) pour présenter des résultats biologiques.

    Personnaliser des visualisations (titres, légendes, étiquettes).

    4. Programmation Orientée Objet (POO)

    Concepts fondamentaux (Comprendre les classes, objets, attributs et méthodes. Implémenter une classe simple

    Héritage et méthodes spéciales.

    5. Introduction à Biopython

    Lire et analyser des fichiers FASTA.

    Extraire des informations de séquences ADN (longueur, contenu).

    Évaluation

    Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.

    Références

    Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
  9. Anglais pour les biologistes - Intermédiaire
    1 créditsCoefficient 1Volume semestriel: 22h30
    Cours / semaine: 01h30TD / semaine: -TP / semaine: -Autres heures: 02h30

    Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %

    Explorer la matière
    S4
    Anglais pour les biologistes - Intermédiaire

    Repères

    Connaissances préalables recommandées : Prior knowledge of basic English

    Objectifs

    Objectifs de l’enseignement : The objective of this course is to provide students with a solid foundation for communicating (both written and spoken) in English.

    Programme

    Contenu de la matière

    Unit 1: The World of work

    Grammar: Present perfect

    Vocabulary: Work and employment vocabulary.

    Reading: Dream jobs.

    Speaking: What is your dream job?

    Listening: Types of Biotech Companies.

    Writing: Writing application letters.

    Unit 2: Microalgae: the green gold of the future?

    Grammar: Conditionals.

    Everyday English: making suggestions.

    Reading: High-added value products from microalgae.

    Speaking: If you have funding, what would you do?

    Listening: Biofuel from microalgae.

    Writing: If the microalgae...

    Unit 3: Food Biotechnology

    Grammar: Reported speech.

    Vocabulary: Vocabulary for biotechnology

    Reading: Applications of enzymes in the Food Industry

    Speaking: Is it safe to use enzymes in food?

    Listening: Enzymes in milk & cheese.

    Writing: Scientific text using reported speech.

    Unit 4: Biofuel cell

    Grammar: Expressions of quantity.

    Vocabulary: Biofuel cells vocabulary.

    Reading: Biofuel Cells, enzymes and microbes for energy production.

    Speaking: Why don’t we have functional biofuel yet?

    Listening: The future of bioenergy.

    Writing: From excel to text, expressions of quantities.

    Unit 5: Bioentrepreneurship

    Grammar: Relative clauses.

    Vocabulary: Entrepreneurship.

    Reading: The three pillars of bioentrepreneurship.

    Speaking: Biotechnology and economic development.

    Listening: Biotechnology is the future of manufacturing.

    Writing: scientific text using relative clauses.

    Évaluation

    Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.

    Références

    Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.

    Mécanisme de l’Oncogenèse

    Microbiome Humain

    Biostatistiques

    Biologie de Synthèse

    Atelier de modélisation en immunotechnologie

    Atelier de Production de Vaccins

    UE découverte

    Pharmacognosie

    UE transversale

    Reverse Engineering

    Anglais pour les biologistes - Avancé

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Semestre 59 matières
  1. Mécanisme de l’Oncogenèse
    4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00
    Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 55h00

    Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %

    Explorer la matière
    S5
    Mécanisme de l’Oncogenèse

    Repères

    Connaissances préalables recommandées : Notions de base en physiologie cellulaire, signalisation et communication cellulaire et biologie moléculaire.

    Objectifs

    Objectif de l’enseignement : Cette matière a pour objectif de donner les bases des altérations structurales du génome (mutations, variations du nombre de copiesdes gènes, réarrangements simples ou complexes), des altérations génomiques et épigénomiques des cellules cancéreuses, de la cellule cancéreuse au cancer et des altérations moléculaires rencontrées dans les principaux cancers.

