Contenu de la matière
Partie 1 : Étude de la biologie in vitro
Modèles cellulaires et expérimentations in vitro
1.1. Introduction à la biologie cellulaire et aux approches expérimentales
Définition et objectifs de la biologie cellulaire
Émergence et objectifs de la culture cellulaire
Définition des approches expérimentales : in vitro, in vivo et in silico
Les systèmes cellulaires
Culture primaire de cellules isolées
Origine et prélèvement du tissu
Méthodes d’isolement (enzymatique, mécanique)
Culture de lignées cellulaires
Types de lignées (immortalisées, cancéreuses)
Avantages et limites des systèmes cellulaires (culture primaire vs lignées)
Critères de choix du système cellulaire
Les cultures 3D récentes
Développement des modèles tridimensionnels : sphéroïdes, organoïdes, organe sur puce, impression 3D
Avantages et limites par rapport aux cultures 2D
Conditions de culture cellulaire
Types de cultures
Culture en suspension : principes et applications
Culture adhérente : principes et applications
Locaux et équipements de culture
Postes de sécurité microbiologique (PSM) : fonctions et importance ; correction de l’intitulé inexact du source.
Incubateurs : température, humidité, CO₂
Microscopes et équipements de suivi : observation et contrôle de la croissance cellulaire
1.3.3 Milieux de culture
Composition des milieux : médium de base, facteurs de croissance, sérum, antibiotiques
Ajustement des conditions : pH, température, et autres paramètres spécifiques
Bonnes pratiques de laboratoire
Prévention des contaminations : gestion des risques
Gestion des déchets biologiques : protocoles de sécurité et d’élimination
Cryoconservation et décongélation des cellules
Techniques de cryoconservation et de congélation des cellules
Protocole de congélation, ajout de cryoprotecteurs (ex. : DMSO)
Récupération des cellules après congélation et tests de qualité post-congélation
Méthodes d’étude des mécanismes cellulaires
Techniques d’analyse de base
Cytométrie en flux
Immunofluorescence et immunohistochimie
Techniques de microscopie (électronique, à fluorescence, confocale, etc.)
Étude de la prolifération cellulaire
Analyse de la courbe de croissance cellulaire
Marqueurs de prolifération (KI-67, EdU, BrdU)
Méthodes classiques et récentes (MTT, CCK-8, criblage haut-débit)
Étude de la viabilité et mort cellulaire
Intégrité membranaire : bleu trypan. Le MTT mesure l’activité métabolique et non directement la perméabilité membranaire.
Apoptose : marqueurs d'apoptose (Annexine V, Caspases, TUNEL)
Étude de la différenciation cellulaire : modèles et marqueurs spécifiques
Intégration de l’in vitro dans la recherche biomédicale
Modèles pour le criblage haut-débit de composés thérapeutiques
Étude des voies de signalisation dans la pathologie
Rôle de l’in vitro dans la médecine personnalisée
Limites de la transposition des résultats in vitro vers l’in vivo
Partie 2 : Étude de la biologie in vivo
Introduction à l'expérimentation animale en recherche biomédicale
Importance des modèles animaux en recherche scientifique
Éthique de l’expérimentation animale
Critères de choix du modèle animal
Modèles murins et manipulations génétiques
Cellules souches embryonnaires murines (CSEm)
- Origine à partir du blastocyste
- Culture et caractéristiques
- Utilisation en modélisation de maladies et en thérapie cellulaire
Techniques de manipulation génétique
- Transgénèse : injection pronucléaire, transfert de gènes dans les CSEm
- Clonage somatique et transfert nucléaire
- Invalidation génique (knock-out), insertion génique (knock-in) : systèmes Cre/loxP et CRISPR/Cas9
Utilisation de la souris en recherche biomédicale
- Modélisation de pathologies humaines : cancer, maladies neurodégénératives, infectieuses ? etc.
- Atouts du modèle murin (génétique, reproductibilité, outils disponibles)
Apports du rat (Rattus norvegicus)
- complément des modèles murins dans les études comportementales et métaboliques.