    Programme

    Contenu de la matière :

    Partie I Introduction générale à l'oncogenèse

    Chapitre 1 : Vue d’ensemble de l’oncogenèse

    Mécanismes de l’oncogenèse

    Oncogènes et gènes suppresseurs de tumeurs

    Signification des mutations présentes dans les cancers et Régulation de l’expression des gènes

    Chapitre 2 : La transformation maligne

    Des altérations de l’ADN peuvent induire une transformation maligne

    La découverte des oncogènes

    La progression cancéreuse : un processus en plusieurs étapes

    Partie II Immunité anti-tumorale

    Chapitre 1 : Réaction immunitaire antitumorale : concepts et principaux acteurs

    Antigènes de tumeurs

    Modélisation du déclenchement de la réponse immunitaire antitumorale

    Chapitre 2 : Régulation de l’activation lymphocytaire T

    Ontogénie et différenciation des lymphocytes T

    Mécanismes d’activation et Fonctions biologiques des lymphocytes T

    Régulation de la réponse T

    Chapitre 3 : Rôle des lymphocytes B à l’immunothérapie antitumorale

    Les lymphocytes B, un acteur de choix dans la réponse adaptative

    Le rôle des LB infiltrant les tumeurs

    Utilisation des propriétés des LB pour le développement des stratégies de biothérapies

    Chapitre 4 : Rôles des cellules dendritiques

    Activation des cellules dendritiques et induction de la réponse immunitaire

    Cellules dendritiques en contexte physiopathologique

    Immunothérapies ciblant ou utilisant les cellules dendritiques

    Partie III Altérations génomiques et épigénomiques des cellules cancéreuses

    Chapitre 1 : Voies ubiquitaires de prolifération cellulaire

    Récepteurs à activité tyrosine kinase

    Voie des MAP kinases

    Voie de la PI3 kinase

    Chapitre 2 : Voies de prolifération spécialisées

    Voies des cytokines et voies impliquant des G-protein–coupled receptors (GPCR)

    Voies Hippo ou YAP/TAZ, Purinergiques et Wnt–β-caténine

    Voies Notch et Hedgehog et voies conduisant au NFκB et Récepteurs nucléaires

    Chapitre 3 : Multiplication et mort cellulaires

    Contrôle du cycle cellulaire

    Contrôle de l’apoptose

    Chapitre 4 : Adhésion et motilité

    Adhésion cellulaire

    Motilité cellulaire

    Chapitre 5 : Voies de la migration cellulaire

    Voie des chimiokines, des intégrines et des sémaphorines

    Voie du transforming growth factor beta (TGFβ) et voies des éphrines

    Chapitre 6 : Régulations transcriptionnelles

    Méthylation de l’ADN et Modifications post-traductionnelles des histones

    Remodelage de la chromatine, Épissage alternatif et Facteurs de transcription

    Micro-ARN et Longs ARN non codants

    Chapitre 7 : Métabolisme et régulations intracytoplasmiques

    Biosynthèse des protéines

    Stress du réticulum endoplasmique et Autophagie

    Ubiquitinylation des protéines et protéasome

    Partie IV De la cellule cancéreuse au cancer

    Chapitre 1 : Instabilité génomique

    Erreurs réplicatives et réparation des mésappariements

    Processus oxydatifs endogènes et réparation par excision de base

    Cassures simple brin et réparation par excision de nucléotides : deux sujets à distinguer ; ce rapprochement dans le programme ne signifie pas que cette voie répare toutes les cassures simple brin.

    Coupures double-brin et réparation par recombinaison de l’ADN.

    Chapitre 2 : Immortalité des lignées cellulaires

    Télomères

    Télomérase

    Mécanisme alternatif d’allongement des télomères (ALT)

    Chapitre 3 : Dissémination métastatique

    Physiopathologie de la métastase

    Génome et épigénome de la métastase

    Transition épithélio-mésenchymateuse

    Colonisation des organes cibles

    Chapitre 4 : Angiogenèse

    Étapes de l’angiogenèse

    Mise en jeu de l’hypoxie

    Signalisation de l’angiogenèse

    Chapitre 5 : Cancers épithéliaux et non épithéliaux

    Cancers du sein et colorectaux

    Cancers du pancréas et Hépatocarcinomes

    Cancers de la vessie et des voies urinaires et de la prostate

    Cancers de l’ovaire, du col de l’utérus et de l’endomètre

    Cancers de la peau et de la thyroïde

    Glioblastomes et Sarcomes des tissus mous

    Mélanomes cutanés

    Leucémies et Lymphomes malins

    Chapitre 6 : L’immunothérapie des cancers

    Les anticorps monoclonaux

    Utilisation des cytokines

    Utilisation des lymphocytes T spécifiques de tumeurs amplifiés in vitro

    La manipulation des molécules de costimulation

    Travaux dirigés

    Analyses de documents et réalisation d’exposés dans les domaines couverts par les cours.

    Évaluation

    Mode d'évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.

    Références

    Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc

    Oncogenèse et progression des cancers Bases biologiques de la cancérologie. Jacques Robert. éditions Lavoisier Médecine Sciences, 2020. ISBN : 978-2-257-20754-8.

    Immunité anti-tumorale; Bases biologiques de la cancérologie. Karen Leroy, Diane Damotte. éditions Lavoisier Médecine Sciences, 2019. ISBN : 978-2-257-20716-6.

  2. Microbiome Humain
    4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00
    Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 55h00

    Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %

    Explorer la matière
    S5
    Microbiome Humain

    Repères

    Connaissances préalables recommandées : Connaissances préalables en Microbiologie générale, Physiologie cellulaire, Systématique et écologie microbienne et Biochimie microbienne.

    Objectifs

    Objectifs de l’enseignement : Connaissance de la microflore humaine, leur origine, et les facteurs influençant leur développement ainsi que leur rôle. Comprendre le lien entre la composition du microbiote et les maladies métaboliques, hépatiques et inflammatoires. Les nouvelles approches thérapeutiques.

    Programme

    Contenu de la matière

    Partie I : Le microbiote normal : (à l’équilibre)

    Chapitre 1 : Analyse et composition

    Techniques d’identification et d’exploration du microbiote.

    Composition du microbiote intestinal.

    Etablissement et évolution du microbiote.

    Facteur modulant la composition du microbiote intestinal.

    Chapitre 2 : Microbiote intestinal et fonctions de l’organisme

    Dialogue hôte microbiote.

    Microbiote et effet de barrière.

    Microbiote intestinal et système immunitaire.

    Microbiote intestinal et capacité métabolique.

    Partie II : Le microbiote pathologique : la dysbiose

    Chapitre 1 : Microbiote et maladies du tractus digestif

    Diarrhées infectieuses et diarrhées dues aux antibiotiques.

    Microbiote et troubles fonctionnels intestinaux.

    Microbiote et maladie cœliaque.

    Maladies inflammatoires chroniques de l’intestin.

    Rôle du microbiote intestinal dans le syndrome du grêle court.

    Entérocolite ulcéro-nécrosante.

    Microbiote et cancers digestifs.

    Chapitre 2 : Microbiote et maladie métaboliques et hépatiques

    Microbiote et obésité / apports alimentaires / chirurgie bariatrique.

    Syndrome métabolique / diabète.

    Microbiote et foie : maladies hépatiques métaboliques et nutritionnelles.

    Microbiote et nutrition entérale.

    Microbiote et malnutrition infantile

    Chapitre 3 : Microbiote et autres maladies

    Microbiote et santé cardiovasculaire.

    Microbiote et réactions allergiques.

    Microbiote intestinal et maladies psychiatriques et neurodégénératives.

    Microbiote et rhumatologie / médecine interne.

    Microbiote intestinal et dermatologie.

    Microbiote intestinal et gynécologie / urologie.

    Microbiote et iatrogénie.

    Partie III : Modulation du microbiote intestinal

    Chapitre 1 : Modulation nutritionnelle

    Régulation précoce

    Régulation à court et à long terme

    Chapitre 2 : Probiotiques, Prébiotiques et Symbiotiques

    Définition.

    Réglementation.

    Classifications et propriétés.

    Utilisations actuelles des probiotiques.

    Mécanisme d’action.

    Chapitre 3 : La transplantation de microbiote fécal

    Définition et contexte

    Réglementation

    La transplantation

    La transplantation fécale dans l’obésité.

    La transplantation fécale dans les allergies

    Chapitre 4 : Autres approches de modulation

    Évaluation

    Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.