La Drosophile, un modèle pour l’étude des cellules souches et des pathologies humaines
Transition depuis les mammifères
Obtention des cellules souches embryonnaires (CSEm) et cellules iPS.
Limites des modèles mammifères
Considérations éthiques et limites d’utilisation des cellules souches chez les mammifères
Intérêt du modèle drosophile en biologie des cellules souches
Cellules souches chez la Drosophile
3.2.1. Cellules souches germinales (ovaires et testicules)
3.2.2. Cellules souches intestinales
3.2.3. Autres tissus (cerveau, follicules, etc.)
3.2.4. Atouts expérimentaux du modèle drosophile
Mécanismes de régulation des cellules souches
3.3.1. Rôle de la niche et du microenvironnement
3.3.2. Voies de signalisation conservées (Notch, JAK/STAT, BMP, Wnt)
3.3.3. Contrôle transcriptionnel et régulation épigénétique
Reprogrammation et plasticité cellulaire
3.4.1. Dédifférenciation et transitions d’état cellulaire
3.4.2. Modélisation des processus analogues aux Ips
Modélisation des pathologies humaines
3.5.1. Maladies neurodégénératives (Parkinson, Alzheimer…)
3.5.2. Cancers et dérégulation des cellules souches
3.5.3. Criblage génétique et identification de cibles thérapeutiques
Caenorhabditis elegans : un modèle simple pour décrypter des pathologies humaines complexes
Présentation générale de C. elegans
Caractéristiques biologiques
Atouts expérimentaux
Conservation des voies moléculaires fondamentales
Étude du vieillissement et de la longévité
Modèles de vieillissement physiologique
Voies génétiques de la longévité
Criblages pharmacologiques
Troubles métaboliques et immunitaires
Modèles de résistance à l’insuline
Réponses immunitaires innées
Criblages de molécules thérapeutiques
Limites et considérations éthiques
Aspects éthiques favorables
Limites du modèle
L’embryon aviaire comme modèle en neurobiologie et oncologie pédiatrique
Introduction au modèle aviaire
Caractéristiques générales de l’embryon de poulet (Gallus gallus)
Accès in ovo au développement embryonnaire
Atouts expérimentaux : manipulation, visualisation, considérations éthiques
Le neuroblastome : présentation de la pathologie
Origine du neuroblastome : dérive des cellules des crêtes neurales
Caractéristiques cliniques : tumeur pédiatrique, hétérogénéité, métastases
Modélisation du neuroblastome avec l’embryon aviaire
Utilisation de la membrane chorioallantoïque (CAM) pour greffer des cellules tumorales
Étude de l’invasion, de l’angiogenèse et de la dissémination métastatique
Visualisation in vivo et suivi des cellules tumorales
Applications expérimentales et précliniques
Criblage de composés anticancéreux sur la CAM
Limites, perspectives et complémentarité
Le poisson-zèbre comme modèle d’étude du mélanome et d’autres pathologies humaines
Introduction générale
Présentation du modèle poisson-zèbre
Atouts techniques et expérimentaux
Pertinence biomédicale et génétique du modèle
Le mélanome : généralités
Origine et progression du mélanome
Principales mutations impliquées (BRAF, NRAS, etc.)
Défis du diagnostic et du traitement
Étude du mélanome chez le poisson-zèbre
Génération de modèles transgéniques
Visualisation de la progression tumorale in vivo
Outils de criblage pharmacologique anticancer
Approches de xénogreffe et immunosurveillance
Autres pathologies étudiées avec le poisson-zèbre
Pathologies neurologiques (épilepsie, autisme)
Pathologies cardiovasculaires (cardiotoxicité, arythmies)
Problèmes éthiques dans la recherche sur les cellules souches
Statut moral des embryons
Trafic d’organes issus de fœtus avortés : question éthique et juridique du programme, et non description d’une pratique de recherche légitime.
Exploitation des femmes
Politiques de recherche sur les cellules souches
Lois et cadres réglementaires
Rôle de la politique et de l’opinion publique
Influence dans l’élaboration des politiques sur la recherche.