    Références

    Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc
  3. Biostatistiques
    4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00
    Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 55h00

    Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %

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    S5
    Biostatistiques

    Repères

    Connaissances préalables recommandées : En mathématique, en informatique et en biostatistique

    Objectifs

    Objectifs de l’enseignement : L'objectif de cette matière est d'initier les étudiants aux méthodes statistiques et de comprendre les principes sous-jacents, ainsi que des directives pratiques de « comment le faire » et « comment l'interpréter » des données statistiques en particulier pour les biosystèmes.

    A l'issue de ce cours, les étudiants doivent être capables de :

    Comprendre comment résumer des données statistiques ;

    Appliquer des tests statistiques appropriés basés sur une compréhension de la question de l'étude, du type d'étude et du type de données ;

    Interpréter les résultats des tests statistiques et leur application dans les systèmes biologiques.

    Programme

    Contenu de la matière :

    Introduction : Bienvenu à l’univers R

    - Installation du logiciel

    - Principes de base de l'utilisation de R

    Calcul de la moyenne et des écart-types

    Analyse de la corrélation et de la régression

    Représentations graphiques

    Analyse de la variance (un facteur et deux facteurs) et de la covariance

    Tests statistiques

    Évaluation

    Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.

    Références

    Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc
  4. Biologie de Synthèse
    4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00
    Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 55h00

    Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %

    Explorer la matière
    S5
    Biologie de Synthèse

    Repères

    Connaissances préalables recommandées : Des connaissances en biologie moléculaire et en génétique.

    Objectifs

    Objectifs de l’enseignement : Au terme du cours, l'étudiant maîtrisera les concepts de base de la biologie synthétique. Il sera capable de synthétiser virtuellement ainsi que dans E. coli de simples systèmes synthétiques.

    Programme

    Contenu de la matière

    Introduction en biologie de synthèse

    Repères historiques

    Définitions et but de la biologie de synthèses :

    Les trois grandes stratégies en biologie de synthèse (Button-up, top-down et protocell)

    Les Biobriques :

    Séquençages ADN

    Fabrication d'ADN (« briques élémentaires »)

    Les châssis : naturelle et synthétique

    Chimie, biochimie et néocodage du vivant

    Les outils pour le contrôle de l’expression génique :

    Outils et approches de la biologie synthétique

    Ingénierie du vivant et ingénierie métabolique :

    Synthia

    Synthèse de l’artémisimine

    Systèmes bactériens utilisés comme capteur environnementaux et pour diagnostique biomédicale

    Génomes artificiels et notion de xénobiologie

    Applications

    Aspect règlementaire et bio sûreté :

    Sécurité, aspects sociaux et éthiques

    Travaux dirigés

    Analyses de documents et réalisation d’exposés dans les domaines couverts par les cours.

    Évaluation

    Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.

    Références

    Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
  5. Atelier de Production de Vaccins
    6 créditsCoefficient 3Volume semestriel: 60h00
    Cours / semaine: -TD / semaine: -TP / semaine: 04h30Autres heures: 85h00

    Évaluation: contrôle continu 100 % · examen

    Explorer la matière
    S5
    Atelier de Production de Vaccins

    Repères

    Connaissances préalables recommandées

    Ensembles des contenus de la formation.

    Objectifs

    Objectifs de l’enseignement :

    Cet atelier vise à doter les étudiants des compétences pratiques nécessaires à la production d’un vaccin inactivé à base de bactéries entières (E. coli), incluant l’encapsulation des antigènes dans des microparticules de PLGA, la formulation avec adjuvant, et l’évaluation de l’efficacité vaccinale sur modèle animal.​ Les notions de Biosécurité et Bioéthique sont abordées tout le long de l’atelier.

    Programme

    Contenu de la matière

    Séance 1 : Culture bactérienne

    Séance 2 : Inactivation thermique

    Contrôle de stérilité

    Séance 3 : Préparation des microparticules de PLGA

    Séance 4 : Encapsuler les bactéries inactivées dans les microparticules de PLGA

    Séance 5 : Caractérisation des microparticules

    Analyse de la taille et de la morphologie des microparticules.

    Dosage des protéines encapsulées.

    Séance 6 : Formulation avec adjuvant

    Séance 7 : Immunisation des modèles animaux

    Sélection et préparation des souris.

    Injection de la formulation par voie sous-cutanée ou intramusculaire.

    Séance 8 : Suivi de la réponse immunitaire

    Prélèvement d'échantillons de sang.

    Dosage des anticorps spécifiques par ELISA.

    Séance 9 : Test de challenge

    Exposition des animaux immunisés à la souche bactérienne virulente.

    Surveillance des signes cliniques et de la mortalité.

    Séance 10 : Analyse finale et conservation

    Compilation et analyse des données immunologiques et de protection.

    Évaluation

    Évaluation de la stabilité du vaccin à différentes températures.
    Mode d’évaluation : 100 % Contrôle continu.

    Référence :

    1. Arshadi, N., Mousavi, S. L., Amani, J., & Nazarian, S. (2020). Immunogenic potency of formalin and heat inactivated E. coli O157:H7 in mouse model administered by different routes. Avicenna Journal of Medical Biotechnology, 12(3), 194–200.

    2. Pace, J. L., Rossi, H. A., Esposito, V. M., Frey, S. M., Tucker, K. D., & Walker, R. I. (1998). Inactivated whole-cell bacterial vaccines: Current status and novel strategies. Vaccine, 16(16), 1563–1574. https://doi.org/10.1016/S0264-410X(98)00046-2​

    3. Kawser, Z., &Shamsuzzaman, S. M. (2021). Intradermal immunization with heat-killed Klebsiella pneumoniae leading to the production of protective immunoglobulin G in BALB/c mice. International Journal of Applied and Basic MedicalResearch, 11(3), 160–165.

  6. Atelier de Modélisation en Immunotechnologie
    4 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00
    Cours / semaine: -TD / semaine: -TP / semaine: 03h00Autres heures: 55h00

    Évaluation: contrôle continu 100 % · examen

    Explorer la matière
    S5
    Atelier de Modélisation en Immunotechnologie

    Repères

    Connaissances préalables recommandées : Notions de bases en bioinformatique et en immunoinformatique ainsi que les connaissances fondamentales de l’immunologie et de l’immunotechnologie.

    Objectifs

    Objectifs de l’enseignement : Cet enseignement vise à fournir à l’étudiant les notions de base du docking moléculaire ainsi que les simulations des réponses immunitaires et ce dans le but de les mettre en œuvre dans la modélisation et l’optimisation des procédés de fabrication d’anticorps monoclonaux ou de médicaments

    Programme

    Contenu de la matière :

    Partie I. Docking moléculaire

    Chapitre 1 : Interaction Protéine-ligand :

    Protéine- enzyme

    Protéine-Peptide

    Protéine-Protéine

    Chapitre 2 : Détermination des sites actifs
    Chapitre 3 : Design de peptides
    Chapitre 4 : Exemples d’applications

    Partie II. Dynamique moléculaire

    Évaluation

    Mode d’évaluation : 100 % contrôle continu.

    Références

    Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
  7. Pharmacognosie
    2 créditsCoefficient 2Volume semestriel: 45h00
    Cours / semaine: 01h30TD / semaine: 01h30TP / semaine: -Autres heures: 10h00

    Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %

    Explorer la matière
    S5
    Pharmacognosie

    Repères

    Connaissances préalables recommandées : Notions acquises en pharmacologie moléculaire

    Objectifs

    Objectif de l’enseignement : Connaître l’obtention et les intérêts des substances naturelles en thérapeutique: production de métabolites d'intérêt par des sources végétales ; nature, définition et rôles des métabolites secondaires ; principales voies de biogénèse des 3 classes de métabolites secondaires (alcaloïdes, terpènes, polyphénols) ; exemples de propriétés pharmacologiques et emplois des drogues ; méthodes d’obtention (extraction / purification) et de caractérisation des principales classes de métabolites secondaires ; définition d’une drogue végétale, circuit des drogues végétales et contrôles qualités.

    Programme

    Contenu de la matière :
    Chapitre 1 : Introduction à la Pharmacognosie

    Importance des substances naturelles en thérapeutique

    Introduction aux métabolites primaires et secondaires

    Chapitre 2 : Composés du métabolisme primaire et secondaires

    Définition des 2 types de métabolisme

    Rôles des métabolites primaires et secondaires (ex. des végétaux)

    Diversité structurale des métabolites secondaires

    Utilisations/Applications des métabolites primaires et secondaires

    Chapitre 3 : Terpènes et stéroïdes

    Huiles essentielles

    Résines, oléorésines, gomme-résine, baumes

    Iridoïdes

    Saponosides

    Matières premières pour l’industrie des stéroïdes

    Hétérosides cardiotoniques

    Chapitre 4 : Les Composés phénoliques

    Composés phénoliques

    Phénols et acides phénols

    Coumarines

    Lignanes

    Flavonoïdes

    Anthocyanes

    Tannins

    Dérivés hydroxyanthracéniques

    Orcinols et phloroglucinols « chanvre indien »

    Chapitre 5 : les alcaloïdes

    Généralités sur les alcaloïdes

    Alcaloïdes tropanique « belladone, datura, jusquiame, coca »

    Alcaloïdes quinolizidiniques « genet à balai »

    Alcaloïdes indoliques « ergot de seigle, rauwolfia, pervenches, ochrosias »

    Alcaloïdes quinoléine « quinquinas »

    Les alcaloïdes iso quinoléines « pavot somnifère »

    Alcaloïdes tropolones « colchique »

    Alcaloïdes à noyau imidazole « jaborandi »

    Alcaloïdes diterpéniques « aconit »

    Bases puriques « café, thé, cola, cacao »

    Chapitre 6 : Notions galénique

    Principales formes galéniques en phytothérapie

    Mise en pratique : préparations magistrales

    Critères de choix de la forme galénique

    Chapitre 7 : Phytothérapies et pathologie

    Toxicité intrinsèque des plantes

    Risques d’interactions entre plantes médicinales et médicaments

    Contres indication et précautions d’emploi des plantes médicinales

    Chapitre 8 : Monographie

    Différentes plantes médicinales

    Indications des plantes médicinales selon leurs propriétés en phytothérapie clinique intégrative

    Chapitre 9 : Place de l’évaluation clinique et biologique dans le choix d’un traitement à base de plantes médicinales et le suivi de ses effets

    Phytopharmacologie

    Etude des cas cliniques

    Travaux dirigés

    Principes fondamentaux des la phytothérapie, homéopathie, aromathérapie.

    Formes galéniques des préparations végétales.

    Phytovigilance et sécurité du consommateur.

    Évaluation

    Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.

    Références

    Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
  8. Reverse Engineering
    1 créditsCoefficient 1Volume semestriel: 22h30
    Cours / semaine: 01h30TD / semaine: -TP / semaine: -Autres heures: 02h30

    Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %

    Explorer la matière
    S5
    Reverse Engineering

    Objectifs

    Objectifs de l’enseignement :

    Comprendre les notions de base de Reverse Engineering appliquée à l’immunotechnologie.

    Se familiariser avec les logiciels libres pour une autonomie numérique à usage immunotechnologique.

    Comprendre les principes et les étapes du reverse engineering appliquée aux dispositifs et protocoles immunotechnologiques.

    Analyser et déconstruire des produits ou procédés existants (kits ELISA, dispositifs de diagnostic rapide, immunocapteurs, vaccins, etc.).

    Rétro-concevoir un protocole expérimental ou un dispositif biomédical à partir de son observation ou de sa documentation.

    Identifier les possibilités d’amélioration ou d’optimisation.

    Compétences visées :

    Connaitre les concepts de base du Reverse Engineering et ses applications industrielles.

    Analyser structurellement et fonctionnellement un produit immunotechnologique existant.

    Décrire les composants et les mécanismes d’action.

    Réaliser un schéma fonctionnel du système déconstruit.

    Proposer des pistes d’amélioration ou de réingénierie.

    Programme

    Contenu de la matière

    Partie 1 :

    Concepts fondamentaux du Reverse Engineering

    Définition et historique

    Origine du concept en ingénierie mécanique, électronique, puis adaptation aux sciences du vivant.

    Importance du RE dans la biologie moderne : comprendre, améliorer, reproduire.

    Différences entre Reverse Engineering et Forward Engineering

    Forward Engineering : processus de conception linéaire (de l'idée au produit).

    Reverse Engineering : partir d'un produit existant pour en déduire la conception.

    Applications industrielles

    Maintenance et amélioration d'appareillages biologiques (PCR, séquenceurs).

    Innovation compétitive : bio-impression, création d'outils diagnostics alternatifs.

    Interopérabilité : compatibilité entre instruments, logiciels et bases de données.

    Échelle TRL (Technology Readiness Level)

    Présentation des 9 niveaux TRL

    TRL 1 : Observation scientifique de base.

    TRL 5 : Validation technologique en environnement pertinent.

    TRL 9 : Système validé en environnement opérationnel.

    Positionnement d’un projet biologique selon les TRL

    Exemples : développement d’un test PCR rapide, production de vaccins expérimentaux.

    Les moyens nécessaires pour franchir les TRL

    Ressources humaines, matérielles, financières.

    Planification des essais pilotes et pré-industriels.

    Cadre juridique et propriété intellectuelle

    Le droit à l’ingénierie inverse face aux brevets

    Principe du fair use, DMCA, directives européennes.

    Analyse comparative internationale

    Gestion des risques juridiques

    Rédaction de contrats clairs, clauses spécifiques RE, protections anti-contournement.

    Limites légales

    RE autorisé pour analyse et interopérabilité ; interdit pour copie/revente non autorisée.

    Partie 2 : En sciences Biologiques :

    1. Reverse Engineering des Systèmes Biologiques

    Approche de déconstruction biologique

    Décomposition de réseaux métaboliques et voies de signalisation.

    Reconstruction fonctionnelle à partir de données expérimentales.

    Exemples concrets

    Réseaux de réponse au stress oxydatif.

    Mécanismes moléculaires de l'apoptose.

    2. Bioinformatique et Logiciels Libres en Sciences Biologiques

    Introduction aux logiciels open-source

    Biopython, RStudio, Galaxy pour bioanalyse.

    Ateliers pratiques

    Annotation génomique libre avec GenomeTools.

    Analyse de séquences de gènes cibles avec FastQC et Clustal Omega.

    3. Modélisation et Simulation en Biologie

    Outils de simulation libre

    COPASI pour la dynamique des systèmes biochimiques.

    CellDesigner pour modéliser les réseaux de signalisation.

    Mini-projets

    Simulation de la dynamique d'un réseau d'inflammation.

    Optimisation d’une voie métabolique via un modèle dynamique.

    Partie 3 : En Immunotechnologie : Cette partie permet aux étudiants l’identification de cas concrets de reverse engineering, l’utilisation d'outils open-source adaptés (ImageJ, Packtage R/Bioconductor , FreeCAD …) et La réflexion sur les impacts éthiques et juridiques.

    Reverse Engineering des anticorps et immunodiagnostics

    Extraction et modélisation de la structure 3D d’anticorps (RosettaAntibody, PyMOL).

    Atelier

    Reconstitution d'un test rapide antigénique basé sur les anticorps open-source.

    Évaluation

    Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.

    Références

    Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.
  9. Anglais pour les biologistes - Avancé
    1 créditsCoefficient 1Volume semestriel: 22h30
    Cours / semaine: 01h30TD / semaine: -TP / semaine: -Autres heures: 02h30

    Évaluation: contrôle continu 40 % · examen 60 %

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    S5
    Anglais pour les biologistes - Avancé

    Repères

    Connaissances préalables recommandées: Connaissances de base en anglais

    Objectifs

    Objectifs de l’enseignement: Cette matière développe les compétences des étudiants en communication écrite et orale en anglais.

    Programme

    Contenu de la matière

    Unité 1 : Règles fondamentales de rédaction des manuscrits scientifiques

    - Vue d’ensemble de la langue des manuscrits scientifiques

    - Temps verbaux

    - Grammaire

    - Phrases

    - Paragraphes

    Unité 2 : Erreurs fréquentes à éviter dans la rédaction d’un manuscrit

    Unité 3 : Soutenance de thèse

    - Qu’est-ce qu’une soutenance de thèse ?

    - Comment commencer sa présentation ?

    - Formuler la problématique et les objectifs de recherche

    - Décrire les méthodes

    - Décrire et discuter les résultats

    - Conclusion et perspectives

    - Travailler les transitions

    - Comment conclure sa présentation ?

    Unité 4 : Après le diplôme, quelle suite ?

    - Définir ses objectifs professionnels

    - Préparer un entretien d’embauche

    - Rédiger son CV

    - Rédiger une lettre de motivation

    - Présenter une candidature à une bourse

    Évaluation

    Mode d’évaluation : Contrôle continu : 40 % ; Examen : 60 %.

    Références

    Références : Livres et polycopiés, sites internet, etc.

    Projet de fin d’études

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Semestre 61 matière
  1. Projet de Fin d’Etudes
    30 créditsCoefficient 17Volume semestriel: 750
    Cours / semaine: 75TD / semaine: 225TP / semaine: 450Autres heures: -

    Évaluation: contrôle continu 50 % · examen 50 %

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    S6
    Projet de Fin d’Etudes

    Objectifs

    Objectifs de l’enseignement

    Les objectifs du projet de fin d’études sont de préparer les étudiants à s'adapter à l'environnement de la recherche et à comprendre comment les projets sont exécutés dans un laboratoire. Il permettra également aux étudiants d'apprendre les aspects pratiques de la Biologie Moléculaire et de former les étudiants à l'art de l'analyse et de la rédaction de thèses.

    Résultats d'apprentissage des étudiants :

    Les étudiants devraient être capables d'apprendre comment sélectionner et défendre un sujet de leur recherche, comment planifier, exécuter, évaluer et discuter efficacement leurs expériences. Les étudiants devraient être en mesure de démontrer une amélioration considérable dans les domaines suivants :

    Connaissance approfondie du domaine de recherche choisi.

    Capacité à intégrer de manière critique et systématique les connaissances pour identifier les problèmes qui doivent être traités dans le cadre d'une thèse spécifique.

    Compétence dans la conception et la planification de la recherche.

    Capacité à créer, analyser et évaluer de manière critique différentes solutions techniques.

    Capacité à mener des recherches de manière indépendante.

    Aptitude à appliquer des techniques analytiques/méthodes expérimentales.

    Compétences en gestion de projet.

    Compétences en rédaction de rapports.

    Des talents pour la résolution des problèmes.

    Compétences en communication et relations interpersonnelles.

    Programme

    Contenu de la matière

    Planification et réalisation d'expériences

    Sur la base de la proposition de projet soumise au semestre précédent, les étudiants devraient être capables de, planifier et de s'engager dans une enquête critique indépendante, un projet de fin d’études en Biotechnologie. Ils devraient être en mesure d'identifier systématiquement la théorie et les concepts pertinents, de les relier aux méthodologies et aux preuves appropriées, d'appliquer les techniques appropriées et de tirer les conclusions appropriées. Les étudiants doivent être en mesure de travailler de manière indépendante et soient capables de comprendre le but de chaque expérience qu'ils réalisent. Ils devraient également être en mesure de comprendre les résultats possibles de chaque expérience.

    Rédaction du manuscrit

    À la fin de leur projet, une thèse doit être écrite donnant tous les détails tels que l'objectif, la méthodologie, les résultats, la discussion et les travaux futurs liés à leur projet. Les étudiants peuvent viser à faire publier leurs résultats de recherche dans une revue à comité de lecture. Si les résultats de la recherche ont des résultats orientés vers l'application, les étudiants peuvent déposer une demande de brevet.

    Évaluation

    Mode d’évaluation :

    Manuscrit : 50 % ; Soutenance : 50 %.

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